Summary

Oprichting en karakterisering van UTI en Cauti in een muismodel

Published: June 23, 2015
doi:

Summary

The ability to model urinary tract infections (UTI) is crucial in order to be able to understand bacterial pathogenesis and spawn the development of novel therapeutics. This work’s goal is to demonstrate mouse models of experimental UTI and catheter associated UTI that recapitulate and predict findings seen in humans.

Abstract

Urineweginfecties (UTI) een hoge prevalentie, een belangrijke oorzaak van morbiditeit en steeds resistent zijn tegen behandeling met antibiotica. Vrouwtjes worden onevenredig getroffen door UTI: 50% van alle vrouwen zal een UTI in hun leven hebben. Bovendien, 20-40% van de vrouwen die een eerste UTI zal een herhaling met enkele lijden frequente recidieven met een ernstige verslechtering van de kwaliteit van leven, pijn en ongemak, verstoring van de dagelijkse activiteiten te lijden, toegenomen kosten van de gezondheidszorg, en weinig behandelingsopties andere dan op lange termijn antibiotica profylaxe. Uropathogene Escherichia coli (UPEC) is de belangrijkste verwekker van de gemeenschap verworven UTI. Katheter geassocieerd UTI (Cauti) is de meest voorkomende ziekenhuis verworven infectie goed voor een miljoen exemplaren in de VS jaarlijks en dramatische kosten van de gezondheidszorg. Terwijl UPEC is de primaire oorzaak van Cauti andere veroorzakers zijn van toegenomen belang zoals Enterococcusfaecalis. Hier gebruiken we twee gevestigde muismodellen dat veel van de klinische karakteristieken van deze menselijke ziekten recapituleren. Voor UTI, een C3H / HeN model recapituleert veel van de functies van UPEC virulentie waargenomen bij de mens, waaronder gastheer reacties, IBC vorming en filamentatie. Voor Cauti een model gebruikt C57BL / 6 muizen, die catheter blaas implantaten behouden, is gevoelig te zijn E. faecalis blaasontsteking. Deze representatieve modellen worden gebruikt om opvallende nieuwe inzichten in de pathogenese van de ziekte UTI, wat leidt tot de ontwikkeling van nieuwe therapeutische en beheer of preventiestrategieën.

Introduction

Urineweginfecties (UWI) zijn één van de meest voorkomende bacteriële infecties en kan worden onderverdeeld in twee categorieën op basis van het mechanisme van de overname, de gemeenschap en nosocomiale verworven UTI. Gemeenschap verworven UTIs vaak voor bij gezonde vrouwen en studies hebben aangetoond dat ongeveer 50% van de vrouwen minstens één UTI in hun leven 1. Bovendien herhaling is een groot probleem. Een vrouw die een eerste acute infectie heeft, heeft een 25-40% kans op een tweede infectie binnen zes maanden, ondanks de juiste behandeling met antibiotica en veel vrouwen blijven frequente recidieven 2 hebben. De bacteriën die deze infecties worden steeds antibioticaresistente verdere verstorende behandelingsprotocollen 3-6. UTI invloed miljoenen mensen per jaar kost ongeveer 2,5 miljard dollar in de gezondheidszorg gerelateerde kosten in de VS, het benadrukken van de impact en de prevalentie van de ziekte1,7 .Nosocomial verworven urineweginfecties zijn vooral geassocieerd met de aanwezigheid van buitenlandse instanties, zoals inwonende katheters. Katheter geassocieerde urineweginfecties (Cauti) blijven de meest voorkomende nosocomiale UTI verworven, goed voor ~ 70-80% van dergelijke infecties 8. Bovendien Cauti is geassocieerd met verhoogde morbiditeit en mortaliteit en het is de meest voorkomende oorzaak van secundaire infecties bloedbaan 9.

