Summary

Etablering og karakterisering af UTI og CAUTI i en musemodel

Published: June 23, 2015
doi:

Summary

The ability to model urinary tract infections (UTI) is crucial in order to be able to understand bacterial pathogenesis and spawn the development of novel therapeutics. This work’s goal is to demonstrate mouse models of experimental UTI and catheter associated UTI that recapitulate and predict findings seen in humans.

Abstract

Urinvejsinfektioner (UTI) er meget udbredt, en væsentlig årsag til sygelighed og er i stigende grad resistente over for behandling med antibiotika. Hunner er uforholdsmæssigt ramt af UTI: 50% af alle kvinder vil have en UTI i deres levetid. Derudover 20-40% af disse kvinder, der har en indledende UTI vil lide en gentagelse med nogle lider hyppige gentagelser med alvorlig forværring af livskvaliteten, smerter og ubehag, afbrydelse af daglige aktiviteter, øget udgifter til sundhedsvæsenet, og få behandlingsmuligheder andre end langsigtede antibiotisk profylakse. Uropatogen Escherichia coli (UPEC) er den primære agens af fællesskab erhvervede UTI. Kateter-associeret UTI (CAUTI) er den mest almindelige hospital erhvervet infektion tegner sig for en million forekomster i USA årligt og dramatiske udgifter til sundhedsvæsenet. Mens UPEC er også den primære årsag til CAUTI, andre agenser er af øget betydning, herunder Enterococcusfaecalis. Her udnytter vi to veletablerede musemodeller, der rekapitule- mange af de kliniske karakteristika for disse menneskelige sygdomme. For UTI, en C3H / høne model sammenfatter mange af funktionerne i UPEC virulens observeret hos mennesker, herunder vært reaktioner, IBC dannelse og filamentering. For CAUTI, en model med C57BL / 6-mus, som bevarer kateter blære implantater, har vist sig at være modtagelige for E. faecalis blærebetændelse. Disse repræsentative modeller bliver brugt til at få markante nye indsigter i patogenesen af ​​UTI sygdom, der fører til udvikling af nye lægemidler og ledelse eller forebyggelsesstrategier.

Introduction

Urinvejsinfektioner (UVI) er en af ​​de mest almindelige bakterielle infektioner, og kan opdeles i to kategorier baseret på den mekanisme af erhvervelse, fællesskab og nosokomiel erhvervet UTI. Erhvervet uden urinvejsinfektioner ofte forekommer i ellers raske kvinder og undersøgelser har vist, at ca. 50% af kvinder vil have mindst én UTI i deres levetid 1. Derudover gentagelse er et stort problem. En kvinde, der har en indledende akut infektion har en 25-40% chance for at få en anden infektion inden for seks måneder på trods af passende antibiotisk behandling og mange kvinder fortsat har hyppige gentagelser 2. De bakterier, der forårsager disse infektioner er også stadig mere antibiotikaresistente yderligere forstyrrende behandlingsprotokoller 3-6. UTI påvirke millioner af enkeltpersoner hvert år koster cirka 2,5 milliarder dollars i sundhedspleje relaterede udgifter i USA, understreger virkningen og forekomsten af ​​sygdommen1,7 .Nosocomial erhvervede urinvejsinfektioner er hovedsageligt forbundet med tilstedeværelsen af udenlandske organer såsom indlagte katetre. Kateter-associeret urinvejsinfektioner (CAUTI) fortsat den mest almindelige nosokomielle erhvervet UTI, der tegner sig for ~ 70-80% af sådanne infektioner 8. Endvidere er CAUTI forbundet med øget sygelighed og dødelighed, og det er den mest almindelige årsag til sekundære blodbanen infektioner 9.

