الانسان<em> المتسعة الوحشية</em> الهيكل العظمي خزعة العضلات باستخدام ويل Blakesley مبضع المحارات
Summary
This video demonstrates the technique of percutaneous muscle biopsy of the human vastus lateralis using the Weil-Blakesley conchotome.
Abstract
عن طريق الجلد خزعة العضلات باستخدام مبضع المحارات ويل Blakesley راسخة في كل من الممارسة السريرية والبحوث. وهو أسلوب آمنة وفعالة وجيد التحمل. ومبضع المحارات ويل Blakesley لديه معلومات سرية العض حاد مع 4-6 ملم جوفاء واسعة. يتم إدراجها من خلال 5-10 شق مم الجلد ويمكن ناور لاختراق الأنسجة التي تسيطر عليها. يتم فتح طرف وأغلق داخل الأنسجة ومن ثم تناوب خلال 90 -180 ° لقطع العضلات. حجم العضلات الحصول يلي تكرار أخذ العينات يمكن أن تختلف من 20 ملغم إلى 290 ملغم التي يمكن معالجتها لكل الأنسجة والدراسات الجزيئية. يحتاج الجرح إلى أن تبقى جافة ونشطة النشاط البدني عند الحد الأدنى لنحو 72 ساعة على الرغم من أن مستويات طبيعية من النشاط يمكن إعادة تشغيل مباشرة بعد العملية. هذا الإجراء هو آمن وفعال عندما يتم إيلاء اهتمام وثيق لاختيار الموضوعات، عقامة الكامل والرعاية التي تلي العملية. كل من اليمين واليسار ضدالوحشية astus هي مناسبة لخزعة يعتمد على تفضيل مشارك.
Introduction
الحصول على العضلات والهيكل العظمي للتشخيص اعتلال عضلي وغيرها من الأمراض التنكسية العصبية والعضلية تعتمد على وسائل آمنة وفعالة ومقبولة وليس تعجيزية للمرضى 1. تاريخيا، شملت أساليب الحصول على الأنسجة العضلية لتحليل خزعات مفتوحة تتم تحت التخدير العام أو من بعد الوفاة. هذه التقنيات سمحت رؤية مباشرة للعضلات وسمحت قطعة أكبر من العضلات إلى أن تحتاج فحص. ونظرا للعيوب محتملة هذه التقنيات يجب أن المريض من حيث الإقامة في المستشفى والانتعاش، وأدخلت أساليب جلدي "شبه المفتوحة" الخزعة العضلية كبدائل. تم تنفيذ هذه التقنية لأول مرة دوشين (1806-1875)، الذي يستخدم إبرة بناء الذات مع مبزل وكان قادرا على الحصول على عينة العضلات من موضوع العيش دون تخدير عام 2. ومنذ ذلك الحين، تم استخدام أشكال مختلفة من الإبر الخزعة 3،4،5. ومع ذلك، فإن خزعة نوقد eedle التي وضعتها بيرجستروم عام 1962 الأكثر شيوعا في الممارسة السريرية. في كل من الأطفال والبالغين، وكذلك في مجال البحوث 6،7،8،9،10. أنها تمتلك مبزل حاد، قنية القطع وقضيب دفع لطرد آخر الأنسجة الخزعة. وقد تم الإبلاغ عن عوائد العضلات التي تم الحصول عليها من هذا الإجراء لتتراوح بين 25 -293 ملغ بعد تكرار أخذ العينات 11،9.
قدم Henriksson لمبضع المحارات ويل Blakesley في عام 1979 باعتبارها شبه مفتوح طريقة الخزعة العضلية البديل (الشكل 1) 12. الصك هو هيكل واحد على عكس التصور بيرجستروم، وهو مصمم مثل forcep مع طرف العض حاد. حجم طرف يمكن أن تتراوح بين 4 ملم الى 6 ملم في العرض. عندما يعارض حواف اثنين من غيض العض، تشكيل جوفاء يضمن القبض على العضلات. يتم إدراج مبضع المحارات من خلال 5-10 ملم شق الجلد والابتعاد عن الحاجة إلى مبزل لاختراق العضلات ولفافة المغطي باعتباره scalpeل يمكن أن تستخدم لجعل المسار وصولا الى العضلات.
هذا الأسلوب يسمح التحكم اختراق الأنسجة مع وجود درجة عالية من القدرة على المناورة 13،14. انها مفيدة بشكل خاص للمواقع التي ضغوط لا داعي لها قد تتضرر الهياكل العظمية وعائية عصبية أو الكامنة على سبيل المثال، في موقع من الظنبوبي الأمامي 15،14. عائدات العضلات باستخدام مبضع المحارات يمكن أن يكون متغير وفي ممارستنا 20 – وقد تم الحصول على 200 ملغ من العضلات بعد أخذ العينات المتكررة. ميزة واحدة المحتملة لمبضع المحارات خلال إبرة بيرجستروم، بالإضافة إلى درجة عالية من القدرة على المناورة التي تقدمها، هو أن الطرف العض لا تحتاج إلى شحذ أو استبدالها في كثير من الأحيان كما في مبزل للبيرجستروم بناء 16.