UPEC geassocieerd gemeenschap verworven urineweginfecties zijn gedacht te worden veroorzaakt door de introductie van bacteriën in de blaas van reservoirs in het maagdarmkanaal via mechanische manipulatie tijdens de geslachtsgemeenschap, slechte hygiëne of andere microbiële populatiedynamiek tussen verschillende gastheer niches 10. Eenmaal in de blaas, UPEC gebruik talrijke virulentiefactoren, zoals capsule, iron acquisition systems, toxinen, een virulentie plasmide, tRNAs, pathogeniteit eilanden en kolonisatie factoren waarvan is aangetoond een rol te spelen in de pathogenese <sup> 11-14. Van cruciaal belang voor de oprichting van UPEC kolonisatie, UPEC ook coderen meerdere soorten lijm chaperone Usher pathway (CUP) pili dat receptoren met stereo- specificiteit 15 herkennen. Type 1 pili, gaven de adhesine FimH, worden uitgedrukt door UPEC en binden gemannosyleerd uroplakins 16 en α-1, β-3 integrines 17, die zijn uitgedrukt op het luminale oppervlak van zowel mens en muis blazen 18. Deze FimH-gemedieerde interacties bevorderen bacteriële kolonisatie en invasie van de oppervlakkige epitheelcellen 19,20. Eenmaal in de cel kan UPEC ontsnappen in het cytoplasma, waar een bacterie snel kan verdelen om een intracellulaire bacteriële gemeenschappen (IBC), die bij rijping kan 10 4 bacteriën bevatten 21 ~ vormen. IBC formatie is aangetoond in ten minste zes verschillende muizenstammen, C3H / HeN, C3H / HeJ, C57BL / 6, CBA, FVB / NJ en BALB / c, en met een groot aantal verschillende UPEC stammen en andere Enterobacteriaceae 22-24. Maar in tijd en ruimte verschillen IBC vorming kan variëren afhankelijk van de muis achtergrond en de infecterende UPEC-stam. In C3H / HeN muizen geïnfecteerd met de prototypische UPEC stammen UTI89 of CFT073, IBC formatie kan worden gevisualiseerd als kleine biomassa bacteriën zo vroeg als 3 hpi (uur na infectie). Deze gemeenschap blijft groeien en bereikt een "middelpunt" van het complex op ongeveer 6 HPI wanneer de staafvormige bacterie nemen een groot percentage van de cytoplasmatische ruimte van terminaal gedifferentieerde cellen oppervlakkige paraplu Deze vroege IBC vorm relatief synchrone wijze met de meeste vergelijkbare afmetingen tonen en morfologie. ~ 8 hpi de bacteriën in de IBC overgang van een bacillen morfologie kokken. IBC's zijn van voorbijgaande aard. Aldus IBC rijping 12-18 HPI resultaten in verdere expansie van de bacteriële populatie, gevolgd door hun filamentatie en dispersie uit de cel with daaropvolgende verspreiding naar naburige cellen 23. Zo is de IBC niche zorgt voor een snelle bacteriegroei in een omgeving beschermd tegen gastheer immuunreacties en antibiotica 25. De verschillende stadia van UPEC infectie die wordt waargenomen bij muizen zijn ook waargenomen bij mensen, zoals IBC en filamentatie, ondersteunen het muizenmodel van UTI als een voordelig instrument dat kan worden gemodelleerd UTI bij mensen 22,26-28.

