Summary

Novel Atomic Force Mikros Basert Biopanning for isolering av morfologi spesifikke reagenser mot TDP-43 Varianter i Amyotrofisk lateral sklerose

Published: February 12, 2015
doi:

Summary

Using atomic force microscopy in combination with biopanning technology we created a negative and positive biopanning system to acquire antibodies against disease-specific protein variants present in any biological material, even at low concentrations. We were successful in obtaining antibodies to TDP-43 protein variants involved in Amyotrophic Lateral Sclerosis.

Abstract

Fordi proteinvarianter spille kritiske roller i mange sykdommer inkludert TDP-43 i amyotrofisk lateral sklerose (ALS), alpha-synuclein in Parkinsons sykdom og beta-amyloid og tau ved Alzheimers sykdom, er det av avgjørende betydning å utvikle morfologi spesifikke reagenser som selektivt kan målrette varianter disse sykdomsspesifikt protein for å studere rollen til disse variantene i sykdomspatologien og for potensielle diagnostiske og terapeutiske anvendelser. Vi har utviklet nye atomkraftmikroskopi (AFM) basert biopanning teknikker som gjør det mulig isolering av reagenser som selektivt gjenkjenner sykdomsspesifikke proteinvarianter. Det er to hovedfaser som er involvert i prosessen, de negative og positive panorering faser. I løpet av den negative fasen panorering, er fager som er reaktive til off-målantigener eliminert gjennom flere runder med panorering subtraktiv benytte en serie nøye utvalgte off-target-antigenene. En viktig funksjon i negativpanning fase utnytte AFM avbildning for å overvåke prosessen og få bekreftet at alle uønskede fag-partikler fjernes. For den positive fasen panorering, blir target-antigenet av interesse festet på et mica overflate og bundet Fagene blir eluert og undersøkt for å identifisere fager som selektivt binder mål-antigen. Målproteinet variant behøver ikke å bli renset tilveiebringe de nødvendige negative kontroller med panning har blitt brukt. Selv målrette proteinvarianter som kun er tilstede i meget lave konsentrasjoner i komplekse biologiske materiale kan benyttes i den positive panorering trinn. Gjennom anvendelse av denne teknologien, kjøpte vi antistoffer mot protein varianter av TDP-43 som er selektivt funnet i menneskelig ALS hjernevev. Vi regner med at denne protokollen bør være aktuelt å generere reagenser som selektivt binder proteinvarianter som er tilstede i en rekke forskjellige biologiske prosesser og sykdommer.

Introduction

Nærværet av proteinvarianter har vært implisert som en faktor i utviklingen av mange sykdommer som omfatter nevrodegenerative sykdommer, slik som Alzheimer, Parkinson, ALS, og frontotemporal demens (FTD) 1,2,3,4,5,6,7,8,9 , 10,11. Oligomere former av proteinene beta-amyloid og alpha-synuclein er antatt å være de toksiske artene som er ansvarlige for Alzheimers og Parkinsons henholdsvis 2,3,4,5. Aggregater av TAR DNA-bindende protein 43 (TDP-43) har vært knyttet til ALS og FTD 12,13,14. Derfor reagenser slik som antistoffer som selektivt kan målrette de ulike proteinvarianter kan være kraftige verktøy for å tjene som diagnostiske markører og potensielle behandlingsformer. I denne studien har vi fokusert på å utvikle reagenser som selektivt binder varianter av TDP-43 protein innblandet i ALS, men teknikken er skissert i dette papiret bør være aktuelt for isolering av reagenser mot et bredt spekter av protein varianter.

