Summary

Upprättande och karakterisering av UTI och CAUTI i en musmodell

Published: June 23, 2015
doi:

Summary

The ability to model urinary tract infections (UTI) is crucial in order to be able to understand bacterial pathogenesis and spawn the development of novel therapeutics. This work’s goal is to demonstrate mouse models of experimental UTI and catheter associated UTI that recapitulate and predict findings seen in humans.

Abstract

Urinvägsinfektioner (UVI) är mycket vanliga, en viktig orsak till sjuklighet och blir alltmer resistenta mot behandling med antibiotika. Kvinnor är oproportionerligt drabbas av urinvägsinfektion: 50% av alla kvinnor kommer att ha en urinvägsinfektion under sin livstid. Dessutom 20-40% av dessa kvinnor som har en initial UVI kommer att drabbas av återfall med vissa lider täta återfall med allvarlig försämring av livskvaliteten, smärta och obehag, störningar i den dagliga verksamheten, ökade sjukvårdskostnader, och några behandlingsalternativ andra än långtidsantibiotikaprofylax. Uropatogena Escherichia coli (UPEC) är den primära smittämnen av samhällsförvärvad UVI. Kateter-associerad UTI (CAUTI) är den vanligaste vårdrelaterade infektioner står för en miljon förekomster i USA årligen och dramatiska sjukvårdskostnader. Medan UPEC är också den främsta orsaken till CAUTI, andra orsakande medel är av ökad betydelse inklusive Enterococcusfaecalis. Här använder vi två väletablerade musmodeller som rekapitulera många av de kliniska egenskaperna hos dessa mänskliga sjukdomar. För UTI, rekapitulerar en C3H / HeN modell många av funktionerna i UPEC virulens observerats hos människor inklusive värdsvar, IBC formation och filamentation. För CAUTI, en modell med C57BL / 6-möss, som behåller kateter blåsa implantat, har visat sig vara känsliga för E. faecalis urinvägsinfektion. Dessa representativa modeller som används för att få slående nya insikter i patogenesen av UTI sjukdom, vilket leder till utveckling av nya läkemedel och hantering eller förebyggande strategier.

Introduction

Urinvägsinfektioner (UVI) är en av de vanligaste bakteriella infektioner och kan delas in i två kategorier baserat på mekanismen för förvärvet, gemenskap och sjukhus förvärvade UVI. Samhällsförvärvad UTIs förekommer ofta i övrigt friska kvinnor och studier har visat att cirka 50% av kvinnorna kommer att ha minst en UTI under sin livstid 1. Dessutom är återkommande ett stort problem. En kvinna som har en initial akut infektion har en chans 25-40% av att ha en andra infektion inom sex månader trots lämplig antibiotikabehandling och många kvinnor fortsätter att ha täta återfall 2. De bakterier som orsakar dessa infektioner blir också allt antibiotikaresistenta ytterligare störande behandlingsprotokoll 3-6. UTI påverkar miljontals människor varje år kostar omkring 2,5 miljarder dollar i vårdrelaterade kostnader i USA, vilket understryker effekten och förekomsten av sjukdomen1,7 .Nosocomial förvärvade urinvägsinfektioner är främst förknippade med förekomsten av främmande partiklar som kvarliggande katetrar. Kateter-associerad UVI (CAUTI) förblir den vanligaste sjukhus förvärvade UTI står för ~ 70-80% av sådana infektioner 8. Vidare är CAUTI associerad med ökad sjuklighet och dödlighet, och det är den vanligaste orsaken till sekundära blodinfektioner 9.