Terwijl een meerderheid van de vrouwen ervaren een UTI in hun leven, kan de uitkomst van deze infecties variëren van acute zelfbeperkende infectie met geen recidief, frequent terugkerende blaasontsteking. Verder hebben studies aangetoond een sterk familiair voorkomen van UTI, hetgeen duidt op een genetische component bijdraagt ​​aan UTI gevoeligheid 29. We hebben ontdekt dat de verschillende UTI uitkomsten gezien in klinieken kan worden weerspiegeld door de verschillende uitkomsten van experimentele UPEC infectie onder inteelt muizenstammen 30. Bijvoorbeeld, C3H / HeN, CBA, DBA, en C3H / HeOuJ muizen gevoelig, in een infectueuze dosis-afhankelijke manier, om langdurige, chronische cystitis gekenmerkt door aanhoudende, hoge titer bacteriën (> 10 4 kolonievormende eenheden (CFU) / ml), hoge titer bacteriële blaas lasten op offer> 4 weken na infectie (WPI), chronische ontsteking, en urotheliale necrose. Deze muizen ook worden weergegeven verhoogde serumniveaus van IL-6, G-CSF, KC en IL-5 in de eerste 24 HPI die dienen als biomarkers voor de ontwikkeling van chronische cystitis. Dit kan goed mogelijk de natuurlijke loop van UTI vertegenwoordigen bij sommige vrouwen, placebo studies hebben aangetoond dat een groot percentage van de vrouwen die UTI zal hoge bacteriën in hun urine handhaven gedurende enkele weken na de eerste symptomen van blaasontsteking indien niet gegeven antibiotica 31 , 32. Verder gebruik C3H / HeN muizen, vonden we dat een geschiedenis van chronische cystitis is een belangrijke risicofactor voor de volgende ernstige terugkerende infecties. Terugkerende UTI is de meest significant klinische manifestatie van UTI en de C3H / HeN muis is momenteel de enige bestudeerde model dat een verhoogde aanleg na eerdere blootstelling recapituleert. Een tweede UTI uitkomst wordt gerecapituleerd in C57BL / 6 muizen, waar acute UPEC infectie zelfbeperkend, met een resolutie van de blaas ontsteking en bacteriurie binnen ongeveer een week. Interessant is dat in dit model, UPEC vormen gemakkelijk rustende intracellulaire reservoirs binnen de blaas weefsel waarvan UPEC in staat zijn die uit een slapende toestand naar een actieve UTI hervatten, eventueel verklaren één mechanisme voor dezelfde stam terugkerende UTI bij mensen 33, 34.

Naast de genetische invloeden op UTI gevoeligheid, invoering van een katheter in de blaas verhoogt de kans op een infectie en verhoogt het bereik van bacteriën in staat om een ​​infectie te veroorzaken. Er is aangetoond dat menselijke Blaaskatheterisatie veroorzaakt histologische enimmunologische veranderingen in de blaas door mechanische stress die resulteert in een sterke ontstekingsreactie, afschilfering, oedeem van de lamina propria en submucusa, urotheel dunner en mucosale laesie van het urotheel en nieren 35,36. Bovendien, de katheter een oppervlaktebescherming voor bacteriële hechting zo een omgeving gebruiken Verscheidene soorten Cauti veroorzaken creëren. Terwijl UPEC zijn nog steeds een belangrijke bijdrage, Enterococcus faecalis is goed voor 15% van deze Cauti 37. E. faecalis wordt steeds meer resistent tegen antibiotica met vancomycine weerstand ontstaan, die een ernstig gezondheidsprobleem zorg 38. E. faecalis bezitten vele virulentiefactoren zoals toxinen en adhesinen nodig zijn voor bevestiging aan zowel de katheter en epithelium 38. Tijdens Blaaskatheterisatie is de gastheer gevoelig voor microbiële hechting, vermenigvuldigen en verspreiden in de urinewegen 39,40. E. faecalis vormen een biofilm op de katheter als onderdeel van een mechanisme te volharden in de blaas en verspreidt onder de nieren, is weergegeven in een muis 41 model Cauti. Recentelijk is aangetoond tijdens Blaaskatheterisatie wordt fibrinogeen (Fg) vrij in de blaas als onderdeel van de ontstekingsreactie. Fg accumuleert in de blaas, bedekt de catheter en is essentieel voor E. faecalis biofilm vorming, functioneren als een bijlage schavot. In een C57BL / 6 muis-model van Cauti, dat ontdekten we E. faecalis biofilm vorming op de katheter, en derhalve persistentie in de blaas, afhankelijk was van de Ebp pilus specifiek zijn punt adhesine EbpA. We vonden dat het N-terminale domein van EbpA specifiek bindt aan FG bekleden van de katheter. Bovendien werd gevonden dat E. faecalis gebruikt Fg als metaboliet bron tijdens infectie, waardoor het verbeteren biofilmvorming 42.

