Summary

Heterotopisk Cervical hjärttransplantation i möss

Published: August 25, 2015
doi:

Summary

The cuff technique shortens and facilitates the model of heterotopic cervical heart transplantation in mice by avoiding technically challenging suture anastomoses of small vessels. The technical details shown in this video paper should allow researches to establish this model in their laboratories.

Abstract

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies this model by avoiding challenging suture anastomoses of small vessels thereby reducing warm ischemia time. In comparison to abdominal graft implantation the cervical model is less invasive and the implanted graft is easily accessible for further follow-up examinations. Anastomoses are performed by pulling the ascending aorta of the graft over the cuff with the recipient’s common carotid artery and by pulling the main pulmonary artery over the cuff with the external jugular vein. Selection of appropriate cuff size and complete mobilization of the vessels are important for successful revascularization. Ischemia-reperfusion (I/R) injury can be minimized by perfusing the graft with a cardioplegic solution and by hypothermia. In this article, we provide technical details for a simplified and improved cuff technique, which should allow surgeons with basic microsurgical skills to perform the procedure with a high success rate.

Introduction

Den hjärttransplantation modell används ofta för att undersöka l / R-skada, transplantatavstötning, efter transplantation vaskulopati och effektiviteten i immunmodulerande medel. Musmodeller kombinerar många fördelar som den kända immunologiska och genetiska bakgrunder, tillgången på många inavlade och transgena stammar och relativt låga experimentella kostnader.

År 1973 genomfördes en teknik för abdominal hjärttransplantation i möss först beskrevs av Corry et al 1. I denna modell transplantat revascularized av end-to-side anastomoser av de uppstigande aorta till mottagarens bukaorta och i huvudlungartären till nedre hålvenen. År 1991 var en sutur teknik för cervical hjärttransplantation i möss beskrivits av Chen et al 2. I denna modell en retrograd kranskärls perfusion etableras genom anastomos av mottagarens karotidartären till de uppstigande aorta hos grakterut. Det venösa blodet rinner via sinus coronarius till det högra förmaket, den högra kammaren och utstötes genom lungartären i recipienten externa jugularvenen (Figur 1). I jämförelse med buken transplantatet implantation hals modellen är mindre invasiv och ytliga placering av implantatet möjliggör en mycket lätt tillgänglighet för ytterligare uppföljningsundersökningar (t.ex. palpation, ekokardiografi, intravital fluorescensmikroskopi) 3,4.

Trots tekniska förbättringar 5,6, har en mer utbredd användning av denna modell varit begränsad på grund av tekniska svårigheter att utföra sys anastomoser av små fartyg med en hög förekomst av anastomos läckage och trombos. År 1991 Matsuura et al. införde manschetten teknik där kärlväggen vrängs över en syntetisk cylinder, vilket avsevärt underlättar modellen av livmoderhalscancer hjärttransplantation 7. Tekniken var further antagits för olika experimentella transplantation modeller inklusive njur 8, bukspottkörtel 9, lem 10, lever 11,12, lunga 13,14 och vaskulär transplantation 15. I jämförelse med suturen tekniken den erforderliga tiden för anastomos och sålunda är den varma ischemi tiden kortare och det finns betydligt mindre vaskulära komplikationer som använder manschetten tekniken 16. Dessutom möjliggör det kirurger med lite träning i mikrokirurgi för att utföra operationen med ett bra resultat. En nackdel med manschetten tekniken är förutsättningen ligering av den gemensamma halsartären, vilka kan ändra cerebral perfusion.

I den här videon papper presenterar vi en förbättrad och förenklad manschetten teknik för cervical hjärttransplantation i möss.

Protocol

Alla experiment har godkänts av den tyska Heart Center München och regering Bayern, Tyskland (Gz. 55.2-1-54-2532.3-17-13). Djuren inhystes i ett visst patogenfri anläggning och fick mänsklig omsorg i enlighet med "Principles of Laboratory Animal Care" som utarbetats av Nationalföreningen för medicinsk forskning och "Guide för skötsel och användning av försöksdjur" som tillhandahålls av National Academy Vetenskapsakademien och publicerat av National Institutes of Health (NIH publikation nr…

Representative Results

Vårt team framgångsrikt kunde utföra den beskrivna tekniken efter cirka 20 utbildnings operationer. Den mest utmanande delen är att vränga kärlväggen av karotidartären under manschetten, eftersom det lätt vänder tillbaka och flera försök kan leda till sönderrivning av väggen. Efter utbildningsperioden, den genomsnittliga totala operativa tid var 60 ± 8 minuter. Omkring 20 minuter krävs för donator skörd, 25 min för framställning av livmoderhalscancer fartyg och 15 minuter för anastomoser och hud st?…

Discussion

Vi har genomfört över 200 hjärttransplantationer med framgång över 90% i olika experimentella inställningar. Med den teknik som beskrivs här, kan hela förfarandet utföras inom 60 min med en erfaren kirurg. Genom att framställa livmoder fartyg före tillvaratagande av organ, kan den totala transplantat ischemi tiden begränsas till 20 minuter. Tid för implantation (varm ischemi tid) är betydligt kortare använder manschetten tekniken jämfört med suturen tekniken 16.