UPEC associeret nosocomiel urinvejsinfektioner menes at være forårsaget af indførelsen af bakterier i blæren fra reservoirer i mavetarmkanalen via mekanisk manipulation under samleje, dårlig hygiejne eller andre mikrobielle populationsdynamik mellem forskellige vært nicher 10. Når du er inde i blæren, UPEC ansætte mange virulensfaktorer, herunder kapsel, erhvervelse jern systemer, toksiner, en virulensplasmid, tRNA'er, sygdomsfremkaldende evne øer og kolonisering faktorer, der har vist sig at spille en rolle i patogenesen <sup> 11-14. Afgørende for etableringen af UPEC kolonisering, UPEC også kode flere typer af selvklæbende chaperone indvarsle vejen (CUP) pili, der genkender receptorer med stereokemiske specificitet 15. Type 1 pili, tippet med FimH adhæsinet, udtrykkes af UPEC og binder mannosyleret uroplakins 16 og α-1, β-3 integriner 17, som er udtrykt på den luminale overflade af både menneskelige og mus blærer 18. Disse FimH-medierede interaktioner lette bakteriel kolonisering og invasion af de overfladiske epitelceller 19,20. Inde i cellen, kan UPEC undslippe ind i cytoplasmaet, hvor en enkelt bakterie kan hurtigt opdele til dannelse af en intracellulær bakteriel samfund (IBC), som ved modning, kan indeholde ~ 10 4 bakterier 21. IBC-dannelse er blevet påvist i mindst seks forskellige musestammer, C3H / HeN, C3H / HeJ, C57BL / 6, CBA, FVB / NJ og BALB / c, og med en lang række forskellige UPEC-stammer og andre Enterobacteriaceae 22-24. Men tidsmæssige og rumlige forskelle IBC-dannelse kan variere afhængigt af muse baggrund og den inficerende UPEC stamme. I C3H / HeN mus inficeret med den prototypiske UPEC stammerne UTI89 eller CFT073, IBC-dannelse kan visualiseres som små biomasser af bakterier så tidligt som 3 hpi (timer efter infektion). Dette fællesskab fortsætter med at udvide og når et "midtpunkt" af udviklingen ca. 6 hpi når stavformede bakterier optager en stor procentdel af det cytoplasmatiske rum af terminalt differentierede overfladiske paraply celler Disse tidlige IBC form i en forholdsvis synkron måde med de fleste viser lignende dimensioner og morfologier. ~ 8 hpi bakterierne i IBC ændringen fra en baciller til cocci morfologi. IBC er forbigående. Således IBC modning 12-18 HPI resulterer i fortsat udbygning af den bakterielle population, efterfulgt af deres filamentering og spredning ud af cellen with efterfølgende spredning til omkringliggende celler 23. Således IBC niche tillader hurtig bakteriel vækst i et miljø beskyttet mod værtens immunrespons og antibiotika 25. De forskellige stadier af UPEC infektion, der er set i mus er også observeret i mennesker, såsom IBC'er og filamentering, støtter musemodel for UTI som en gavnlig værktøj, der kan bruges til at modellere UTI hos mennesker 22,26-28.