Muismodellen hebben kritische bewezen understanding en voorspellen van klinische manifestaties van UTI en Cauti 41. In dit artikel tonen we inoculum voorbereiding van de blaasontsteking UPEC isoleren UTI89 en transurethrale inoculatie van C3H / HeN muizen. Verder tonen we een protocol voor catheter inbrengen in C57BL / 6 muizen en inoculatie van de E. faecalis OG1RF stam. Beide technieken leiden tot consistente en betrouwbare UTI of Cauti bij muizen. We geven ook de technieken die worden gebruikt om de vorming van IBC observeren tijdens acute blaasontsteking en urine verzamelen voor de analyse van chronische of recidiverende blaasontsteking. C3H / HeN-muizen werden gebruikt om aspecten van UPEC pathogenese waaronder initiële bacteriële invasie, IBC vorming filamentatie en de ontwikkeling van chronische blaasontsteking 23,33,43 bestuderen. Deze virulentie parameters zijn ook onderzocht bij een verscheidenheid van andere muizen achtergronden 22,33. Voor Cauti, de C57BL / 6-model zorgt voor een vreemd lichaam implantatie in de blaas met daaropvolgende bacteriële colonization, die kan worden gehandhaafd gedurende 7 dagen na infectie 41. Deze modellen zijn nuttig voor de beoordeling van bacteriële virulentie mechanismen, gastheer reacties op UTI en mechanismen om gastheer reacties, waarvan een groot deel is vervolgens recapituleerde of waargenomen in klinische menselijke bevolking ondermijnen geweest.

Protocol

Ethiek statement: De Rijksuniversiteit Animal Comité Studies Washington keurden alle muis infecties en procedures in het kader van het protocol nummer 20120216, dat werd goedgekeurd 2013/01/11 en verloopt 2016/01/11. Algehele verzorging van de dieren was in overeenstemming met de gids van de Zorg en gebruik van proefdieren van de National Research Council en de USDA Animal Care Resource Guide. Euthanasie procedures zijn in overeenstemming met de "AVMA richtlijnen voor de euthanasie van dieren 2013 editie." </…

Representative Results

De intravesicale modellen van ongecompliceerde en katheter geassocieerd UTI bieden flexibele platforms voor het ophelderen van de moleculaire mechanismen van bacteriële pathogenese, de impact van deze ziekten op host weefsel, en de ontwikkeling en het testen van nieuwe benaderingen van deze gemeenschappelijke en kostbare infecties te beheren. Afhankelijk van de muizenstam en ziekteverwekker, kunnen intravesicale inoculatie worden gebruikt om gastheer-pathogeen interacties te bestuderen factoren voor het initiëren of m…

Discussion

Ongecompliceerde gemeenschap verworven UTI is een veel voorkomende en kostbare infectie goed voor enkele miljoenen eerstelijns gezondheidszorg bezoeken per jaar 46. Daarnaast Cautis zijn een gemeenschappelijke zorg verworven infectie die zeer kostbaar om zorgverleners als de Centra van Medicare en Medicaid Services is geworden niet meer vergoedt providers voor de extra kosten van de behandeling als gevolg van het ziekenhuis verworven Cauti 45. De muismodellen van UTI, zowel ongecompliceerde cystiti…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Financiering voor dit werk werd geleverd door ORWH SCOR P50 DK064540, RO1 DK 051.406, RO1 AI 108749-01, F32 DK 101.171 en F32 DK 104516-01.