Cytoplasmatisk aggregering av TDP-43 har blitt identifisert som et patologisk trekk i ALS 15,16,17,18,19. Vanligvis TDP-43 er funnet i kjernen av alle celler fra en normal person, selv om det har en tendens til å bevege seg mellom cytosol og kjerne 15,17. Men i ALS aggregerte former av TDP-43 blir detektert i cytoplasma av utvalgte neuroner og glia med lavere konsentrasjoner som finnes i kjernen som tyder på bevegelsen av TDP-43 fra kjernen til cytoplasma under sykdomsprogresjon 16,20. Mens aggregering av TDP-43 er funnet i de fleste ALS tilfellene, betyr det ikke høyde for alle tilfeller siden 1% -2% av totale ALS tilfeller (eller 15% -20% av familiære ALS tilfeller) er knyttet til mutasjoner i superoksyddismutase 1 (SOD1) genet 15,17. På grunn av den viktige rollen TDP-43 i de aller fleste ALS tilfeller her vi fokusere på å utvikle antistoffbasert reagenser som selektivt kan binde seg til TDP-43 varianter som ertil stede i menneskets ALS hjernevev utnytte våre roman AFM basert biopanning teknikker.

I første omgang trenger vi et variert repertoar av antistoff bindende domener. Vi kombinerte tre forskjellige fagfremvisning enkelt kjede variabel domene antistoffragment (scFv) biblioteker, (Tomlinson I og J og Sheets biblioteker 21). Panning-prosessen er delt i negative og positive panorering faser. Fager fra bibliotekene blir først utsatt for den negative panorering prosessen under hvilken fager reaktiv til flere off-target-antigenene er utelukket. Etter fullførelsen av hver runde med panorering negativ mot hverandre off-target-antigenet, er prosessen overvåkes av AFM avbildning for å sikre at alle fag binding off-target-antigenene har blitt fjernet. Etter å ha kontrollert av AFM tenkelig at alle reaktive fag blir fjernet vi gå videre til det neste målet. Å isolere reagenser mot TDP-43 varianter innblandet i ALS vi benyttet følgende negative panorering antigener: 1) BSA for å fjerne fag som binder svakt eller ikke-spesifikt til proteiner; 2) aggregerte alpha-synuclein å fjerne fag som binder til generiske strukturelementer av aggregerte proteiner; 3) human hjerne vevshomogenater å fjerne fag som binder seg til eventuelle proteiner eller andre komponenter som er tilstede i post-mortem prøver av friske humane hjernevevet; 4) immunopresipitert TDP-43 fra sunne menneskelige hjerne å fjerne fag som binder til alle TDP-43 former forbundet med sunne menneskelige hjerne; og 5) immunopresipitert TDP-43 isolert fra FTD hjerne-homogenater å fjerne fag som binder TDP-43 varianter i forbindelse med ikke-ALS patologi. Etter fjerning av alt fagen reaktive til alle off-target-antigenene, vi fortsatte deretter til den positive panorering fase der antistoff-fragmenter som binder antigenet av interesse blir isolert, i dette tilfellet TDP-43 immunopresipitert fra humane ALS hjernevev. Disse isolerte antistoffer kan være reaktivt til aggregerte eller modifiserte former av TDP-43.

"> Konvensjonell fag biopanning hovedsak fokuserer på det positive panorering fase 22,23. Vanligvis målet om interessen er immobilisert, lagt fagbibliotek og innbundne fager elueres. Fagene blir så forsterket og lagt til målet igjen. Denne forsterkningen og inkubasjon prosess blir vanligvis gjentatt flere ganger for å øke prosentandelen av positive fag-binding. Selv om variasjoner av denne fremgangsmåte er blitt brukt i stor utstrekning for å isolere antistoffreagenser mot et bredt spekter av mål-antigener, krever de vanligvis store mengder av renset målantigen 24,25,26, 27, mens foreliggende fremgangsmåte krever bare spormengder av målantigenet. Protokollen er beskrevet her kan brukes til å isolere reagenser som selektivt binder mål-antigener som er til stede i meget lave konsentrasjoner, uten behov for rensing, og panorering kan utføres direkte mot antigen stede i komplekse vevsprøver. Bruken av uttømmende negative panorering protokoller som bekreftetav AFM sikrer at kloner isolert mot den positive antigen bør selektivt binde målet, selv når det ikke er renset eller anriket.

