Summary

מדידה של תאי יון שטפי שימוש בטכניקת microelectrode העצמית התייחסות יון סלקטיבי

Published: May 03, 2015
doi:

Summary

Transporters in cell membranes allow differential segregation of ions across cell membranes or cell layers and play crucial roles during tissue physiology, repair and pathology. We describe the ion-selective self-referencing microelectrode that allows the measurement of specific ion fluxes at single cells and tissues in vivo.

Abstract

תאים מבעלי חיים, צמחים ותאים בודדים מוקפים גדר נקראת קרום התא המפריד בין הציטופלסמה מבחוץ. שכבות תאים כגון epithelia גם יוצרות מחסום שמפריד בתוך מבחוץ או תאים שונים של יצורים רב-תאיים. תכונה מרכזית של חסמים אלה היא חלוקת ההפרש של יונים על פני קרום תא או שכבות תאים. שני נכסים לאפשר חלוקה זו: 1) קרומים וepithelia להציג חדירות סלקטיבית ליונים מסוימים; 2) יונים מועברים באמצעות משאבות פני קרום תא ותא שכבות. מאפיינים אלה ממלאים תפקידים חיוניים בשמירה על הפיסיולוגיה רקמה ולפעול כאיתות רמזים לאחר נזק, במהלך תיקון, או תחת מצב פתולוגי. Microelectrode התייחסות עצמי יון סלקטיבי מאפשר מדידות של נתיבים ספציפיים של יונים כמו סידן, אשלגן או נתרן ברמות תא ורקמה אחת. Microelectrode מכיל קוקטייל ionophore שהואסלקטיבי חדיר ליונים מסוימים. פתרון המילוי הפנימי מכיל ריכוז קבוצה של היון של עניין. הפוטנציאל החשמלי של microelectrode נקבע על ידי הריכוז מחוץ ליון. כיון הריכוז משתנה, הפוטנציאל של microelectrode משתנה כפונקציה של היומן של פעילות היון. כשעברתי הלוך ושוב ליד מקור או כיור של היון (כלומר במפל ריכוזים בשל שטף יון) את פוטנציאל microelectrode נע במשרעת פרופורציונלית לשטף יון / השיפוע. המגבר מגביר את אות microelectrode והתפוקה נרשמה במחשב. שטף היון אז יכול להיות מחושב על ידי החוק של Fick של דיפוזיה באמצעות תנודות אלקטרודה פוטנציאליות, הטיול של microelectrode, ופרמטרים נוספים כגון ניידות היון הספציפית. במאמר זה, אנו מתארים בפירוט את המתודולוגיה למדידה והנתיבים יון תאיים באמצעות microelectrode התייחסות עצמי יון סלקטיביd להציג כמה תוצאות נציג.

Introduction

כל התאים של בעלי החיים מוקפים בקרום bilayer שומנים שמפריד בין הציטופלסמה מהסביבה החיצונית. התא שומר על פוטנציאל הממברנה חשמל, שלילי בפנים, בתחבורה פעילה של יוני 1. פוטנציאל הממברנה הוא מקור אנרגיה אצור בו התא יכול לנצל להפעלת מכשירים מולקולריים שונים בקרום 2. יש נוירונים ותאים רגישים אחרים פוטנציאלי קרום גדולים. פתיחה מהירה של תעלות נתרן מתמוטטת הקרום פוטנציאלי (שלילת קוטביות) ומייצרת פוטנציאל הפעולה שמועבר לאורכו של נוירון 2. מלבד שינויים חשמליים מהירים אלה, רקמות ואיברים רבים ליצור ולשמור על פוטנציאל חשמלי לטווח ארוך משמעותי. לדוגמא, העור וepithelia קרני ליצור ולשמור על פוטנציאל טרנס-אפיתל וזרמים חשמליים תאיים על ידי שאיבה כיוונית של יונים (בעיקר נתרן כלורי ו) 3.