Materials

Material for catheter and needle preparation:
30ga needles BD Precision Glide 305106 30Gx ½ (0.3 mm x 13mm)
PE10 polyethylene tubing BD 427400 Inside diameter -0.011 in (0.28 mm); outside diameter – 0.024 in (0.61 mm)
RenaSIL 025 platinum cured silicon tubing Braintree Scientific, Inc SIL 025 inside diameter-0.012 x outside diameter 0.025, 25 ft coil
Material for infections:
Isoflourane – Isothesia Butler Schein 29405 250 mL
Clear Glass Straight-Sided Jar Kimble Chase 5413289V 21
Stainless Steel Tea Infuser Schefs-Amazon Premium Loose Leaf Tea Infuser By Schefs – Stainless Steel – Large Capacity –
Non-sterile cotton balls Fisherbrand 22-456-880
50 ml Falcon tubes VWR 89039-660
Isotec 3 -vaporizer Ohmeda 1224478
Ear punch Fisher Scientific 13-812-201 (when necessary)
Betadine solution Betadine solution 10% Povidie-iodine topical solution
Q-tips Fisher Scientific 22-037-924 6 in
Diapers for bench Fisherbrand 14206 63 Absorbent Underpads (20”X36”mats)
Surgical lubricant Surgilube 0281-0205-36
Dissecting scissor Fine Science tools, INC 14084-08
Micro-Adson Forceps Fine Science tools, INC 11018-12
1 ml syringe BD 309659 Tuberculin slip tip
Parafilm Bemis PM996 4 in x 125 FT
Eppendorf rack Fisherbrand 05-541-1
Eppendorf tubes MIDSCI AVX-T-17-C
Harvesting catheters, bladders and kidneys:
Homogenizer PRO Scientific INC Bio-Gen Pro 200
5 ml polypropylene round-bottom tube BD 352063 for organ homogenization
Paper towel Georgia-Pacific
Ethanol Pharmco-AAPER 11100020S 200 proof
Costar™ Clear Polystyrene 96-Well Plates Corning 3788
1X Phosphate sodium saline Sigma-Aldrich P3813
BRANSONIC Ultrasonic cleaner 1210 Branson Ultrasonics Corporation 1210
IBC materials:
6-well tissue culture test plate Techno Plastic Products 92006
Pins Fine Science Tools 26002-20
Sylgard 184 Dow Corning 3097358-1004 Silicone Elastomer Kit
X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-b-D-galactoside) Invitrogen 15520-034 Ultrapure
N, N-Dimethylformamide Sigma Aldrich D4551
MgCl2 (Magnesium chloride) Sigma Aldrich M8266
Sodium deoxycholate Sigma Aldrich D6750
Nonidet-P40 Roche 11754599001 Octylphenolpoly(ethyleneglycolether)n
Potassium hexacyanoferrate(II) trihydrate (K-ferrOcyanide) Sigma Aldrich P3289
Potassium hexacyanoferrate(III) (K-ferrIcyanide) Sigma Aldrich 60299