Mens et flertal af kvinder oplever en UTI i deres liv, kan udfaldet af disse infektioner spænder fra akut selvbegrænsende infektion med ingen gentagelse, at hyppige tilbagevendende blærebetændelse. Endvidere har undersøgelser vist en stærk familiær forekomst af UTI, hvilket tyder på en genetisk komponent bidrager til UTI modtagelighed 29. Vi har fundet, at de forskellige UTI resultater set i klinikker kan spejles af de forskellige resultater af eksperimentel UPEC smitte blandt indavlede musestammer 30. F.eks C3H / høne, CBA, DBA, og C3H / HeOuJ mus er modtagelige, i en infektiøs dosis-afhængig måde, at langvarig, kronisk cystitis karakteriseret ved vedvarende, høj titer bakterier (> 10 4 kolonidannende enheder (CFU) / ml), høj titer bakterielle blære byrder på offer> 4 uger efter infektion (WPI), kronisk inflammation og urotelial nekrose. Disse mus viser også forhøjede serumniveauer af IL-6, G-CSF, KC, og IL-5 inden for den første 24 hpi, der tjener som biomarkører for udvikling af kronisk blærebetændelse. Dette kan nøjagtigt repræsentere det naturlige forløb af UTI hos nogle kvinder, som placebo undersøgelser har vist, at en stor procentdel af kvinder oplever UTI bevarer høje niveauer af bakterier i deres urin i flere uger efter de første symptomer på blærebetændelse, hvis ikke givet antibiotisk behandling 31 , 32. Endvidere bruger C3H / HeN mus, fandt vi, at en historie af kronisk blærebetændelse er en væsentlig risikofaktor for efterfølgende svære tilbagevendende infektioner. Tilbagevendende UTI er det mest significant kliniske manifestation af UTI og C3H / høne mus er i øjeblikket den eneste undersøgte model, der rekapitulerer en øget disposition efter tidligere eksponering. En anden UTI resultatet er sammenfattet i C57BL / 6 mus, hvor akut UPEC infektion er selvbegrænsende, med opløsning på blære betændelse og bakteriuri inden for ca. en uge. Interessant i denne model, UPEC danner let hvilende intracellulære -reservoirer i blæren væv, hvorfra UPEC er i stand til at opstå fra en hvilende tilstand til reinitiere en aktiv UTI, potentielt forklare en mekanisme til samme stamme tilbagevendende UTI hos mennesker 33, 34.

Ud over genetiske indflydelser på UTI modtagelighed, indføring af et kateter i blæren øger sandsynligheden for at have en infektion samt øge udvalget af bakterier i stand til at forårsage en infektion. Det er blevet påvist, at human urin kateterisation forårsager histologiske ogimmunologiske forandringer i blæren på grund af mekanisk belastning, der resulterer i en robust inflammatorisk respons, delaminering, ødemer i lamina propria og submucusa, urotelial udtynding, og mucosale læsion i urinvejene og nyrer 35,36. Derudover kateteret tilvejebringer en overflade for bakteriel fastgørelse derved skabe et miljø udnyttet af flere arter at forårsage CAUTI. Mens UPEC er stadig en vigtig bidragyder, Enterococcus faecalis tegner sig for 15% af disse CAUTI 37. E. faecalis bliver mere og mere resistente over for antibiotika med vancomycinresistens fremkomst, hvilket udgør en alvorlig sundhedsmæssig bekymring 38. E. faecalis besidder mange virulensfaktorer, herunder toksiner og adhæsiner er nødvendige til fastgørelse til både kateteret og epitel 38. Under urin kateterisation, værten er sårbar over for mikrobiel vedhæftning, formering og spredning i urinvejene 39,40. E. faecalis danner en biofilm på kateteret som del af en mekanisme til at forblive i blæren og formidle til nyrerne, som er gengivet i en mus CAUTI model 41. For nylig er det blevet vist under blærekateterisation er fibrinogen (Fg) udsættes i blæren som en del af den inflammatoriske respons. Fg akkumuleres i blæren, frakker kateteret og er essentiel for E. faecalis biofilm dannelse, der fungerer som en vedhæftet fil stillads. I en C57BL / 6 musemodel for CAUTI, opdagede vi, at E. faecalis biofilmdannelse på katetret, og således persistens i blæren, var afhængig af EBP pilus, specielt dens spids adhæsin EbpA. Vi fandt, at det N-terminale domæne af EbpA specifikt binder til Fg-belægning af kateteret. Derudover blev det fundet, at E. faecalis udnytter Fg som metabolit kilde under infektion og dermed øge biofilmdannelse 42.