Kasturirangan og kolleger (2003) har gjennomført en lignende negativ og positiv biopanning prosess for å isolere antistoffer reaktive til oligomert beta-amyloid bruker nanogram konsentrasjon av målet fem. Her har vi utvide denne prosess til å muliggjøre generering av reagenser som selektivt binder sykdomsspesifikt protein varianter direkte fra humane vevsprøver. I fremtidige studier skal vi undersøke nærmere ikke bare den diagnostiske verdien av reagenser isolert her, men også vurdere deres terapeutiske relevans for behandling av ALS.

Samlet vår nye AFM basert biopanning teknologi bør være anvendelig til isolering av en hvilken som helst sykdomsspesifikk proteinvariant i hvilken som helst biologisk materiale uten behov for proteinrensing eller modifisering, selv om ønsket antigen-konsentrasjonns er ekstremt lav.

Protocol

1. Fag Produksjon Utføre alle fag produksjons- og biopanning prosesser i en biosikkerhet kabinett. Produsere fager partikler fra de forskjellige bibliotekene (Tomlinson I og J biblioteker og blad bibliotek 21) for biopanning prosessen ved hjelp av produsentens instruksjoner (http://www.lifesciences.sourcebioscience.com/media/143421/tomlinsonij.pdf). MERK: Vi bruker flere biblioteker i vår panorering prosess for å øke mangfoldet av antistoffene tilgjengelige. I korthet bakterier…

Representative Results

I figur 1 viser skjematisk den negative panorering prosessen som vi fjernet fag bindende off-target antigener fra vårt bibliotek ved hjelp immunotubes. Vi opprinnelig startet med BSA, siden dette er et vanlig blokkeringsmiddel, og ethvert fagen som ville reagere ikke-spesifikt med dette målet ville være problematisk i fremtidige immunoanalyser. Deretter fjernet vi permer til aggregert alpha-synuclein å eliminere fag som er reaktiv med generiske strukturer av aggregerte proteiner (dvs. et an…

Discussion

Protein variants have been shown to be involved in the progression of many neurodegenerative diseases such as Alzheimer’s, Parkinson’s, ALS and FTD1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11. Isolation of antibodies that can selectively recognize these different protein variant targets can be effective reagents to study, diagnose and potentially treat such ailments. To generate such variant specific antibodies we have developed a novel biopanning process that utilizes atomic force microscopy to monitor the progress …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble støttet av et stipend fra NIH: R21AG042066. Vi vil gjerne takke Philip Schulz for hans bidrag i å skape skjermen fange video.

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Tomlinson I and J Libraries MRC (Cambridge, England)
Sheets Library MRC (Cambridge, England)
2xYT BD Sciences 244020
Glucose Amresco 0188-2.5KG
Ampicillin Amresco 0339-25G Irritant
KM13 Helper Phage MRC (Cambridge, England)
Kanamycin OmniPur 5880 Irritant
Polyethylene Glycol 8000 OmniPur 6510 Irritant
Sodium Chloride Macron 7647-14-5
Sodium Phosphate Dibasic Amresco 0404-1KG Irritant
Potassium Chloride EMD PX1405-1 Irritant
Potassium Phosphate Monobasic Amresco 0781-500G Irritant
TG1 Cells MRC (Cambridge, England)
Luria-Bertani Agar EMD 1.10283.0500
Bovine Serum Albumin Amresco 0332-100G
STEN buffer Crystalgen Inc. 33429775
Immunotubes Thermo Scientific 470319
Mica Spruce Pine Mica 24365
Tween 20 EMD
Trypsin Sigma T-0303 Irritant
Triethylamine Sigma T-0886 Flammable
Glycerol Amresco 0854-1L Irritant
DNA Plasmid Prep Kit qiagen 27106 Irritant
Non-Fat Milk Powder Carnation
96-Well High Binding ELISA Plate Costar 3590
Anti-M13 HRP GE Healthcare Life Sciences 27-9421-01
ELISA Femto Chemiluminescence Substrate Kit Thermo Scientific 37074
Anti-TDP 43 Polyclonal Antibody ProteinTech 10782-2-AP
A/G Agarose Beads Santa Cruz Biotechnology sc-2003
HB 2151 Cells MRC (Cambridge, England)
Isopropylthiogalactoside Teknova 13325
9e10 HRP Santa Cruz Biotechnology sc-40
Nitrocellulose Membrane Biorad 162-0115 Flammable
Centrifuge Thermo Scientific Sorvall RC 6+
Nanoscope IIIa Atomic Force Microscope Veeco
AFM Probes VistaProbes T300R-10