Referências

  1. Foxman, B. Epidemiology of urinary tract infections: incidence, morbidity, and economic costs. Dis Mon. 49, 53-70 (2003).
  2. Foxman, B., et al. Risk factors for second urinary tract infection among college women. American journal of epidemiology. 151, 1194-1205 (2000).
  3. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Increasing antimicrobial resistance and the management of uncomplicated community-acquired urinary tract infections. Annals of internal medicine. 135, 41-50 (2001).
  4. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Isolation of fluoroquinolone-resistant rectal Escherichia coli. after treatment of acute uncomplicated cystitis. The Journal of antimicrobial chemotherapy. 56, 243-246 (2005).
  5. Gupta, K., Sahm, D. F., Mayfield, D., Stamm, W. E. Antimicrobial resistance among uropathogens that cause community-acquired urinary tract infections in women: a nationwide analysis. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 33, 89-94 (2001).
  6. Gupta, K., Scholes, D., Stamm, W. E. Increasing prevalence of antimicrobial resistance among uropathogens causing acute uncomplicated cystitis in women. Jama. 281, 736-738 (1999).
  7. Jarvis, W. R. Selected aspects of the socioeconomic impact of nosocomial infections: morbidity, mortality, cost, and prevention. Infect Control Hosp Epidemiol. 17, 552-557 (1996).
  8. Lo, E., et al. Strategies to prevent catheter-associated urinary tract infections in acute care hospitals: 2014 update. Infection control and hospital epidemiology : the official journal of the Society of Hospital Epidemiologists of America. 35, 464-479 (2014).
  9. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature reviews Urology. 7, 653-660 (2010).
  10. Hooton, T. M., Stamm, W. E. Diagnosis and treatment of uncomplicated urinary tract infection. Infect Dis Clin North Am. 11, 551-581 (1997).
  11. Hannan, T. J., et al. LeuX tRNA-dependent and -independent mechanisms of Escherichia coli. pathogenesis in acute cystitis. Molecular microbiology. 67, 116-128 (2008).
  12. Cusumano, C. K., Hung, C. S., Chen, S. L., Hultgren, S. J. Virulence plasmid harbored by uropathogenic Escherichia coli. functions in acute stages of pathogenesis. Infection and immunity. 78, 1457-1467 (2010).
  13. Dhakal, B. K., Mulvey, M. A. The UPEC pore-forming toxin alpha-hemolysin triggers proteolysis of host proteins to disrupt cell adhesion, inflammatory, and survival pathways. Cell host & microbe. 11, 58-69 (2012).
  14. Garcia, E. C., Brumbaugh, A. R., Mobley, H. L. Redundancy and specificity of Escherichia coli. iron acquisition systems during urinary tract infection. Infection and immunity. 79, 1225-1235 (2011).
  15. Bergsten, G., Wullt, B., Svanborg, C. Escherichia coli., fimbriae, bacterial persistence and host response induction in the human urinary tract. International journal of medical microbiology : IJMM. 295, 487-502 (2005).
  16. Zhou, G., et al. Uroplakin Ia is the urothelial receptor for uropathogenic Escherichia coli.: evidence from in vitro FimH binding. J Cell Sci. 114, 4095-4103 (2001).
  17. Eto, D. S., Jones, T. A., Sundsbak, J. L., Mulvey, M. A. Integrin-mediated host cell invasion by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. PLoS Pathog. 3, e100 (2007).
  18. Taganna, J., de Boer, A. R., Wuhrer, M., Bouckaert, J. Glycosylation changes as important factors for the susceptibility to urinary tract infection. Biochemical Society transactions. 39, 349-354 (2011).
  19. Mulvey, M. A., et al. Induction and evasion of host defenses by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. Science. 282, 1494-1497 (1998).
  20. Mysorekar, I. U., Mulvey, M. A., Hultgren, S. J., Gordon, J. I. Molecular regulation of urothelial renewal and host defenses during infection with uropathogenic Escherichia coli.. The Journal of biological chemistry. 277, 7412-7419 (2002).
  21. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  22. Garofalo, C. K., et al. Escherichia coli. from urine of female patients with urinary tract infections is competent for intracellular bacterial community formation. Infection and immunity. 75, 52-60 (2007).
  23. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proc Natl Acad Sci USA. 101, 1333-1338 (2004).
  24. Rosen, D. A., et al. Utilization of an intracellular bacterial community pathway in Klebsiella pneumoniae. urinary tract infection and the effects of FimK on type 1 pilus expression. Infection and immunity. 76, 3337-3345 (2008).