Musemodeller har vist sig afgørende for understanding samt forudsige kliniske manifestationer af UTI og CAUTI 41. I denne artikel demonstrerer vi forberedelse af blærebetændelse UPEC inokulum isolere UTI89 og transuretral podning af C3H / HeN mus. Derudover viser vi en protokol for kateter indsætning i C57BL / 6-mus og inokulering af E. faecalis OG1RF stamme. Begge disse teknikker fører til konsekvent og pålidelig UTI eller CAUTI i mus. Vi viser også teknikker, der anvendes til at observere IBC dannelse under akut blærebetændelse og urinopsamling til analyse af kroniske eller tilbagevendende blærebetændelse. C3H / HeN mus er blevet anvendt til at undersøge aspekter af UPEC patogenese herunder indledende bakteriel invasion, IBC dannelse, filamentering og udvikling af kronisk blærebetændelse 23,33,43. Disse virulens parametre er også blevet undersøgt i en række andre mus baggrunde 22,33. For CAUTI, C57BL / 6-modellen giver mulighed for fremmedlegeme implantation i blæren med efterfølgende bakteriel colonization, som kan opretholdes i 7 dage efter infektion 41. Disse modeller har været nyttige for vurderingen af ​​bakteriel virulens mekanismer, host reaktioner på UTI og mekanismer at undergrave vært reaktioner, hvoraf meget er efterfølgende gengivet eller observeret i kliniske befolkningsgrupper.

Protocol

Etik erklæring: The Washington University Animal Studies Udvalget godkendte alle mus infektioner og procedurer som led i protokol nummer 20120216, der blev godkendt 2013/01/11 og udløber 2016/01/11. Samlet pasning af dyrene var i overensstemmelse med den vejledning for pleje og anvendelse af forsøgsdyr fra National Research Council og USDA Animal Care Resource Guide. Eutanasi procedurer er i overensstemmelse med de "AVMA retningslinjer for aflivning af dyr 2013 udgave." 1. UPEC UT…

Representative Results

De intravesikale modeller for ukompliceret og kateter forbundet UTI giver fleksible platforme for at belyse de molekylære mekanismer i bakteriel patogenese, virkningen af ​​disse sygdomme på værtsvævet, samt udvikling og afprøvning af nye tilgange til at håndtere disse fælles og dyre infektioner. Afhængigt af musestamme og patogen, kan intravesikal podning anvendes til at studere vært-patogen vekselvirkninger at belyse faktorer, der er nødvendige for at iværksætte eller modulering akutte (figur 1…

Discussion

Ukompliceret erhvervet uden UTI er en almindelig og dyrt infektion tegner sig for flere millioner primær pleje besøg hvert år 46. Desuden Cautis er et fælles sundhedsvæsen erhvervet infektion, der er blevet ekstremt dyrt at leverandører af sundhedsydelser som Centers for Medicare og Medicaid Services ikke længere refunderer udbydere for den ekstra udgifter til behandling som følge af hospitalet erhvervet CAUTI 45. De musemodeller for UTI, både ukompliceret blærebetændelse og CAUTI, der e…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Midler til dette arbejde blev leveret af ORWH SCOR P50 DK064540, RO1 DK 051406, RO1 AI 108749-01, F32 DK 101171, og F32 DK 104516-01.

