Summary

Järnklorid-inducerad Trombos musmodell på Carotid Artery och tarmkäx Vessel

Published: June 29, 2015
doi:

Summary

The FeCl3 induced thrombosis model in mice is described herein. A method to monitor thrombus growth by intravital microscopy observation on a mesenteric vessel and by blood flow measurement in the carotid artery is presented.

Abstract

Severe thrombosis and its ischemic consequences such as myocardial infarction, pulmonary embolism and stroke are major worldwide health issues. The ferric chloride injury is now a well-established technique to rapidly and accurately induce the formation of thrombi in exposed veins or artery of small and large diameter. This model has played a key role in the study of the pathophysiology of thrombosis, in the discovery and validation of novel antithrombotic drugs and in the understanding of the mechanism of action of these new agents. Here, the implementation of this technique on a mesenteric vessel and carotid artery in mice is presented. The method describes how to label circulating leukocytes and platelets with a fluorescent dye and to observe, by intravital microscopy on the exposed mesentery, their accumulation at the injured vessel wall which leads to the formation of a thrombus. On the carotid artery, the occlusion caused by the clot formation is measured by monitoring the blood flow with a Doppler probe.

Introduction

Studiet av de mekanismer som är involverade i utvecklingen av trombos och utvärdera effektiviteten av antitrombotiska läkemedel kräver väletablerad experimentella djurmodeller. Stora djurmodeller var de första att använda eftersom de ger stora fartyg mer lika människor än gnagare 1. Men höga kostnader, de större anläggningar som krävs och svårigheten att manipulera dem genetiskt finns stora nackdelar med deras användning och stora djur är nu begränsad till sena prekliniska studier gång preliminära tester på gnagare har gett entydiga resultat 2. Med stora tillgången av transgena och knockout stammar och deras lilla storlek som minimerar mängden antitrombotiska läkemedel som krävs för in vivo-testning, möss används främst för trombos forskning. Därför har flera modeller av trombotiska störningar utvecklats hos möss 3.

Många etablerade trombosmodeller störa Intimett skikt av kärlväggen, följt av exponering av sub endoteliala extracellulära matrisen till blodflödet inducera bildning av blodproppar 4. Den tromber kan resultera från exponering av kollagen som utlöser trombocyter aktivering och / eller från exponering av vävnadsfaktor som aktiverar koagulationskaskaden 5. Flera tekniker används därefter för att uppnå den initiala kärlskada. Pierangeli et al. Utvecklat en mekanisk störning modell med en mikro verktyget på lårbensvenen 6. Kikushi et al., Beskrivs en modell som består i administration av en bild reaktiv förening (Rose Bengal), som ansamlas i lipiddubbelskiktet i endoteliala celler följt av den specifika excitering av kärlväggen av intresse med grönt ljus (540 nm) 7. Skadan kan också induceras genom en kort högintensiv puls laserbelysning 8. En annan teknik för det första fastställts på halspulsådern hos råttorbestår i lokal applicering av ferriklorid (FeCl3) 9. I detta fall är de kärl denudation resultat från fria radikaler som genereras av FeCl3 som förorsakar lipidperoxidation och destruktion av endotelceller 10. Skadan leder till uttryck av flera adhesionsmolekyler utlöser trombocytvidhäftning och -aggregation samt leukocyter rekrytering. Det har visats att leukocyter, särskilt neutrofiler, spelar en avgörande roll i aktiveringen av blodkoagulationskaskaden leder till trombos 11. Denna metod är väl lämpad att återge koagulationskaskaden; Utredarna måste hålla i minnet att det i denna musmodell är trombos typiskt induceras hos friska kärl medan trombos hos människor främst förekommer i sjuka t.ex.. aterosklerotiska kärl.