Referências

  1. Hedieh, B., Sharareh, E., Philip, S., Michael, R. S. Isolating recombinant antibodies against specific protein morphologies using atomic force microscopy and phage display technologies. Protein Engineering Design and Selection. 19, 497-502 (2006).
  2. Emadi, S., Barkhordarian, H., Wang, M. S., Schulz, P., Sierks, M. R. Isolation of a Human Single Chain Antibody Fragment Against Oligomeric α-Synuclein that Inhibits Aggregation and Prevents α-Synuclein-induced Toxicity. Journal of Molecular Biology. 368, 1132-1144 (2007).
  3. Emadi, S., Kasturirangan, S., Wang, M. S., Schulz, P., Sierks, M. R. Detecting Morphologically Distinct Oligomeric Forms of α-Synuclein. Journal of Biological Chemistry. 284, 11048-11058 (2009).
  4. Kasturirangan, S., et al. Nanobody specific for oligomeric beta-amyloid stabilizes nontoxic form. Neurobiology of Aging. 33, 1320-1328 (2012).
  5. Kasturirangan, S., et al. Isolation and characterization of antibody fragments selective for specific protein morphologies from nanogram antigen samples. Biotechnology Progress. 29, 463-471 (2013).
  6. Zameer, A., Kasturirangan, S., Emadi, S., Nimmagadda, S. V., Sierks, M. R. Anti-oligomeric Aβ Single-chain Variable Domain Antibody Blocks Aβ-induced Toxicity Against Human Neuroblastoma Cells. Journal of Molecular Biology. 384, 917-928 (2008).
  7. Boddapati, S., Levites, Y., Sierks, M. R. Inhibiting β-Secretase Activity in Alzheimer’s Disease Cell Models with Single-Chain Antibodies Specifically Targeting APP. Journal of Molecular Biology. 405, 436-447 (2011).
  8. Boddapati, S., Levites, Y., Suryadi, V., Kasturirangan, S., Sierks, M. R. Bispecific Tandem Single Chain Antibody Simultaneously Inhibits β-Secretase and Promotes α-Secretase Processing of AβPP. Journal of Alzheimer’s Disease. 28, 961-969 (2012).
  9. Zhou, C., Emadi, S., Sierks, M. R., Messer, A. A Human Single-Chain Fv Intrabody Blocks Aberrant Cellular Effects of Overexpressed [alpha]-Synuclein. Mol Ther. 10, 1023-1031 (2004).
  10. Vanden Broeck, L., Callaerts, P., Dermaut, B. TDP-43-mediated neurodegeneration: towards a loss-of-function hypothesis. Trends in Molecular Medicine. 20, 66-71 (2014).
  11. Akamatsu, M., et al. A unique mouse model for investigating the properties of amyotrophic lateral sclerosis-associated protein TDP-43, by in utero electroporation. Neuroscience Research. 77, 234-241 (2013).
  12. Keage, H. A., et al. TDP-43 in the Population: Prevalence and Associations with Dementia and Age. Journal of Alzheimer’s Disease. 42, 641-650 (2014).
  13. Honda, D., et al. The ALS/FTLD-related RNA-binding proteins TDP-43 and FUS have common downstream RNA targets in cortical neurons. FEBS Open Bio. 4, 1-10 (2014).
  14. Baloh, R. H. TDP-43: the relationship between protein aggregation and neurodegeneration in amyotrophic lateral sclerosis and frontotemporal lobar degeneration. FEBS Journal. 278, 3539-3549 (2011).
  15. Ling, S. -. C., Polymenidou, M., Cleveland, D. W. . Converging Mechanisms in ALS and FTD: Disrupted RNA and Protein. 79, 416-438 (2013).
  16. Sasaki, S., Takeda, T., Shibata, N., Kobayashi, M. Alterations in subcellular localization of TDP-43 immunoreactivity in the anterior horns in sporadic amyotrophic lateral sclerosis. Neuroscience Letters. 478, 72-76 (2010).