אוהל "> בעוד מדידות של זרם חשמלי תאי אנדוגני באמצעות הבדיקה הרוטטת 4-6 ומדידות של פוטנציאלי קרום או טרנס-אפיתל באמצעות מערכת microelectrode 7-10 לאפשר מדידה של הפרמטרים חשמליים של קרום תא ושכבות תאי אפיתל, שהם נותנים לא אינדיקציה למיני היון המעורב.

Microelectrodes עם ionophore סלקטיבית יכולה למדוד ריכוז יון ספציפי בפתרון. מילויים יון או שטף ניתן היו למדוד עם שתיים או יותר אלקטרודות בעמדות שונות. עם זאת, להיסחף המתח הפנימי של כל בדיקה יהיה שונה, גורם למדידות מדויקות או אפילו גילוי של שיפוע שלא היה נוכח. אלקטרודה אחת השתמשה במצב "התייחסות עצמית" לפיו הוא נע בתדירות נמוכה בין שתי נקודות פותרת בעיה זו. עכשיו שטף היון שניתן לראות על הרקע להיסחף אות איטית יחסית ויציב (ראה איור 3). </p>

מערכת מדידת היון רגיש משתמשת microelectrodes התייחסות עצמית יון סלקטיבי כדי לזהות נתיבים תאיים קטנים של יונים קרובים לרקמות או תאים בודדים. המערכת מורכבת ממגבר שמעבד את האות מmicroelectrode ומנוע צעד מיקרו והנהג לשלוט בתנועה של microelectrode. Microelectrode יון סלקטיבי ואת האלקטרודה ההתייחסות שיסגור את המעגל מחוברים למגבר דרך headstage מראש מגבר (איור 1 א). תוכנת מחשב קובעת את הפרמטרים של תנועת microelectrode (תדירות, מרחק) וגם רושמת את התפוקה של המגבר. מנוע צעד שולט על תנועת microelectrode באמצעות micropositioner תלת-ממדי. תדירות נמוכה הרוטטת microelectrode יון סלקטיבי פותחה לראשונה בשנת 1990 למדידת שטף סידן ספציפי 11. כמו גם סידן, קוקטיילים ionophore מסחרי נגישים זמינים כעת לעשות MICRoelectrodes רגיש לנתרן, כלוריד, אשלגן, מימן, מגנזיום, ניטראט, אמוניום, פלואוריד, ליתיום או כספית.

בעיקרון, טכניקת microelectrode יון סלקטיבי התייחסות העצמית ממירה את הפעילות של יון ספציפי המומס בתמיסה לפוטנציאל חשמלי, הניתן למדידה על ידי מד מתח. קוקטייל ionophore הוא נוזל immiscible שלב (אורגני, lipophilic) עם תכונות החלפת יונים. Ionophore סלקטיבי קומפלקסים (נקשר) יונים ספציפיים הפיך ומעביר אותם בין התמיסה המימית הכלולות בmicroelectrode (אלקטרוליט) והתמיסה המימית שבי microelectrode הוא שקוע (1D איור). העברת יון זה מובילה לשיווי משקל אלקטרוכימיים ווריאציה של הפוטנציאל החשמלי בין microelectrode ואת האלקטרודה ההתייחסות נמדדת על ידי מד המתח. המתח הוא פרופורציונאלי ללוגריתם של פעילות היון הספציפית לפי דואר נרנסטquation מאפשר החישוב של ריכוז היון (איור 2 א 'וב').