Materials

Material for catheter and needle preparation:
30ga needles BD Precision Glide 305106 30Gx ½ (0.3 mm x 13mm)
PE10 polyethylene tubing BD 427400 Inside diameter -0.011 in (0.28 mm); outside diameter – 0.024 in (0.61 mm)
RenaSIL 025 platinum cured silicon tubing Braintree Scientific, Inc SIL 025 inside diameter-0.012 x outside diameter 0.025, 25 ft coil
Material for infections:
Isoflourane – Isothesia Butler Schein 29405 250 mL
Clear Glass Straight-Sided Jar Kimble Chase 5413289V 21
Stainless Steel Tea Infuser Schefs-Amazon Premium Loose Leaf Tea Infuser By Schefs – Stainless Steel – Large Capacity –
Non-sterile cotton balls Fisherbrand 22-456-880
50 ml Falcon tubes VWR 89039-660
Isotec 3 -vaporizer Ohmeda 1224478
Ear punch Fisher Scientific 13-812-201 (when necessary)
Betadine solution Betadine solution 10% Povidie-iodine topical solution
Q-tips Fisher Scientific 22-037-924 6 in
Diapers for bench Fisherbrand 14206 63 Absorbent Underpads (20”X36”mats)
Surgical lubricant Surgilube 0281-0205-36
Dissecting scissor Fine Science tools, INC 14084-08
Micro-Adson Forceps Fine Science tools, INC 11018-12
1 ml syringe BD 309659 Tuberculin slip tip
Parafilm Bemis PM996 4 in x 125 FT
Eppendorf rack Fisherbrand 05-541-1
Eppendorf tubes MIDSCI AVX-T-17-C
Harvesting catheters, bladders and kidneys:
Homogenizer PRO Scientific INC Bio-Gen Pro 200
5 ml polypropylene round-bottom tube BD 352063 for organ homogenization
Paper towel Georgia-Pacific
Ethanol Pharmco-AAPER 11100020S 200 proof
Costar™ Clear Polystyrene 96-Well Plates Corning 3788
1X Phosphate sodium saline Sigma-Aldrich P3813
BRANSONIC Ultrasonic cleaner 1210 Branson Ultrasonics Corporation 1210
IBC materials:
6-well tissue culture test plate Techno Plastic Products 92006
Pins Fine Science Tools 26002-20
Sylgard 184 Dow Corning 3097358-1004 Silicone Elastomer Kit
X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-b-D-galactoside) Invitrogen 15520-034 Ultrapure
N, N-Dimethylformamide Sigma Aldrich D4551
MgCl2 (Magnesium chloride) Sigma Aldrich M8266
Sodium deoxycholate Sigma Aldrich D6750
Nonidet-P40 Roche 11754599001 Octylphenolpoly(ethyleneglycolether)n
Potassium hexacyanoferrate(II) trihydrate (K-ferrOcyanide) Sigma Aldrich P3289
Potassium hexacyanoferrate(III) (K-ferrIcyanide) Sigma Aldrich 60299