UPEC tillhörande samhällsförvärvad urinvägsinfektioner tros vara orsakad av införandet av bakterier i urinblåsan från reservoarer i mag-tarmkanalen via mekanisk manipulation under samlag, dålig hygien eller andra mikrobiella populationsdynamik mellan olika värd Nischer 10. Väl inne i urinblåsan, UPEC anställa många virulensfaktorer, inklusive kapsel, järn förvärvssystem, toxiner, en virulensplasmiden, tRNA, patogenicitet öar och koloniseringsfaktorer som har visat sig spela en roll i patogenesen <sup> 11-14. Avgörande för fastställandet av UPEC kolonisering, UPEC kodar också flera typer av lim förkläde vaktmästare vägen (CUP) pili som känner igen receptorer med stereo specificitet 15. Typ 1 pili, tippas med FimH adhesin, uttrycks av UPEC och binda mannosylated uroplakins 16 och α-1, β-3 integriner 17, som uttrycks på den luminala ytan av både mänskliga och mus blåsor 18. Dessa FimH-förmedlade interaktioner underlättar bakteriell kolonisering och invasionen av ytliga epitelceller 19,20. Väl inne i cellen kan UPEC fly in i cytoplasman där en enda bakterie snabbt kan dela sig för att bilda en intracellulär bakteriesamhället (IBC), som vid mognad, kan innehålla ~ 10 4 bakterier 21. IBC bildning har visats i minst sex olika musstammar, C3H / HeN, C3H / HeJ, C57BL / 6, CBA, FVB / NJ och BALB / c, och med ett brett utbud av olika UPEC-stammar och andra Enterobacteriaceae 22-24. Emellertid temporala och spatiala skillnader i IBC bildning kan variera beroende på den mus bakgrunden och den infekterande UPEC stammen. I C3H / HeN-möss infekterade med den prototypiska UPEC stammar UTI89 eller CFT073, IBC bildning kan visualiseras som små biomassor av bakterier så tidigt som 3 hpi (timmar efter infektion). Denna gemenskap fortsätter att expandera och når en "mittpunkt" utveckling cirka 6 hpi när stavformade bakterier upptar en stor del av den cytoplasmiska utrymmet terminalt differentierade ytliga paraplyceller Dessa tidiga IBC form i ett relativt synkroniserat sätt med de flesta visar liknande dimensioner och morfologier. ~ 8 HPI bakterierna i IBC förändringen från ett baciller till kocker morfologi. IBC-behållare är av övergående natur. Således IBC mognad 12-18 HPI resulterar i fortsatt expansion av bakteriepopulationen, följt av deras filamentation och spridning ut ur cellen with efterföljande spridning till angränsande celler 23. Således tillåter IBC nisch för snabb bakterietillväxt i en miljö som är skyddad från värdens immunsvar och antibiotika 25. De olika stadierna av UPEC infektion som syns i möss också observerats hos människa, såsom IBC-behållare och filamentering, stödja musmodell av UVI som ett fördelaktigt verktyg som kan användas för att modellera UTI hos människor 22,26-28.

Medan en majoritet av kvinnor upplever en UTI under sin livstid, kan resultatet av dessa infektioner allt från akut självbegränsande infektion utan återfall, att täta återkommande blåskatarr. Vidare har studier visat en stark familjär förekomst av UTI, vilket tyder på en genetisk komponent bidrar till UTI känslighet 29. Vi har funnit att de olika UTI resultat sett i kliniker kan speglas av de olika resultaten av experimentell UPEC infektion bland inavlade musstammar 30. Till exempel, C3H / höna, CBA, DBA och C3H / HeOuJ möss är mottagliga, i en smittsam dosberoende sätt, till långvarig, kronisk cystit karaktäriseras av ihållande höga titer bakterier (> 10 4 kolonibildande enheter (CFU) / ml), hög titer bakterie blås bördor på offer> 4 veckor efter infektion (WPI), kronisk inflammation och uroteliala nekros. Dessa möss uppvisar också förhöjda serumnivåer av IL-6, G-CSF, KC, och IL-5 i den första 24 hpi som fungerar som biomarkörer för utveckling av kronisk cystit. Detta kan noggrant representera det naturliga förloppet av UTI hos vissa kvinnor, som placebo studier har visat att en stor andel av kvinnor upplever UVI kommer att behålla höga nivåer av bakterier i urinen i flera veckor efter de första symptomen på cystit om det inte ges antibiotikabehandling 31 , 32. Vidare använder C3H / HeN möss, fann vi att en historia av kronisk cystit är en betydande riskfaktor för senare allvarliga återkommande infektioner. Återkommande UTI är det mest significant klinisk manifestation av UTI och C3H / höna mus är för närvarande den enda studerade modellen som rekapitulerar en ökad benägenhet efter tidigare exponering. En andra UVI utfall rekapituleras i C57BL / 6 möss, där akut UPEC infektion är självbegränsande, med upplösning på inflammation i urinblåsan och bakteriuri inom cirka en vecka. Intressant i denna modell, UPEC bildar lätt vilande intracellulära reservoarer inom blåsvävnad från vilken UPEC har förmåga att fram från ett vilande tillstånd att återinitiera en aktiv UVI, potentiellt förklara en mekanism för samma stam återkommande UTI hos människor 33, 34.