I…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

M.-A. Deutsch is supported by Dr. Rusche Forschungsprojekt (2014) Deutsche Stiftung für Herzforschung and Deutsche Gesellschaft für Thorax- Herz- und Gefäßchirurgie. M. Krane is supported by Deutsche Stiftung für Herzforschung (F/37/11), Deutsches Zentrum für Herz Kreislauf Forschung (DZHK B 13-050A; DZHK B 14-013SE) and Deutsche Forschungsgemeinschaft (KR3770/7-1; KR3770/9-1)

Materials

Forceps JFC-7.2 S&T P-00036 Curved tip 0.20 mm
Vessel dilatator D-5a S&T S-00124
Adventita scissor S&T S-00102
Vascular clamp B-1V S&T S-00396
Yasargil Clip Peter Lazic 65,097 3.5 mm lenght
Bipolar forceps Micromed 148-100-011 tip 0.25 mm
Polyimide tubes River Tech Medical 19-24 gauge
8.0 silk ligatures Catgut
Custodiol HTK solution Essential Pharmaceuticals

Referências

  1. Corry, R. J., Winn, H. J., Russell, P. S. Heart transplantation in congenic strains of mice. Transplant Proc. 5, 733-735 (1973).
  2. Chen, Z. H. A technique of cervical heterotopic heart transplantation in mice. Transplantation. 52, 1099-1101 (1991).
  3. Martins, P. N. Assessment of graft function in rodent models of heart transplantation. Microsurgery. 28, 565-570 (2008).
  4. Schramm, R., et al. The subepicardial microcirculation in heterotopically transplanted mouse hearts: an intravital multifluorescence microscopy study. J Thorac Cardiovasc Surg. 134, 210-217 (2007).
  5. Liu, F., Kang, S. M. Heterotopic heart transplantation in mice. J Vis Exp : JoVE. 238, (2007).
  6. Gong, W., et al. Introduction of modified cervical cardiac transplant model in mice. Exp Clin Transplant. 10, 158-162 (2012).
  7. Matsuura, A., Abe, T., Yasuura, K. Simplified mouse cervical heart transplantation using a cuff technique. Transplantation. 51, 896-898 (1991).
  8. Chen, H., Zhang, Y., Zheng, D., Praseedom, R. K., Dong, J. Orthotopic kidney transplantation in mice: technique using cuff for renal vein anastomosis. PloS one. 8, e77278 (2013).
  9. Maglione, M., et al. A novel technique for heterotopic vascularized pancreas transplantation in mice to assess ischemia reperfusion injury and graft pancreatitis. Surgery. 141, 682-689 (2007).
  10. Sucher, R., et al. Orthotopic hind-limb transplantation in rats. J Vis Exp : JoVE. , (2010).
  11. Kamada, N., Calne, R. Y. Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 28, 47-50 (1979).
  12. Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. J Vis Exp : JoVE. , (2012).
  13. Okazaki, M., et al. A mouse model of orthotopic vascularized aerated lung transplantation. Am J Transplant. 7, 1672-1679 (2007).
  14. Suzuki, H., Fan, L., Wilkes, D. S. Development of obliterative bronchiolitis in a murine model of orthotopic lung transplantation. J Vis Exp : JoVE. , (2012).
  15. Zou, Y., et al. Mouse model of venous bypass graft arteriosclerosis. Am J Pathol. 153, 1301-1310 (1998).
  16. Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8, 245-249 (2010).
  17. Niimi, M. The technique for heterotopic cardiac transplantation in mice: experience of 3000 operations by one surgeon. J Heart Lung Transplant. 20, 1123-1128 (2001).
  18. Arras, M., Autenried, P., Rettich, A., Spaeni, D., Rulicke, T. Optimization of intraperitoneal injection anesthesia in mice: drugs, dosages, adverse effects, and anesthesia depth. Comp Med. 51, 443-456 (2001).
check_url/pt/52907?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ratschiller, T., Deutsch, M., Calzada-Wack, J., Neff, F., Roesch, C., Guenzinger, R., Lange, R., Krane, M. Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice. J. Vis. Exp. (102), e52907, doi:10.3791/52907 (2015).

View Video