  25. Anderson, G. G., et al. Intracellular bacterial biofilm-like pods in urinary tract infections. Science. 301, 105-107 (2003).
  26. Robino, L., et al. Detection of intracellular bacterial communities in a child with Escherichia coli. recurrent urinary tract infections. Pathogens and disease. 68, 78-81 (2013).
  27. Rosen, D. A., Hooton, T. M., Stamm, W. E., Humphrey, P. A., Hultgren, S. J. Detection of intracellular bacterial communities in human urinary tract infection. PLoS Med. 4, e329 (2007).
  28. Horsley, H., et al. Enterococcus faecalis subverts and invades the host urothelium in patients with chronic urinary tract infection. PloS one. 8, e83637 (2013).
  29. Hopkins, W. J., Uehling, D. T., Wargowski, D. S. Evaluation of a familial predisposition to recurrent urinary tract infections in women. American Journal of Medical Genetics. 83, 422-424 (1999).
  30. Hopkins, W. J., Gendron-Fitzpatrick, A., Balish, E., Uehling, D. T. Time course and host responses to Escherichia coli. urinary tract infection in genetically distinct mouse strains. Infection and immunity. 66, 2798-2802 (1998).
  31. Mabeck, C. E. Treatment of uncomplicated urinary tract infection in non-pregnant women. Postgraduate medical journal. 48, 69-75 (1972).
  32. Ferry, S., Holm, S., Stenlund, H., Lundholm, R., Monsen, T. The natural course of uncomplicated lower urinary tract infection in women illustrated by a randomized placebo controlled study. Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 36, 296-301 (2004).
  33. Hannan, T. J., Mysorekar, I. U., Hung, C. S., Isaacson-Schmid, M. L., Hultgren, S. J. Early severe inflammatory responses to uropathogenic E. coli. predispose to chronic and recurrent urinary tract infection. PLoS Pathog. 6, (2010).
  34. Mysorekar, I. U., Hultgren, S. J. Mechanisms of uropathogenic Escherichia coli. persistence and eradication from the urinary tract. Proc Natl Acad Sci USA. 103, 14170-14175 (2006).
  35. Glahn, B. E., Braendstrup, O., Olesen, H. P. Influence of drainage conditions on mucosal bladder damage by indwelling catheters. II. Histological study. Scandinavian journal of urology and nephrology. 22, 93-99 (1988).
  36. Goble, N. M., Clarke, T., Hammonds, J. C. Histological changes in the urinary bladder secondary to urethral catheterisation. British journal of urology. 63, 354-357 (1989).
  37. Ronald, A. The etiology of urinary tract infection: traditional and emerging pathogens. Dis Mon. 49, 71-82 (2003).
  38. Arias, C. A., Murray, B. E. The rise of the Enterococcus.: beyond vancomycin resistance. Nature reviews. Microbiology. 10, 266-278 (2012).
  39. Garibaldi, R. A., Burke, J. P., Dickman, M. L., Smith, C. B. Factors predisposing to bacteriuria during indwelling urethral catheterization. The New England journal of medicine. 291, 215-219 (1974).
  40. Warren, J. W. Catheter-associated urinary tract infections. Infect Dis Clin North Am. 11, 609-622 (1997).
  41. Guiton, P. S., Hung, C. S., Hancock, L., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcal biofilm formation and virulence in an optimized murine model of foreign body-associated urinary tract infections. Infection and immunity. 78, 4166-4175 (2010).
  42. Flores-Mireles, A. L., Pinkner, J. S., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. EbpA vaccine antibodies block binding of Enterococcus faecalis. to fibrinogen to prevent catheter-associated bladder infection in mice. Science translational medicine. 6, 254ra127 (2014).
  43. Martinez, J. J., Mulvey, M. A., Schilling, J. D., Pinkner, J. S., Hultgren, S. J. Type 1 pilus-mediated bacterial invasion of bladder epithelial cells. The EMBO Journal. 19, 2803-2812 (2000).
  44. Hultgren, S. J., Schwan, W. R., Schaeffer, A. J., Duncan, J. L. Regulation of production of type 1 pili among urinary tract isolates of Escherichia coli.. Infection and immunity. 54, 613-620 (1986).
  45. Chenoweth, C. E., Gould, C. V., Saint, S. Diagnosis, Management, and Prevention of Catheter-Associated Urinary Tract Infections. Infect. Dis. Clin. North Am. 28, 105-+ (2014).
  46. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature Reviews Urology. 7, 653-660 (2002).
  47. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proc Natl Acad Sci USA. 103, (1988).