Förutom genetiska påverkan på UTI känslighet ökar införandet av en kateter i urinblåsan kraftigt sannolikheten för att ha en infektion samt öka utbudet av bakterier som kan orsaka en infektion. Det har visats att mänsklig urin kateterisering orsakar histologiska ochimmunologiska förändringar i urinblåsan på grund av mekaniska påkänningar som resulterar i en robust inflammatoriskt svar, peeling, ödem i lamina propria och submucusa, uroteliala gallring och mucosal skada av urotelium och njure 35,36. Dessutom ger katetern en yta för bakteriell vidhäftning och därigenom skapa en miljö utnyttjas av flera arter för att orsaka CAUTI. Medan UPEC är fortfarande en viktig bidragsgivare, svarar Enterococcus faecalis för 15% av dessa CAUTI 37. E. faecalis blir alltmer resistenta mot antibiotika med resistens mot vancomycin uppkomst, utgör ett allvarligt hälsoproblem 38. E. faecalis har många virulensfaktorer inklusive toxiner och adhesiner som krävs för anslutning till både katetern och epitel 38. Under urin kateterisering, är utsatta för mikrobiell adhesion, förökning och spridning i urinvägarna 39,40 värden. E. faecalis bildar en biofilm på katetern som en del av en mekanism för att framhärda i urinblåsan och sprida till njurarna, som återges i en mus CAUTI modell 41. Nyligen har det visat vid urin kateterisering, fibrinogen (Fg) som släpps in i blåsan som en del av det inflammatoriska svaret. Fg ackumuleras i blåsan, rockar katetern och är väsentlig för E. faecalis biofilmsbildning, som fungerar som en bilaga schavotten. I en C57BL / 6 musmodell av CAUTI, upptäckte vi att E. faecalis biofilmbildning på katetern, och sålunda persistens i blåsan, var beroende av EBP pilus, speciellt dess spets adhesin EBPA. Vi fann att den N-terminala domänen av EBPA specifikt binder till FG beläggning av katetern. Dessutom konstaterades det att E. faecalis använder Fg som metabolit källan under infektion, vilket ökar biofilm formation 42.

Musmodeller har visat avgörande för understanding samt att förutsäga kliniska manifestationer av UTI och CAUTI 41. I den här artikeln visar vi inokulat beredning av cystit UPEC isolera UTI89 och transuretral ympning av C3H / HeN möss. Dessutom visar vi ett protokoll för katetrar i C57BL / 6-möss och inokulering av E. faecalis OG1RF stam. Båda dessa tekniker leder till en konsekvent och pålitlig UVI eller CAUTI i möss. Vi visar också tekniker som används för att observera IBC formation under akut cystit och urinsamling för analys av kronisk eller återkommande blåskatarr. C3H / HeN-möss har använts för att studera aspekter av UPEC patogenes inklusive inledande bakteriell invasion, IBC bildning, filamentering och utveckling av kronisk cystit 23,33,43. Dessa virulens parametrar har också undersökts i en rad andra mus bakgrunder 22,33. För CAUTI tillåter C57BL / 6 modell för främmande kropp implantation i urinblåsan med efterföljande bakteriell samarbetelonization, som kan hållas i 7 dagar efter infektion 41. Dessa modeller har varit användbar för att bedöma bakteriell virulens mekanismer, värd svar på UVI och mekanismer för att undergräva värdsvar, som till stor del har därefter sammanfattat eller observerats i kliniska befolkningsgrupper.

Protocol

Etik uttalande: Washington University Animal Studies Utskottet godkände alla mus infektioner och förfaranden som en del av protokoll nummer 20120216, som godkändes 2013/01/11 och löper 2016/01/11. Övergripande hand om djuren överensstämde med Guiden för vård och användning av försöksdjur från National Research Council och USDA Animal Care Resource Guide. Dödshjälp förfaranden är förenliga med "AVMA riktlinjer för avlivning av djur 2013 utgåva." 1. UPEC UTI protoko…

Representative Results

De intravesikala modeller av okomplicerad och kateter i samband UVI erbjuder flexibla plattformar för att belysa de molekylära mekanismerna av bakteriell patogenes, effekterna av dessa sjukdomar på värdvävnaden, samt utveckling och testning av nya metoder för att hantera dessa gemensamma och kostsamma infektioner. Beroende på musstam och patogen kan intravesikal ympning kan användas för att studera värd-patogen interaktioner att belysa faktorer som krävs för att initiera eller modulerande akut (Figur…