Referências

  1. Foxman, B. Epidemiology of urinary tract infections: incidence, morbidity, and economic costs. Dis Mon. 49, 53-70 (2003).
  2. Foxman, B., et al. Risk factors for second urinary tract infection among college women. American journal of epidemiology. 151, 1194-1205 (2000).
  3. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Increasing antimicrobial resistance and the management of uncomplicated community-acquired urinary tract infections. Annals of internal medicine. 135, 41-50 (2001).
  4. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Isolation of fluoroquinolone-resistant rectal Escherichia coli. after treatment of acute uncomplicated cystitis. The Journal of antimicrobial chemotherapy. 56, 243-246 (2005).
  5. Gupta, K., Sahm, D. F., Mayfield, D., Stamm, W. E. Antimicrobial resistance among uropathogens that cause community-acquired urinary tract infections in women: a nationwide analysis. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 33, 89-94 (2001).
  6. Gupta, K., Scholes, D., Stamm, W. E. Increasing prevalence of antimicrobial resistance among uropathogens causing acute uncomplicated cystitis in women. Jama. 281, 736-738 (1999).
  7. Jarvis, W. R. Selected aspects of the socioeconomic impact of nosocomial infections: morbidity, mortality, cost, and prevention. Infect Control Hosp Epidemiol. 17, 552-557 (1996).
  8. Lo, E., et al. Strategies to prevent catheter-associated urinary tract infections in acute care hospitals: 2014 update. Infection control and hospital epidemiology : the official journal of the Society of Hospital Epidemiologists of America. 35, 464-479 (2014).
  9. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature reviews Urology. 7, 653-660 (2010).
  10. Hooton, T. M., Stamm, W. E. Diagnosis and treatment of uncomplicated urinary tract infection. Infect Dis Clin North Am. 11, 551-581 (1997).
  11. Hannan, T. J., et al. LeuX tRNA-dependent and -independent mechanisms of Escherichia coli. pathogenesis in acute cystitis. Molecular microbiology. 67, 116-128 (2008).
  12. Cusumano, C. K., Hung, C. S., Chen, S. L., Hultgren, S. J. Virulence plasmid harbored by uropathogenic Escherichia coli. functions in acute stages of pathogenesis. Infection and immunity. 78, 1457-1467 (2010).
  13. Dhakal, B. K., Mulvey, M. A. The UPEC pore-forming toxin alpha-hemolysin triggers proteolysis of host proteins to disrupt cell adhesion, inflammatory, and survival pathways. Cell host & microbe. 11, 58-69 (2012).
  14. Garcia, E. C., Brumbaugh, A. R., Mobley, H. L. Redundancy and specificity of Escherichia coli. iron acquisition systems during urinary tract infection. Infection and immunity. 79, 1225-1235 (2011).
  15. Bergsten, G., Wullt, B., Svanborg, C. Escherichia coli., fimbriae, bacterial persistence and host response induction in the human urinary tract. International journal of medical microbiology : IJMM. 295, 487-502 (2005).
  16. Zhou, G., et al. Uroplakin Ia is the urothelial receptor for uropathogenic Escherichia coli.: evidence from in vitro FimH binding. J Cell Sci. 114, 4095-4103 (2001).
  17. Eto, D. S., Jones, T. A., Sundsbak, J. L., Mulvey, M. A. Integrin-mediated host cell invasion by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. PLoS Pathog. 3, e100 (2007).
  18. Taganna, J., de Boer, A. R., Wuhrer, M., Bouckaert, J. Glycosylation changes as important factors for the susceptibility to urinary tract infection. Biochemical Society transactions. 39, 349-354 (2011).
  19. Mulvey, M. A., et al. Induction and evasion of host defenses by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. Science. 282, 1494-1497 (1998).
  20. Mysorekar, I. U., Mulvey, M. A., Hultgren, S. J., Gordon, J. I. Molecular regulation of urothelial renewal and host defenses during infection with uropathogenic Escherichia coli.. The Journal of biological chemistry. 277, 7412-7419 (2002).
  21. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  22. Garofalo, C. K., et al. Escherichia coli. from urine of female patients with urinary tract infections is competent for intracellular bacterial community formation. Infection and immunity. 75, 52-60 (2007).
  23. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proc Natl Acad Sci USA. 101, 1333-1338 (2004).
  24. Rosen, D. A., et al. Utilization of an intracellular bacterial community pathway in Klebsiella pneumoniae. urinary tract infection and the effects of FimK on type 1 pilus expression. Infection and immunity. 76, 3337-3345 (2008).