נכון לעכשיו, כמה מערכות מאפשרות מדידה של שטף יון באמצעות מושג או עיקרון דומה. לדוגמא, טכניקת אלקטרודה סריקת יון סלקטיבי (סת) 12,13 או טכניקת microelectrode יון שטף הערכה (MIFE) שפותחה על ידי ניומן וShabala 14-16 הם זמינים מסחריים ושימוש נרחב על ידי קהילת המחקר כדי לקבוע יון ספציפי נתיבים המתרחשים בקרום תא ורקמה במגוון רחב של בעלי חיים, צמחים ודגמי תא חי בודדים. microelectrodes יון סלקטיבי כבר משמשת למדידת מימן, אשלגן וסידן על פני שטף שורשי צמח 17, שטף כלוריד בעורקי מוח חולדה 18 ובצינורות אבקה 19, שטף מימן בתאי רשתית להחליק 20, שטף סידן בעצמות עכבר 21, יון שונים נתיבים בפטריית העובש 22 ובrבקרנית 23, ובסופו שטף סידן במהלך פצע תא בודד ריפוי 12,24. ראה גם הסקירה לקבלת מידע מפורטת על microelectrodes התייחסות העצמית יון סלקטיבי 25 הבאה.

המאמר שלהלן מתאר בפירוט כיצד להכין ולבצע מדידה של נתיבי יון תאיים אנדוגני באמצעות טכניקת microelectrode יון סלקטיבי התייחסות העצמית ברמת התא הבודד.

Protocol

1. יון סלקטיבי עצמי התייחסות microelectrode הכנה הכנת microelectrode יון סלקטיבי חום למשוך ורוסיליקט נימי קירות דקים בלי נימה (קוטר חיצוני 1.5 מ"מ, 1.12 מ"מ קוטר פנימי) באמצעות חולץ mi…

Representative Results

הראינו בעבר כי זרימת סידן מופיעה לאחר תא בודד נפצע 24. לפיכך, אנו נשאלים אם נתיבי יון אחרים להתרחש על פציעת תא בודדת. אנחנו השתמשנו בX. laevis ביצית, מודל מבוסס היטב לריפוי תא ותא בסופו 30-34 והקלטת אלקטרו 24,35-39. מעניין, יוני אשלגן הם יותר מרוכז בתוך X. lae…

Discussion

השלבים הקריטיים ביותר למדידת הצלחה של נתיבי יון תאיים in vivo הם: ההפחתה של הרעש, הייצור הנכון של האלקטרודה microelectrodes יון סלקטיבי וההתייחסות, והמיצוב של המדגם ושני אלקטרודות.

על מנת למזער את הרעש, מערכת ההקלטה צריכה להיות בכלוב פ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Science Foundation grant MCB-0951199, and in part by the NIH grant EY01910, California Institute of Regenerative Medicine grants RB1-01417 and by the Fundação para a Ciência e Tecnologia (FCT) grant SFRH/BD/87256/2012.