Discussion

Okomplicerad samhällsförvärvad UTI är en vanlig och kostsam infektion står för flera miljoner primärvårdsbesök varje år 46. Dessutom Cautis är en vanlig vård förvärvad infektion som har blivit mycket kostsamt att vårdgivare som centran för Medicare och Medicaid Services inte längre ersätter leverantörer för den extra kostnaden för behandling till följd av vårdrelaterade CAUTI 45. De musmodeller av UTI, både okomplicerad cystit och CAUTI, som beskrivs i dessa protokoll ger ov…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finansieringen av detta arbete lämnades av ORWH SCOR P50 DK064540, RO1 DK 051.406, RO1 AI 108.749-01, F32 DK 101.171, och F32 DK 104.516-01.

Materials

Material for catheter and needle preparation:
30ga needles BD Precision Glide 305106 30Gx ½ (0.3 mm x 13mm)
PE10 polyethylene tubing BD 427400 Inside diameter -0.011 in (0.28 mm); outside diameter – 0.024 in (0.61 mm)
RenaSIL 025 platinum cured silicon tubing Braintree Scientific, Inc SIL 025 inside diameter-0.012 x outside diameter 0.025, 25 ft coil
Material for infections:
Isoflourane – Isothesia Butler Schein 29405 250 mL
Clear Glass Straight-Sided Jar Kimble Chase 5413289V 21
Stainless Steel Tea Infuser Schefs-Amazon Premium Loose Leaf Tea Infuser By Schefs – Stainless Steel – Large Capacity –
Non-sterile cotton balls Fisherbrand 22-456-880
50 ml Falcon tubes VWR 89039-660
Isotec 3 -vaporizer Ohmeda 1224478
Ear punch Fisher Scientific 13-812-201 (when necessary)
Betadine solution Betadine solution 10% Povidie-iodine topical solution
Q-tips Fisher Scientific 22-037-924 6 in
Diapers for bench Fisherbrand 14206 63 Absorbent Underpads (20”X36”mats)
Surgical lubricant Surgilube 0281-0205-36
Dissecting scissor Fine Science tools, INC 14084-08
Micro-Adson Forceps Fine Science tools, INC 11018-12
1 ml syringe BD 309659 Tuberculin slip tip
Parafilm Bemis PM996 4 in x 125 FT
Eppendorf rack Fisherbrand 05-541-1
Eppendorf tubes MIDSCI AVX-T-17-C
Harvesting catheters, bladders and kidneys:
Homogenizer PRO Scientific INC Bio-Gen Pro 200
5 ml polypropylene round-bottom tube BD 352063 for organ homogenization
Paper towel Georgia-Pacific
Ethanol Pharmco-AAPER 11100020S 200 proof
Costar™ Clear Polystyrene 96-Well Plates Corning 3788
1X Phosphate sodium saline Sigma-Aldrich P3813
BRANSONIC Ultrasonic cleaner 1210 Branson Ultrasonics Corporation 1210
IBC materials:
6-well tissue culture test plate Techno Plastic Products 92006
Pins Fine Science Tools 26002-20
Sylgard 184 Dow Corning 3097358-1004 Silicone Elastomer Kit
X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-b-D-galactoside) Invitrogen 15520-034 Ultrapure
N, N-Dimethylformamide Sigma Aldrich D4551
MgCl2 (Magnesium chloride) Sigma Aldrich M8266
Sodium deoxycholate Sigma Aldrich D6750
Nonidet-P40 Roche 11754599001 Octylphenolpoly(ethyleneglycolether)n
Potassium hexacyanoferrate(II) trihydrate (K-ferrOcyanide) Sigma Aldrich P3289
Potassium hexacyanoferrate(III) (K-ferrIcyanide) Sigma Aldrich 60299