  25. Anderson, G. G., et al. Intracellular bacterial biofilm-like pods in urinary tract infections. Science. 301, 105-107 (2003).
  26. Robino, L., et al. Detection of intracellular bacterial communities in a child with Escherichia coli. recurrent urinary tract infections. Pathogens and disease. 68, 78-81 (2013).
  27. Rosen, D. A., Hooton, T. M., Stamm, W. E., Humphrey, P. A., Hultgren, S. J. Detection of intracellular bacterial communities in human urinary tract infection. PLoS Med. 4, e329 (2007).
  28. Horsley, H., et al. Enterococcus faecalis subverts and invades the host urothelium in patients with chronic urinary tract infection. PloS one. 8, e83637 (2013).
  29. Hopkins, W. J., Uehling, D. T., Wargowski, D. S. Evaluation of a familial predisposition to recurrent urinary tract infections in women. American Journal of Medical Genetics. 83, 422-424 (1999).
  30. Hopkins, W. J., Gendron-Fitzpatrick, A., Balish, E., Uehling, D. T. Time course and host responses to Escherichia coli. urinary tract infection in genetically distinct mouse strains. Infection and immunity. 66, 2798-2802 (1998).
  31. Mabeck, C. E. Treatment of uncomplicated urinary tract infection in non-pregnant women. Postgraduate medical journal. 48, 69-75 (1972).
  32. Ferry, S., Holm, S., Stenlund, H., Lundholm, R., Monsen, T. The natural course of uncomplicated lower urinary tract infection in women illustrated by a randomized placebo controlled study. Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 36, 296-301 (2004).
  33. Hannan, T. J., Mysorekar, I. U., Hung, C. S., Isaacson-Schmid, M. L., Hultgren, S. J. Early severe inflammatory responses to uropathogenic E. coli. predispose to chronic and recurrent urinary tract infection. PLoS Pathog. 6, (2010).
  34. Mysorekar, I. U., Hultgren, S. J. Mechanisms of uropathogenic Escherichia coli. persistence and eradication from the urinary tract. Proc Natl Acad Sci USA. 103, 14170-14175 (2006).
  35. Glahn, B. E., Braendstrup, O., Olesen, H. P. Influence of drainage conditions on mucosal bladder damage by indwelling catheters. II. Histological study. Scandinavian journal of urology and nephrology. 22, 93-99 (1988).
  36. Goble, N. M., Clarke, T., Hammonds, J. C. Histological changes in the urinary bladder secondary to urethral catheterisation. British journal of urology. 63, 354-357 (1989).
  37. Ronald, A. The etiology of urinary tract infection: traditional and emerging pathogens. Dis Mon. 49, 71-82 (2003).
  38. Arias, C. A., Murray, B. E. The rise of the Enterococcus.: beyond vancomycin resistance. Nature reviews. Microbiology. 10, 266-278 (2012).
  39. Garibaldi, R. A., Burke, J. P., Dickman, M. L., Smith, C. B. Factors predisposing to bacteriuria during indwelling urethral catheterization. The New England journal of medicine. 291, 215-219 (1974).
  40. Warren, J. W. Catheter-associated urinary tract infections. Infect Dis Clin North Am. 11, 609-622 (1997).
  41. Guiton, P. S., Hung, C. S., Hancock, L., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcal biofilm formation and virulence in an optimized murine model of foreign body-associated urinary tract infections. Infection and immunity. 78, 4166-4175 (2010).
  42. Flores-Mireles, A. L., Pinkner, J. S., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. EbpA vaccine antibodies block binding of Enterococcus faecalis. to fibrinogen to prevent catheter-associated bladder infection in mice. Science translational medicine. 6, 254ra127 (2014).
  43. Martinez, J. J., Mulvey, M. A., Schilling, J. D., Pinkner, J. S., Hultgren, S. J. Type 1 pilus-mediated bacterial invasion of bladder epithelial cells. The EMBO Journal. 19, 2803-2812 (2000).
  44. Hultgren, S. J., Schwan, W. R., Schaeffer, A. J., Duncan, J. L. Regulation of production of type 1 pili among urinary tract isolates of Escherichia coli.. Infection and immunity. 54, 613-620 (1986).
  45. Chenoweth, C. E., Gould, C. V., Saint, S. Diagnosis, Management, and Prevention of Catheter-Associated Urinary Tract Infections. Infect. Dis. Clin. North Am. 28, 105-+ (2014).
  46. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature Reviews Urology. 7, 653-660 (2002).
  47. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proc Natl Acad Sci USA. 103, (1988).