Eftersom denna modell är mycket enkel att implementera och är också effektivt i möss, är det nu används mest trombos lägel för små djur in vivo-studier. Dessutom erbjuder denna teknik möjligheten att inducera bildningen av tromber i ett antal olika kärl. Target fartyg kan vara artärer eller vener med stor diameter (carotid, lårbens, hålvenen) eller liten diameter (krös, cremaster) 12-14. På senare tid har det också används på den proximala mellersta cerebralartären för att utveckla en modell för stroke 15. Det trombosbildning kan observeras direkt genom intravital mikroskopi efter fluorescensmärkning av trombocyter och leukocyter eller övervakas genom mätning av blodflödesminskning med en temperatursond eller en dopplersond 12,16,17. Flera parametrar såsom ocklusion tid, trombbildning tid eller trombstorleken kan sedan undersökas. De fysiologiska skillnader mellan fartygen undersökte medför betydande variationer i tromber erhållits. Därför utredare väljer oftast målkärlet enligt parametrar som de vill measure och / eller sjukdomen inställning de vill undersöka. Vanligtvis är den modell på halspulsådern mer relevant för forskning om aterotrombos i samband med hjärtinfarkt eller stroke, medan studier på hålvenen är mer relevanta för forskning om djup ventrombos. Tillgängligheten av de olika fartygen avgör också den metod som används för att mäta blodproppar tillväxt. Till exempel, de mesenteriska fartyg är lätta att komma åt att göra denna modell väl lämpad för intravital mikroskopisk observation och studiet av dynamiken i blodproppsbildning. Den halspulsådern är mindre tillgänglig men större möjliggör blodflödesmätningar och ger en utmärkt modell för att studera ocklusiv trombos.

Den järnklorid inducerade trombos modell har gett enorma framsteg i förståelsen av denna patologi. Det har använts i många studier som fokuserar på rollen som von Willebrand-faktor i trombosbildning 18,19. I kombination med genetisk modificering tekniker, har det tillät identifieringen av många specifika genen involverad i trombotiska störningar. Lamrani et al., till exempel har visat att en knock-in för JAK2 V617F genen är associerad med en accelererande bildning av instabila koagel 20. Zhang et al. Har undersökt fysiologiska konsekvenserna av P2Y12 trombocytreceptor det och visade att transgena möss som överuttrycker specifikt denna receptor i blodplättar endast visade en snabbare och stabilare blodproppsbildning i mesenterica skadade med FeCl3 21. Den avgörande roll vävnadstyp (tPA) och urokinas-plasminogenaktivator (uPA) i processen fibrinnedbrytningsprodukter har också undersökts i denna metod 22. Dessutom denna modell ger också ett enkelt och exakt sätt att testa de fibrinolytiska kapaciteten hos många nya läkemedel in vivo. Exempelvis har Wang et al., Används denna modell för the prekliniska validering av en ny rekombinant plasminogenaktivator riktad mot aktiverade blodplättar 23. Denna metod gjorde det också möjligt validering av terapeutiska proteiner isolerade från saliv av fästingar, vampyr fladdermöss, och myggor eller från giftet av ormar med särskild identifiering av målet 24-27. Dessa exempel visar mångsidigheten hos den järnklorid modellen. I den här artikeln fokuserar vi på två metoder och studera järnklorid inducerad trombos på två olika fartygstyp; mesenteriska fartyg och halspulsådern.

Protocol

Alla experiment på djur har godkänts av Alfred medicinsk forskning och utbildning Precinct Animal etikkommitté (E / 1534/2015 / B). Alla kirurgiska manipulationer utfördes under full narkos och djuren inte upplever smärta vid något skede. Alla beskrivna experimenten är icke-återhämtning. 1. Förberedelse Skär tunna band av filterpapper (1 mm x 2 mm). Färskt framställa två lösningar av ferriklorid av 4% (vikt / volym) och 6% (vikt / vol) utspäddes i avjonis…

Representative Results

Den fluorescerande intravital mikroskopi observation av tarmkäxet kommer att avslöja ansamling av Rhodamine 6G märkta trombocyter och leukocyter längs kärlväggen skadas av FeCl3. Den gradvisa bildningen av en partiell tromb övervakas i en 200 | am tarmkäxet kärlet (fig 1). En tromb visas långsamt och är tydligt identifierbara efter den första minuten av exponering för FeCl3 (Figur 1, t = 60 sekunder). 40 sekunder efter avlägsnandet av filterpapper ind…

Discussion

Den järnklorid inducerade trombos modell är ett utmärkt forskningsverktyg. Som visas i denna studie, är det extremt lätt att genomföra och när de används i kombination med intravital mikroskopi eller Doppler flödesmätare, ger det en bra realtidsövervakning av blodproppsbildning. Ställa in exponeringstiden och koncentrationen av FeCl3, erbjuder det också möjlighet att producera antingen icke-ocklusiva eller ocklusiva tromber.

Emellertid har denna metod också vissa be…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka för teknisk support från Joy Yao och Dr. Karen Alt, liksom finansiering från NHMRC och NHF.