Materials

IonAmp   BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA none amplifier created by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
IonAmp32   BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA none software created by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Headstage pre-amplifier  BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA INA116 BSR Voltage Follower INA116, designed by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
MicroStep Driver  BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA none three MicroStep drivers are required for X, Y and Z-positioning; created by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Manual micropositioner   World Precision Instruments  Model KITE-R Similar system can be purchased from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Magnetic stand    World Precision Instruments Model M10 Similar system can be purchased from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Vibration isolation table   Newport Inc.      Model VW-3036-OPT-023040 Similar system can be purchased from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Part of three dimentional micropositioner: angle bracket, 90°, slotted faces Newport Inc.      Model 360-90 Assemblage of the three dimantionnal micropositionner requires also Three electric rotary motors for X, Y, Z control, MPH-1 mounting arm with MCA-2 adjustable-angle post and Various Newport connectors and screws to bolt onto vibration table
Part of three dimentional micropositioner: Peg-Joining Dovetail Stage 0.5 inch X Travel Newport Inc.      460PD-X none
Part of three dimentional micropositioner: Quick-Mount Linear Stage, 0.5 inch XY Travel Newport Inc. 460A-XY none
Kwik-Fil thin walled borosilicate glass capillaries without filament  World Precision Instruments  TW150-4 none
Electrode puller  Narishige  PC-10 none
Metal rack Made in-house none Metal electrode holder made in-house by drilling 2 mm wide holes half centimeter spaced in a 10cm by 15cm rectangular base of steel
Oven QL Model 10 Lab Oven none
Silanization solution I  Sigma-Aldrich 85126 Hazardous, handle as recommended by provider 
Glass Petri dish; Pyrex Fisher Scientific 316060 none
Electrode/micropipette storage jar World Precision Instruments  E215 none
Glass dessicator Fisher Scientific 08-595E Contains Drierite dessicant (W.A. Hammond Drierite Co. Ltd, Xenia, OH, USA). Place petroleum jelly on the seal to make it airtight.
Plastic Pasteur pipette  Fisher Scientific 11597722 none
Bunsen burner Fisher Scientific S97329 none
Microscope slide Sigma-Aldrich S8902 none
Straight microelectrode holder Warner Instruments QSW-A15P with a gold 1 mm male connector and Ag/AgCl wire
Straight microelectrode holder  World Precision Instruments MEH3S with a AgCl(Ag+)pellet inside and a gold 2 mm male connector 
6 cm Petri dish VWR 60872-306 none
Nitex mesh Dynamic Aqua-Supply Ltd. NTX750 none
Glue; Loctite epoxy VWR 500043-451 Mix glue and hardener in equal parts in a plastic weighing boat and mix thoroughly. Sets quickly but leave at RT for 24 h for full curing
Deionized water  Sigma-Aldrich 99053 none
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653 none
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P9333 none
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C1016 none
Magnesium Chloride Sigma-Aldrich M8266 none
Hepes Sigma-Aldrich H3375 none
Sodium Hydroxyde Sigma-Aldrich S8045 none
Potassium Acetate Sigma-Aldrich P1190 none
Agarose Sigma-Aldrich A9539 none