Referências

  1. Foxman, B. Epidemiology of urinary tract infections: incidence, morbidity, and economic costs. Dis Mon. 49, 53-70 (2003).
  2. Foxman, B., et al. Risk factors for second urinary tract infection among college women. American journal of epidemiology. 151, 1194-1205 (2000).
  3. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Increasing antimicrobial resistance and the management of uncomplicated community-acquired urinary tract infections. Annals of internal medicine. 135, 41-50 (2001).
  4. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Isolation of fluoroquinolone-resistant rectal Escherichia coli. after treatment of acute uncomplicated cystitis. The Journal of antimicrobial chemotherapy. 56, 243-246 (2005).
  5. Gupta, K., Sahm, D. F., Mayfield, D., Stamm, W. E. Antimicrobial resistance among uropathogens that cause community-acquired urinary tract infections in women: a nationwide analysis. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 33, 89-94 (2001).
  6. Gupta, K., Scholes, D., Stamm, W. E. Increasing prevalence of antimicrobial resistance among uropathogens causing acute uncomplicated cystitis in women. Jama. 281, 736-738 (1999).
  7. Jarvis, W. R. Selected aspects of the socioeconomic impact of nosocomial infections: morbidity, mortality, cost, and prevention. Infect Control Hosp Epidemiol. 17, 552-557 (1996).
  8. Lo, E., et al. Strategies to prevent catheter-associated urinary tract infections in acute care hospitals: 2014 update. Infection control and hospital epidemiology : the official journal of the Society of Hospital Epidemiologists of America. 35, 464-479 (2014).
  9. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature reviews Urology. 7, 653-660 (2010).
  10. Hooton, T. M., Stamm, W. E. Diagnosis and treatment of uncomplicated urinary tract infection. Infect Dis Clin North Am. 11, 551-581 (1997).
  11. Hannan, T. J., et al. LeuX tRNA-dependent and -independent mechanisms of Escherichia coli. pathogenesis in acute cystitis. Molecular microbiology. 67, 116-128 (2008).
  12. Cusumano, C. K., Hung, C. S., Chen, S. L., Hultgren, S. J. Virulence plasmid harbored by uropathogenic Escherichia coli. functions in acute stages of pathogenesis. Infection and immunity. 78, 1457-1467 (2010).
  13. Dhakal, B. K., Mulvey, M. A. The UPEC pore-forming toxin alpha-hemolysin triggers proteolysis of host proteins to disrupt cell adhesion, inflammatory, and survival pathways. Cell host & microbe. 11, 58-69 (2012).
  14. Garcia, E. C., Brumbaugh, A. R., Mobley, H. L. Redundancy and specificity of Escherichia coli. iron acquisition systems during urinary tract infection. Infection and immunity. 79, 1225-1235 (2011).
  15. Bergsten, G., Wullt, B., Svanborg, C. Escherichia coli., fimbriae, bacterial persistence and host response induction in the human urinary tract. International journal of medical microbiology : IJMM. 295, 487-502 (2005).
  16. Zhou, G., et al. Uroplakin Ia is the urothelial receptor for uropathogenic Escherichia coli.: evidence from in vitro FimH binding. J Cell Sci. 114, 4095-4103 (2001).
  17. Eto, D. S., Jones, T. A., Sundsbak, J. L., Mulvey, M. A. Integrin-mediated host cell invasion by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. PLoS Pathog. 3, e100 (2007).
  18. Taganna, J., de Boer, A. R., Wuhrer, M., Bouckaert, J. Glycosylation changes as important factors for the susceptibility to urinary tract infection. Biochemical Society transactions. 39, 349-354 (2011).
  19. Mulvey, M. A., et al. Induction and evasion of host defenses by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. Science. 282, 1494-1497 (1998).
  20. Mysorekar, I. U., Mulvey, M. A., Hultgren, S. J., Gordon, J. I. Molecular regulation of urothelial renewal and host defenses during infection with uropathogenic Escherichia coli.. The Journal of biological chemistry. 277, 7412-7419 (2002).
  21. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  22. Garofalo, C. K., et al. Escherichia coli. from urine of female patients with urinary tract infections is competent for intracellular bacterial community formation. Infection and immunity. 75, 52-60 (2007).
  23. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proc Natl Acad Sci USA. 101, 1333-1338 (2004).