  48. Song, J., et al. TLR4-mediated expulsion of bacteria from infected bladder epithelial cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 14966-14971 (2009).
  49. Wang, H., Min, G., Glockshuber, R., Sun, T., Kong, X. P. Uropathogenic E. coli. adhesin-induced host cell receptor conformational changes: implications in transmembrane signaling transduction. Journal of molecular biology. 392, 352-361 (2009).
  50. Cusumano, C. K., et al. Treatment and prevention of urinary tract infection with orally active FimH inhibitors. Science translational medicine. 3, 109-115 (2011).
  51. Langermann, S., Ballou, W. R. Vaccination utilizing the FimCH complex as a strategy to prevent Escherichia coli. urinary tract infections. J Infect Dis. 183, S84-S86 (2001).
  52. Langermann, S., et al. Vaccination with FimH adhesin protects cynomolgus monkeys from colonization and infection by uropathogenic Escherichia coli. J Infect Dis. 181, 774-778 (2000).
  53. Langermann, S., et al. Prevention of mucosal Escherichia coli. infection by FimH-adhesin-based systemic vaccination. Science. 276, 607-611 (1997).
  54. Alteri, C. J., Hagan, E. C., Sivick, K. E., Smith, S. N., Mobley, H. L. T. Mucosal Immunization with Iron Receptor Antigens Protects against Urinary Tract Infection. Plos Pathogens. 5, (2009).
  55. Russo, T. A., et al. The siderophore receptor IroN of extraintestinal pathogenic Escherichia coli. is a potential vaccine candidate. Infect. Immun. 71, 7164-7169 (2003).
  56. Schwartz, D. J., et al. Positively selected FimH residues enhance virulence during urinary tract infection by altering FimH conformation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 15530-15537 (2013).
  57. Czaja, C. A., et al. Prospective cohort study of microbial and inflammatory events immediately preceding Escherichia coli. recurrent urinary tract infection in women. J Infect Dis. 200, 528-536 (2009).
  58. Chen, S. L., et al. Genomic Diversity and Fitness of E. coli. Strains Recovered from the Intestinal and Urinary Tracts of Women with Recurrent Urinary Tract Infection. Science Translational Medicine. 5, 2013 (2013).
  59. Schilling, J. D., Mulvey, M. A., Vincent, C. D., Lorenz, R. G., Hultgren, S. J. Bacterial invasion augments epithelial cytokine responses to Escherichia coli. through a lipopolysaccharide-dependent mechanism. Journal of immunology (Baltimore, Md : 1950). 166, 1148-1155 (2001).
  60. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  61. Chan, C. Y., St John, ., L, A., Abraham, S. N. Mast Cell Interleukin-10 Drives Localized Tolerance in Chronic Bladder Infection. Immunity. 38, 349-359 (2013).
  62. Justice, S. S., Lauer, S. R., Hultgren, S. J., Hunstad, D. A. Maturation of intracellular Escherichia coli. communities requires SurA. Infect. Immun. 74, 4793-4800 (2006).
  63. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 19884-19889 (2006).
  64. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 1333-1338 (2004).
  65. Guiton, P. S., Hannan, T. J., Ford, B., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcus faecalis. Overcomes Foreign Body-Mediated Inflammation To Establish Urinary Tract Infections. Infect. Immun. 81, 329-339 (2013).
  66. Thumbikat, P., Waltenbaugh, C., Schaeffer, A. J., Klumpp, D. J. Antigen-specific responses accelerate bacterial clearance in the bladder. Journal of Immunology. 176, 3080-3086 (2006).
  67. Rosen, D. A., Hung, C. -. S., Kline, K. A., Hultgren, S. J. Streptozocin-induced diabetic mouse model of urinary tract infection. Infect. Immun. 76, 4290-4298 (2008).
  68. Daneshgari, F., Leiter, E. H., Liu, G., Reeder, J. Animal Models of Diabetic Uropathy. Journal of Urology. 182, S8-S13 (2009).
  69. Guiton, P. S., et al. Combinatorial Small-Molecule Therapy Prevents Uropathogenic Escherichia coli. Catheter-Associated Urinary Tract Infections in Mice. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 56, 4738-4745 (2012).
  70. Totsika, M., et al. A FimH Inhibitor Prevents Acute Bladder Infection and Treats Chronic Cystitis Caused by Multidrug-Resistant Uropathogenic Escherichia coli. ST131. Journal of Infectious Diseases. 208, 921-928 (2013).
check_url/pt/52892?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Conover, M. S., Flores-Mireles, A. L., Hibbing, M. E., Dodson, K., Hultgren, S. J. Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (100), e52892, doi:10.3791/52892 (2015).

View Video