Materials

Whatman chromatography paper GE Healthcare 3030917
Iron (III) chloride 40 % (w/v) VWR 24212.298
Rhodamine 6G Sigma R4127
Inverted microscope  Olympus IX81
Digital black-and-white camera  Olympus XM10
Doppler flowmeter Transonic TS420
Nano-doppler flow probe Transonic 0.5 PBS
Ketamine Hospira  0409-2051-05
Xylazine (Rampun) Bayer 75313 
Petri dish Sarstedt 82.1472
Insulin syringe (29 G) BD Ultra-Fine 326103
Cotton tipped applicators BSN medical 211827A
Dynek dysilk sutures Dynek Pty Ltd CS30100
Dulbecco's phosphate buffer saline (PBS) Gibco life technologies 21600-069
Heating pad Kirchner T60

Referências

  1. Leadley, R. J., Chi, L., Rebello, S. S., Gagnon, A. Contribution of in vivo models of thrombosis to the discovery and development of novel antithrombotic agents. J Pharmacol Toxicol Methods. 43 (2), 101-116 (2000).
  2. Johnson, G. J., Griggs, T. R., Badimon, L. The utility of animal models in the preclinical study of interventions to prevent human coronary artery restenosis: analysis and recommendations. On behalf of the Subcommittee on Animal, Cellular and Molecular Models of Thrombosis and Haemostasis of the Scientific and Standardization Committee of the International Society on Thrombosis and Haemostasis. Thromb Haemost. 81 (5), 835-843 (1999).
  3. Day, S. M., Reeve, J. L., Myers, D. D., Fay, W. P. Murine thrombosis models. Thromb Haemost. 92 (3), 486-494 (2004).
  4. Sachs, U. J. H., Nieswandt, B. In vivo thrombus formation in murine models. Circ Res. 100 (7), 979-991 (2007).
  5. Furie, B., Furie, B. C. Mechanisms of thrombus formation. N Engl J Med. 359 (9), 938-949 (2008).
  6. Pierangeli, S. S., Liu, X. W., Barker, J. H., Anderson, G., Harris, E. N. Induction of thrombosis in a mouse model by IgG, IgM and IgA immunoglobulins from patients with the antiphospholipid syndrome. Thromb Haemost. 74 (5), 1361-1367 (1995).
  7. Kikuchi, S., Umemura, K., Kondo, K., Saniabadi, A. R., Nakashima, M. Photochemically induced endothelial injury in the mouse as a screening model for inhibitors of vascular intimal thickening. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 18 (7), 1069-1078 (1998).
  8. Rosen, E. D., Raymond, S., et al. Laser-induced noninvasive vascular injury models in mice generate platelet- and coagulation-dependent thrombi. Am J Pathol. 158, 1613-1622 (2001).
  9. Kurz, K. D., Main, B. W., Sandusky, G. E. Rat model of arterial thrombosis induced by ferric chloride. Thromb Res. 60 (4), 269-280 (1990).
  10. Eckly, A., Hechler, B., et al. Mechanisms underlying FeCl3-induced arterial thrombosis. J Thromb Haemost. 9 (4), 779-789 (2011).
  11. Darbousset, R., et al. Involvement of neutrophils in thrombus formation in living mice. Pathol Biol (Paris). 62 (1), 1-9 (2014).
  12. Denis, C., Methia, N., et al. A mouse model of severe von Willebrand disease: defects in hemostasis and thrombosis). Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (16), 9524-9529 (1998).
  13. Wang, X., Hagemeyer, C. E., et al. Novel single-chain antibody-targeted microbubbles for molecular ultrasound imaging of thrombosis: validation of a unique noninvasive method for rapid and sensitive detection of thrombi and monitoring of success or failure of thrombolysis in mice. Circulation. 125 (25), 3117-3126 (2012).
  14. Wang, X., Smith, P. L., Hsu, M. -. Y., Ogletree, M. L., Schumacher, W. A. Murine model of ferric chloride-induced vena cava thrombosis: evidence for effect of potato carboxypeptidase inhibitor. J Thromb Haemost. 4 (2), 403-410 (2006).
  15. Karatas, H., Erdener, S. E., et al. Thrombotic distal middle cerebral artery occlusion produced by topical FeCl(3) application: a novel model suitable for intravital microscopy and thrombolysis studies. J Cereb Blood Flow Metab. 31 (6), 1452-1460 (2011).
  16. Jirousková, M., Chereshnev, I., Väänänen, H., Degen, J. L., Coller, B. S. Antibody blockade or mutation of the fibrinogen gamma-chain C-terminus is more effective in inhibiting murine arterial thrombus formation than complete absence of fibrinogen. Blood. 103 (6), 1995-2002 (2004).