Referências

  1. Weber, W. M., Liebold, K. M., Clauss, W. Amiloride-sensitive Na+ conductance in native Xenopus oocytes. Biochimica et biophysica acta. 1239, 201-206 (1995).
  2. McCaig, C. D., Song, B., Rajnicek, A. M. Electrical dimensions in cell science. Journal of cell science. 122, 4267-4276 (2009).
  3. Zhao, M. Electrical fields in wound healing-An overriding signal that directs cell migration. Seminars in cell & developmental biology. 20, 674-682 (2009).
  4. Jaffe, L. F., Nuccitelli, R. An ultrasensitive vibrating probe for measuring steady extracellular currents. The Journal of cell biology. 63, 614-628 (1974).
  5. Reid, B., Nuccitelli, R., Zhao, M. Non-invasive measurement of bioelectric currents with a vibrating probe. Nature protocols. 2, 661-669 (2007).
  6. Reid, B., Zhao, M. Measurement of bioelectric current with a vibrating probe. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).
  7. Neher, E., Sakmann, B. Single-channel currents recorded from membrane of denervated frog muscle fibres. Nature. 260, 799-802 (1976).
  8. Moore, J. W. The patch clamp: single-channel recording. Science. 224, 50-51 (1984).
  9. Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. Patch clamp recording of ion channels expressed in Xenopus oocytes. Journal of visualized experiments. , (2008).
  10. McCaig, C. D., Robinson, K. R. The ontogeny of the transepidermal potential difference in frog embryos. Developmental biology. 90, 335-339 (1982).
  11. Kuhtreiber, W. M., Jaffe, L. F. Detection of extracellular calcium gradients with a calcium-specific vibrating electrode. The Journal of cell biology. 110, 1565-1573 (1990).
  12. Cai, G., Cresti, M., Moscatelli, A. The use of the vibrating probe technique to study steady extracellular currents during pollen germination and tube growth. Fertilisation in Higher Plants: molecular and cytological aspects. , 235-252 (1999).
  13. Kunkel, J. G., Xu, Y., Shipley, A. M., Feijó, J. A. The use of non-invasive ion-selective microelectrode techniques for the study of plant development. Plant Electrophysiology – Theory and Methods. (ed Volkov AG. , 109-137 (2006).
  14. Ordonez, N. M., Shabala, L., Gehring, C., Shabala, S. Noninvasive microelectrode ion flux estimation technique (MIFE) for the study of the regulation of root membrane transport by cyclic nucleotides. Methods in molecular biology. 1016, 95-106 (2013).
  15. Tegg, R. S., Melian, L., Wilson, C. R., Shabala, S. Plant cell growth and ion flux responses to the streptomycete phytotoxin thaxtomin A: calcium and hydrogen flux patterns revealed by the non-invasive MIFE technique. Plant & cell physiology. 46, 638-648 (2005).
  16. Newman, I. A. Ion transport in roots: measurement of fluxes using ion-selective microelectrodes to characterize transporter function. Plant, cell & environment. 24, 1-14 (2001).
  17. Kochian, L. V., Shaff, J. E., Kuhtreiber, W. M., Jaffe, L. F., Lucas, W. J. Use of an extracellular, ion-selective, vibrating microelectrode system for the quantification of K(+), H (+), and Ca (2+) fluxes in maize roots and maize suspension cells. Planta. 188, 601-610 (1992).
  18. Doughty, J. M., Langton, P. D. Measurement of chloride flux associated with the myogenic response in rat cerebral arteries. The Journal of physiology. 534, 753-761 (2001).
  19. Messerli, M. A., Smith, P. J., Lewis, R. C., Robinson, K. R. Chloride fluxes in lily pollen tubes: a critical reevaluation. The Plant journal : for cell and molecular biology. 40, 799-812 (2004).
  20. Molina, A. J., et al. Neurotransmitter modulation of extracellular H+ fluxes from isolated retinal horizontal cells of the skate. The Journal of physiology. 560, 639-657 (2004).
  21. Marenzana, M., Shipley, A. M., Squitiero, P., Kunkel, J. G., Rubinacci, A. Bone as an ion exchange organ: evidence for instantaneous cell-dependent calcium efflux from bone not due to resorption. Bone. 37, 545-554 (2005).
  22. Lew, R. R. Ionic currents and ion fluxes in Neurospora crassa hyphae. Journal of experimental botany. 58, 3475-3481 (2007).
  23. Vieira, A. C., et al. Ionic components of electric current at rat corneal wounds. PloS one. 6, e17411 (2011).
  24. Luxardi, G., Reid, B., Maillard, P., Zhao, M. Single cell wound generates electric current circuit and cell membrane potential variations that requires calcium influx. Integrative biology : quantitative biosciences from nano to macro. 6, 662-672 (2014).
  25. Smith, P. J. S., Sanger, R. H., Messerli, M. A., Michael, A. C., Borland, L. H. . Electrochemical Methods for Neuroscience. , (2007).