  24. Rosen, D. A., et al. Utilization of an intracellular bacterial community pathway in Klebsiella pneumoniae. urinary tract infection and the effects of FimK on type 1 pilus expression. Infection and immunity. 76, 3337-3345 (2008).
  25. Anderson, G. G., et al. Intracellular bacterial biofilm-like pods in urinary tract infections. Science. 301, 105-107 (2003).
  26. Robino, L., et al. Detection of intracellular bacterial communities in a child with Escherichia coli. recurrent urinary tract infections. Pathogens and disease. 68, 78-81 (2013).
  27. Rosen, D. A., Hooton, T. M., Stamm, W. E., Humphrey, P. A., Hultgren, S. J. Detection of intracellular bacterial communities in human urinary tract infection. PLoS Med. 4, e329 (2007).
  28. Horsley, H., et al. Enterococcus faecalis subverts and invades the host urothelium in patients with chronic urinary tract infection. PloS one. 8, e83637 (2013).
  29. Hopkins, W. J., Uehling, D. T., Wargowski, D. S. Evaluation of a familial predisposition to recurrent urinary tract infections in women. American Journal of Medical Genetics. 83, 422-424 (1999).
  30. Hopkins, W. J., Gendron-Fitzpatrick, A., Balish, E., Uehling, D. T. Time course and host responses to Escherichia coli. urinary tract infection in genetically distinct mouse strains. Infection and immunity. 66, 2798-2802 (1998).
  31. Mabeck, C. E. Treatment of uncomplicated urinary tract infection in non-pregnant women. Postgraduate medical journal. 48, 69-75 (1972).
  32. Ferry, S., Holm, S., Stenlund, H., Lundholm, R., Monsen, T. The natural course of uncomplicated lower urinary tract infection in women illustrated by a randomized placebo controlled study. Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 36, 296-301 (2004).
  33. Hannan, T. J., Mysorekar, I. U., Hung, C. S., Isaacson-Schmid, M. L., Hultgren, S. J. Early severe inflammatory responses to uropathogenic E. coli. predispose to chronic and recurrent urinary tract infection. PLoS Pathog. 6, (2010).
  34. Mysorekar, I. U., Hultgren, S. J. Mechanisms of uropathogenic Escherichia coli. persistence and eradication from the urinary tract. Proc Natl Acad Sci USA. 103, 14170-14175 (2006).
  35. Glahn, B. E., Braendstrup, O., Olesen, H. P. Influence of drainage conditions on mucosal bladder damage by indwelling catheters. II. Histological study. Scandinavian journal of urology and nephrology. 22, 93-99 (1988).
  36. Goble, N. M., Clarke, T., Hammonds, J. C. Histological changes in the urinary bladder secondary to urethral catheterisation. British journal of urology. 63, 354-357 (1989).
  37. Ronald, A. The etiology of urinary tract infection: traditional and emerging pathogens. Dis Mon. 49, 71-82 (2003).
  38. Arias, C. A., Murray, B. E. The rise of the Enterococcus.: beyond vancomycin resistance. Nature reviews. Microbiology. 10, 266-278 (2012).
  39. Garibaldi, R. A., Burke, J. P., Dickman, M. L., Smith, C. B. Factors predisposing to bacteriuria during indwelling urethral catheterization. The New England journal of medicine. 291, 215-219 (1974).
  40. Warren, J. W. Catheter-associated urinary tract infections. Infect Dis Clin North Am. 11, 609-622 (1997).
  41. Guiton, P. S., Hung, C. S., Hancock, L., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcal biofilm formation and virulence in an optimized murine model of foreign body-associated urinary tract infections. Infection and immunity. 78, 4166-4175 (2010).
  42. Flores-Mireles, A. L., Pinkner, J. S., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. EbpA vaccine antibodies block binding of Enterococcus faecalis. to fibrinogen to prevent catheter-associated bladder infection in mice. Science translational medicine. 6, 254ra127 (2014).
  43. Martinez, J. J., Mulvey, M. A., Schilling, J. D., Pinkner, J. S., Hultgren, S. J. Type 1 pilus-mediated bacterial invasion of bladder epithelial cells. The EMBO Journal. 19, 2803-2812 (2000).
  44. Hultgren, S. J., Schwan, W. R., Schaeffer, A. J., Duncan, J. L. Regulation of production of type 1 pili among urinary tract isolates of Escherichia coli.. Infection and immunity. 54, 613-620 (1986).
  45. Chenoweth, C. E., Gould, C. V., Saint, S. Diagnosis, Management, and Prevention of Catheter-Associated Urinary Tract Infections. Infect. Dis. Clin. North Am. 28, 105-+ (2014).
  46. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature Reviews Urology. 7, 653-660 (2002).
  47. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proc Natl Acad Sci USA. 103, (1988).