  17. Dubois, C., Panicot-Dubois, L., Merrill-Skoloff, G., Furie, B., Furie, B. C. Glycoprotein VI-dependent and -independent pathways of thrombus formation in vivo. Blood. 107 (10), 3902-3906 (2006).
  18. Navarrete, A. -. M., Casari, C., et al. A murine model to characterize the antithrombotic effect of molecules targeting human von Willebrand factor. Blood. 120 (13), 2723-2732 (2012).
  19. Rayes, J., Hollestelle, M. J., et al. Mutation and ADAMTS13-dependent modulation of disease severity in a mouse model for von Willebrand disease type 2B. Blood. 115 (23), 4870-4877 (2010).
  20. Lamrani, L., Lacout, C., et al. Hemostatic disorders in a JAK2V617F-driven mouse model of myeloproliferative neoplasm. Blood. 124 (7), 1136-1145 (2014).
  21. Zhang, Y., Ye, J., et al. Increased platelet activation and thrombosis in transgenic mice expressing constitutively active P2Y12. J Thromb Haemost. 10 (10), 2149-2157 (2012).
  22. Schäfer, K., Konstantinides, S., et al. Different mechanisms of increased luminal stenosis after arterial injury in mice deficient for urokinase- or tissue-type plasminogen activator. Circulation. 106 (14), 1847-1852 (2002).
  23. Wang, X., Palasubramaniam, J., et al. Towards effective and safe thrombolysis and thromboprophylaxis: preclinical testing of a novel antibody-targeted recombinant plasminogen activator directed against activated platelets. Circ Res. 114 (7), 1083-1093 (2014).
  24. Decrem, Y., et al. Ir-CPI, a coagulation contact phase inhibitor from the tick Ixodes ricinus, inhibits thrombus formation without impairing hemostasis. J Exp Med. 206 (11), 2381-2395 (2009).
  25. Ma, D., et al. Desmolaris, a novel factor XIa anticoagulant from the salivary gland of the vampire bat (Desmodus rotundus) inhibits inflammation and thrombosis in vivo. Blood. 122 (25), 4094-4106 (2013).
  26. Lei, X., et al. Anfibatide, a novel GPIb complex antagonist, inhibits platelet adhesion and thrombus formation in vitro and in vivo in murine models of thrombosis. Thromb Haemost. 111 (2), 279-289 (2014).
  27. Waisberg, M., et al. Plasmodium falciparum infection induces expression of a mosquito salivary protein (Agaphelin) that targets neutrophil function and inhibits thrombosis without impairing hemostasis. PLoS Pathog. 10 (9), e1004338 (2014).
  28. Owens, A. P., Lu, Y., Whinna, H. C., Gachet, C., Fay, W. P., Mackman, N. Towards a standardization of the murine ferric chloride-induced carotid arterial thrombosis model. J Thromb Haemost. 9 (9), 1862-1863 (2011).
  29. Wang, X., Xu, L. An optimized murine model of ferric chloride-induced arterial thrombosis for thrombosis research. Thromb Res. 115 (1-2), 95-100 (2005).
  30. Tseng, M. T., Dozier, A., Haribabu, B., Graham, U. M. Transendothelial migration of ferric ion in FeCl3 injured murine common carotid artery. Thromb Res. 118 (2), 275-280 (2006).
  31. Bonnard, T., et al. Leukocyte mimetic polysaccharide microparticles tracked in vivo on activated endothelium and in abdominal aortic aneurysm. Acta Biomater. 10 (8), 3535-3545 (2014).
  32. Boulaftali, Y., Lamrani, L., et al. The mouse dorsal skinfold chamber as a model for the study of thrombolysis by intravital microscopy. Thromb Haemost. 107 (5), 962-971 (2012).
  33. Konstantinides, S., Schäfer, K., Thinnes, T., Loskutoff, D. J. Plasminogen activator inhibitor-1 and its cofactor vitronectin stabilize arterial thrombi after vascular injury in mice. Circulation. 103 (4), 576-583 (2001).
  34. Li, W., McIntyre, T. M., Silverstein, R. L. Ferric chloride-induced murine carotid arterial injury: A model of redox pathology. Redox Biol. 1 (1), 50-55 (2013).
check_url/pt/52838?article_type=t&slug=ferric-chloride-induced-thrombosis-mouse-model-on-carotid-artery

Play Video

Citar este artigo
Bonnard, T., Hagemeyer, C. E. Ferric Chloride-induced Thrombosis Mouse Model on Carotid Artery and Mesentery Vessel. J. Vis. Exp. (100), e52838, doi:10.3791/52838 (2015).

View Video