  26. Smith, P. J., Hammar, K., Porterfield, D. M., Sanger, R. H., Trimarchi, J. R. Self-referencing, non-invasive, ion selective electrode for single cell detection of trans-plasma membrane calcium flux. Microscopy research and technique. 46, 398-417 (1999).
  27. Messerli, M. A., Smith, P. J. Construction theory, and practical considerations for using self-referencing of Ca(2+)-selective microelectrodes for monitoring extracellular Ca(2+) gradients. Methods in cell biology. 99, 91-111 (2010).
  28. Chambers, J., Hastie, T., Pregibon, D., Momirović, K., Mildner, V. Ch. 48. Compstat. , 317-321 (1990).
  29. Chambers, J. M., Cleveland, W. S., Kleiner, B., Tukey, P. A. . Graphical methods for data analysis. , (1983).
  30. Burkel, B. M., Benink, H. A., Vaughan, E. M., von Dassow, G., Bement, W. M. A Rho GTPase signal treadmill backs a contractile array. Developmental cell. 23, 384-396 (2012).
  31. Bement, W. M., Mandato, C. A., Kirsch, M. N. Wound-induced assembly and closure of an actomyosin purse string in Xenopus oocytes. Current biology : CB. 9, 579-587 (1999).
  32. Mandato, C. A., Bement, W. M. Contraction and polymerization cooperate to assemble and close actomyosin rings around Xenopus oocyte wounds. The Journal of cell biology. 154, 785-797 (2001).
  33. Benink, H. A., Bement, W. M. Concentric zones of active RhoA and Cdc42 around single cell wounds. The Journal of cell biology. 168, 429-439 (2005).
  34. Simon, C. M., Vaughan, E. M., Bement, W. M., Edelstein-Keshet, L. Pattern formation of Rho GTPases in single cell wound healing. Molecular biology of the cell. 24, 421-432 (2013).
  35. Petersen, C. C., Dupont, G. The initiation of a calcium signal in Xenopus oocytes. Cell calcium. 16, 391-403 (1994).
  36. Horisberger, J. D., Lemas, V., Kraehenbuhl, J. P., Rossier, B. C. Structure-function relationship of Na,K-ATPase. Annual review of physiology. 53, 565-584 (1991).
  37. Miledi, R. A calcium-dependent transient outward current in Xenopus laevis oocytes. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Containing papers of a Biological character. Royal Society. , 491-497 (1982).
  38. Miledi, R., Parker, I. Chloride current induced by injection of calcium into Xenopus oocytes. The Journal of physiology. 357, 173-183 (1984).
  39. Parker, I., Miledi, R. A calcium-independent chloride current activated by hyperpolarization in Xenopus oocytes. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Containing papers of a Biological character. Royal Society. 233, 191-199 (1988).
  40. Costa, P. F., Emilio, M. G., Fernandes, P. L., Ferreira, H. G., Ferreira, K. G. Determination of ionic permeability coefficients of the plasma membrane of Xenopus laevis oocytes under voltage clamp. The Journal of physiology. 413, 199-211 (1989).
  41. Adams, D. S., Levin, M. General principles for measuring resting membrane potential and ion concentration using fluorescent bioelectricity reporters. Cold Spring Harbor protocols. 2012, 385-397 (2012).
  42. Porterfield, D. M. Measuring metabolism and biophysical flux in the tissue, cellular and sub-cellular domains: recent developments in self-referencing amperometry for physiological sensing. Biosensors. 22, 1186-1196 (2007).
  43. McLamore, E. S., et al. A self-referencing glutamate biosensor for measuring real time neuronal glutamate flux. Journal of neuroscience methods. 189, 14-22 (2010).
  44. Yin, M., et al. Highly sensitive and fast responsive fiber-optic modal interferometric pH sensor based on polyelectrolyte complex and polyelectrolyte self-assembled nanocoating. Analytical and bioanalytical chemistry. 399, 3623-3631 (2011).
  45. Chatni, M. R., Porterfield, D. M. Self-referencing optrode technology for non-invasive real-time measurement of biophysical flux and physiological sensing. The Analyst. 134, 2224-2232 (2009).
  46. McLamore, E. S., Jaroch, D., Chatni, M. R., Porterfield, D. M. Self-referencing optrodes for measuring spatially resolved, real-time metabolic oxygen flux in plant systems. Planta. 232, 1087-1099 (2010).
  47. McLamore, E. S., et al. A self referencing platinum nanoparticle decorated enzyme-based microbiosensor for real time measurement of physiological glucose transport. Biosensors & bioelectronics. 26, 2237-2245 (2011).
check_url/pt/52782?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Luxardi, G., Reid, B., Ferreira, F., Maillard, P., Zhao, M. Measurement of Extracellular Ion Fluxes Using the Ion-selective Self-referencing Microelectrode Technique. J. Vis. Exp. (99), e52782, doi:10.3791/52782 (2015).

View Video