  17. Robertson, J., et al. Lack of TDP-43 abnormalities in mutant SOD1 transgenic mice shows disparity with ALS. Neuroscience Letters. 420, 128-132 (2007).
  18. Shan, X., Vocadlo, D., Krieger, C. Mislocalization of TDP-43 in the G93A mutant SOD1 transgenic mouse model of ALS. Neuroscience Letters. 458, 70-74 (2009).
  19. Yamashita, T., Hideyama, T., Teramoto, S., Kwak, S. The abnormal processing of TDP-43 is not an upstream event of reduced ADAR2 activity in ALS motor neurons. Neuroscience Research. 73, 153-160 (2012).
  20. Dong, H., et al. Curcumin abolishes mutant TDP-43 induced excitability in a motoneuron-like cellular model of ALS. Neurociência. 272, 141-153 (2014).
  21. Sheets, M. D., et al. Efficient construction of a large nonimmune phage antibody library: The production of high-affinity human single-chain antibodies to protein antigens. Proceedings of the National Academy of Sciences. 95, 6157-6162 (1998).
  22. Hairul Bahara, N. H., et al. Phage display antibodies for diagnostic applications. Biologicals. 41, 209-216 (2013).
  23. Azzazy, H. M. E., Highsmith, W. E. Phage display technology: clinical applications and recent innovations. Clinical Biochemistry. 35, 425-445 (2002).
  24. Zhang, X., et al. Rapid isolation of single-chain antibodies from a human synthetic phage display library for detection of Bacillus thuringiensis (Bt). Cry1B toxin. Ecotoxicology and Environmental Safety. 81, 84-90 (2012).
  25. Liu, H., et al. Selection and characterization of single-chain recombinant antibodies against spring viraemia of carp virus from mouse phage display library. Journal of Virological Methods. 194, 178-184 (2013).
  26. Cukkemane, N., Bikker, F. J., Nazmi, K., Brand, H. S., Veerman, E. C. I. Identification and characterization of a salivary-pellicle-binding peptide by phage display. Archives of Oral Biology. 59, 448-454 (2014).
  27. Adamson, C. S., et al. Novel single chain antibodies to the prion protein identified by phage display. Virology. 358, 166-177 (2007).
  28. Hebron, M. L., et al. Parkin Ubiquitinates Tar-DNA Binding Protein-43 (TDP-43) and Promotes Its Cytosolic Accumulation via Interaction with Histone Deacetylase 6 (HDAC6). Journal of Biological Chemistry. 288, 4103-4115 (2013).
  29. Wang, M. S., Zameer, A., Emadi, S., Sierks, M. R. Characterizing Antibody Specificity to Different Protein Morphologies by AFM. Langmuir. 25, 912-918 (2008).
  30. Williams, S., Sakic, B., Hoffman, S. A. Circulating brain-reactive autoantibodies and behavioral deficits in the MRL model of CNS lupus. Journal of Neuroimmunology. 218, 73-82 (2010).
  31. Jończyk, E., Kłak, M., Międzybrodzki, R., Górski, A. The influence of external factors on bacteriophages—review. Folia Microbiol. 56, 191-200 (2011).
  32. Hammers, C. M., Stanley, J. R. Antibody Phage Display: Technique and Applications. J Invest Dermatol. 134, e17 (2014).
check_url/pt/52584?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Williams, S. M., Venkataraman, L., Tian, H., Khan, G., Harris, B. T., Sierks, M. R. Novel Atomic Force Microscopy Based Biopanning for Isolation of Morphology Specific Reagents against TDP-43 Variants in Amyotrophic Lateral Sclerosis. J. Vis. Exp. (96), e52584, doi:10.3791/52584 (2015).

View Video