  48. Song, J., et al. TLR4-mediated expulsion of bacteria from infected bladder epithelial cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 14966-14971 (2009).
  49. Wang, H., Min, G., Glockshuber, R., Sun, T., Kong, X. P. Uropathogenic E. coli. adhesin-induced host cell receptor conformational changes: implications in transmembrane signaling transduction. Journal of molecular biology. 392, 352-361 (2009).
  50. Cusumano, C. K., et al. Treatment and prevention of urinary tract infection with orally active FimH inhibitors. Science translational medicine. 3, 109-115 (2011).
  51. Langermann, S., Ballou, W. R. Vaccination utilizing the FimCH complex as a strategy to prevent Escherichia coli. urinary tract infections. J Infect Dis. 183, S84-S86 (2001).
  52. Langermann, S., et al. Vaccination with FimH adhesin protects cynomolgus monkeys from colonization and infection by uropathogenic Escherichia coli. J Infect Dis. 181, 774-778 (2000).
  53. Langermann, S., et al. Prevention of mucosal Escherichia coli. infection by FimH-adhesin-based systemic vaccination. Science. 276, 607-611 (1997).
  54. Alteri, C. J., Hagan, E. C., Sivick, K. E., Smith, S. N., Mobley, H. L. T. Mucosal Immunization with Iron Receptor Antigens Protects against Urinary Tract Infection. Plos Pathogens. 5, (2009).
  55. Russo, T. A., et al. The siderophore receptor IroN of extraintestinal pathogenic Escherichia coli. is a potential vaccine candidate. Infect. Immun. 71, 7164-7169 (2003).
  56. Schwartz, D. J., et al. Positively selected FimH residues enhance virulence during urinary tract infection by altering FimH conformation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 15530-15537 (2013).
  57. Czaja, C. A., et al. Prospective cohort study of microbial and inflammatory events immediately preceding Escherichia coli. recurrent urinary tract infection in women. J Infect Dis. 200, 528-536 (2009).
  58. Chen, S. L., et al. Genomic Diversity and Fitness of E. coli. Strains Recovered from the Intestinal and Urinary Tracts of Women with Recurrent Urinary Tract Infection. Science Translational Medicine. 5, 2013 (2013).
  59. Schilling, J. D., Mulvey, M. A., Vincent, C. D., Lorenz, R. G., Hultgren, S. J. Bacterial invasion augments epithelial cytokine responses to Escherichia coli. through a lipopolysaccharide-dependent mechanism. Journal of immunology (Baltimore, Md : 1950). 166, 1148-1155 (2001).
  60. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  61. Chan, C. Y., St John, ., L, A., Abraham, S. N. Mast Cell Interleukin-10 Drives Localized Tolerance in Chronic Bladder Infection. Immunity. 38, 349-359 (2013).
  62. Justice, S. S., Lauer, S. R., Hultgren, S. J., Hunstad, D. A. Maturation of intracellular Escherichia coli. communities requires SurA. Infect. Immun. 74, 4793-4800 (2006).
  63. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 19884-19889 (2006).
  64. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 1333-1338 (2004).
  65. Guiton, P. S., Hannan, T. J., Ford, B., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcus faecalis. Overcomes Foreign Body-Mediated Inflammation To Establish Urinary Tract Infections. Infect. Immun. 81, 329-339 (2013).
  66. Thumbikat, P., Waltenbaugh, C., Schaeffer, A. J., Klumpp, D. J. Antigen-specific responses accelerate bacterial clearance in the bladder. Journal of Immunology. 176, 3080-3086 (2006).
  67. Rosen, D. A., Hung, C. -. S., Kline, K. A., Hultgren, S. J. Streptozocin-induced diabetic mouse model of urinary tract infection. Infect. Immun. 76, 4290-4298 (2008).
  68. Daneshgari, F., Leiter, E. H., Liu, G., Reeder, J. Animal Models of Diabetic Uropathy. Journal of Urology. 182, S8-S13 (2009).
  69. Guiton, P. S., et al. Combinatorial Small-Molecule Therapy Prevents Uropathogenic Escherichia coli. Catheter-Associated Urinary Tract Infections in Mice. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 56, 4738-4745 (2012).
  70. Totsika, M., et al. A FimH Inhibitor Prevents Acute Bladder Infection and Treats Chronic Cystitis Caused by Multidrug-Resistant Uropathogenic Escherichia coli. ST131. Journal of Infectious Diseases. 208, 921-928 (2013).
check_url/pt/52892?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Conover, M. S., Flores-Mireles, A. L., Hibbing, M. E., Dodson, K., Hultgren, S. J. Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (100), e52892, doi:10.3791/52892 (2015).

View Video