  48. Song, J., et al. TLR4-mediated expulsion of bacteria from infected bladder epithelial cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 14966-14971 (2009).
  49. Wang, H., Min, G., Glockshuber, R., Sun, T., Kong, X. P. Uropathogenic E. coli. adhesin-induced host cell receptor conformational changes: implications in transmembrane signaling transduction. Journal of molecular biology. 392, 352-361 (2009).
  50. Cusumano, C. K., et al. Treatment and prevention of urinary tract infection with orally active FimH inhibitors. Science translational medicine. 3, 109-115 (2011).
  51. Langermann, S., Ballou, W. R. Vaccination utilizing the FimCH complex as a strategy to prevent Escherichia coli. urinary tract infections. J Infect Dis. 183, S84-S86 (2001).
  52. Langermann, S., et al. Vaccination with FimH adhesin protects cynomolgus monkeys from colonization and infection by uropathogenic Escherichia coli. J Infect Dis. 181, 774-778 (2000).
  53. Langermann, S., et al. Prevention of mucosal Escherichia coli. infection by FimH-adhesin-based systemic vaccination. Science. 276, 607-611 (1997).
  54. Alteri, C. J., Hagan, E. C., Sivick, K. E., Smith, S. N., Mobley, H. L. T. Mucosal Immunization with Iron Receptor Antigens Protects against Urinary Tract Infection. Plos Pathogens. 5, (2009).
  55. Russo, T. A., et al. The siderophore receptor IroN of extraintestinal pathogenic Escherichia coli. is a potential vaccine candidate. Infect. Immun. 71, 7164-7169 (2003).
  56. Schwartz, D. J., et al. Positively selected FimH residues enhance virulence during urinary tract infection by altering FimH conformation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 15530-15537 (2013).
  57. Czaja, C. A., et al. Prospective cohort study of microbial and inflammatory events immediately preceding Escherichia coli. recurrent urinary tract infection in women. J Infect Dis. 200, 528-536 (2009).
  58. Chen, S. L., et al. Genomic Diversity and Fitness of E. coli. Strains Recovered from the Intestinal and Urinary Tracts of Women with Recurrent Urinary Tract Infection. Science Translational Medicine. 5, 2013 (2013).
  59. Schilling, J. D., Mulvey, M. A., Vincent, C. D., Lorenz, R. G., Hultgren, S. J. Bacterial invasion augments epithelial cytokine responses to Escherichia coli. through a lipopolysaccharide-dependent mechanism. Journal of immunology (Baltimore, Md : 1950). 166, 1148-1155 (2001).
  60. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  61. Chan, C. Y., St John, ., L, A., Abraham, S. N. Mast Cell Interleukin-10 Drives Localized Tolerance in Chronic Bladder Infection. Immunity. 38, 349-359 (2013).
  62. Justice, S. S., Lauer, S. R., Hultgren, S. J., Hunstad, D. A. Maturation of intracellular Escherichia coli. communities requires SurA. Infect. Immun. 74, 4793-4800 (2006).
  63. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 19884-19889 (2006).
  64. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 1333-1338 (2004).
  65. Guiton, P. S., Hannan, T. J., Ford, B., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcus faecalis. Overcomes Foreign Body-Mediated Inflammation To Establish Urinary Tract Infections. Infect. Immun. 81, 329-339 (2013).
  66. Thumbikat, P., Waltenbaugh, C., Schaeffer, A. J., Klumpp, D. J. Antigen-specific responses accelerate bacterial clearance in the bladder. Journal of Immunology. 176, 3080-3086 (2006).
  67. Rosen, D. A., Hung, C. -. S., Kline, K. A., Hultgren, S. J. Streptozocin-induced diabetic mouse model of urinary tract infection. Infect. Immun. 76, 4290-4298 (2008).
  68. Daneshgari, F., Leiter, E. H., Liu, G., Reeder, J. Animal Models of Diabetic Uropathy. Journal of Urology. 182, S8-S13 (2009).
  69. Guiton, P. S., et al. Combinatorial Small-Molecule Therapy Prevents Uropathogenic Escherichia coli. Catheter-Associated Urinary Tract Infections in Mice. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 56, 4738-4745 (2012).
  70. Totsika, M., et al. A FimH Inhibitor Prevents Acute Bladder Infection and Treats Chronic Cystitis Caused by Multidrug-Resistant Uropathogenic Escherichia coli. ST131. Journal of Infectious Diseases. 208, 921-928 (2013).

Play Video

Citar este artigo
Conover, M. S., Flores-Mireles, A. L., Hibbing, M. E., Dodson, K., Hultgren, S. J. Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (100), e52892, doi:10.3791/52892 (2015).

View Video