ويتمثل الهدف العام من خزعة العضلات باستخدام مبضع المحارات ويل Blakesley هو الحصول على كميات كافية من الأنسجة العضلية لتمكين الكيمياء النسيجية والتحليل الجزيئي لكلا التشخيص والباحثيندراسة CH. وهو إجراء بسيط وآمن التي يمكن تعلمها بسهولة. مع هذه التقنية، والعضلات مناسبة لخزعة تتضمن العضلة ذات الرأسين، ثلاثية الرؤوس، الدالية، الساق، الظنبوبي الأمامي، النعلية وsacrospinals 17،15،7،18،14. الجزء الخارجي من الوحشية المتسعة هو الموقع الأكثر شيوعا للخزعة كما أنه يتجنب البنى الوعائية العصبية الرئيسية في الفخذ. وحددت ما يقرب من ثلثي أسفل خط وهمي الانضمام إلى الشوكة الحرقفية الأمامية العلوية والرضفة. بيانات التشكل في العضلات، وعلى سبيل المثال منطقة myofibre، نسب myofibre، والكثافة الشعرية المستمدة من المتسعة الوحشية هي أخذ العينات على نطاق واسع في الأدب السماح مقارنة بين دراسات 11،19.
Protocol
Representative Results
Discussion
لضمان سلامة المشاركين وإجراء خزعة العضلات بكفاءة، فمن الأهمية بمكان أن تدفع الانتباه إلى الخطوات الحاسمة في البروتوكول.
يجب أن يتم اختيار المشاركين بعد النظر بعناية في معايير الاستبعاد لتجنب المضاعفات مثل النزيف وضعف التئام ال…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
We wish to thank the study participants for making this work possible and the staff at the NIHR Southampton Biomedical Research Centre and the Wellcome Trust Clinical Research Facility, University Hospital Southampton for assistance with study measurements.
This work was supported by the NIHR Southampton Biomedical Research Centre, Nutrition, the MRC Lifecourse Epidemiology Unit and the University of Southampton. This report is independent research by the NIHR BRC Funding Scheme. The views expressed in this publication are those of the authors and not necessarily those of the NHS, the NIHR or the Department of Health. AMB is supported by a NIHR Clinical Research Fellowship, HPP is supported by the NIHR Southampton Biomedical Research Centre.
Materials
| Weil-Blakesley conchotome | Gebrüder Zepf Medizintechnik, Dürbheim, Germany | None | 6 mm biting tip |
| 5 ml 2% lidocaine | Generic use | None | One 5ml vial should suffice for adequate anaesthesia |
| Alcohol swab | Generic use | None | |
| 5 mls syringe | Generic use | None | |
| 25G and 23G sterile needles | Generic use | None | |
| Sterile scalpel size 11 | Generic use | None | |
| Sterile gauze squares | Generic use | None | |
| Sodium chloride 0.9% 10 ml | Fannin | 1122/002/001 | |
| Steri-Drape™ Small Drape with Adhesive Aperture | 3M | 1020 | |
| ChloraPrep 2% w/v /70% v/v cutaneous solution | CareFusion | 270400 | Two |
| Steri-Strip™ 1/4 inch x 3 in Reinforced Adhesive Skin Closures | 3M | R1541 | |
| PRIMAPORE sterile dressing 15cm x 8cm | Smith & Nephew |
66000318 | |
| Cotton crepe bandage Hospicrepe 233 7,5 cm x 4,5 m | Hartmann | 915562 | |
| Flexible cohesive bandage Co-Plus LF | BSN medical | 2904565 | |
| Disposable absorbent sheet | Generic use | None | |
| Micropore or transpore tape | Generic use | None | |
| Sterile gown with sterile paper towels | Generic use | None | |
| Sterile gloves | Generic use | None |
Referências
- Dubowitz, V., Sewry, C. A., Oldfords, A. . Muscle Biopsy: A Practical Approach. , (2013).
- Parent, A. Duchenne De Boulogne: a pioneer in neurology and medical photography. Can J Neurol Sci. 32 (3), 369-377 (2005).
- Hayot, M., Michaud, A., Koechlin, C., Caron, M. A., Leblanc, P., Prefaut, C., Maltais, F. Skeletal muscle microbiopsy: a validation study of a minimally invasive technique. Eur Respir J. 25 (3), 431-440 (2005).
- O’Rourke, K. S., Blaivas, M., Ike, R. W. Utility of needle muscle biopsy in a university rheumatology practice. J Rheumatol. 21 (3), 413-424 (1994).
- O’Rourke, K. S., Ike, R. W. Muscle biopsy. Curr Opin Rheumatol. 7 (6), 462-468 (1995).
- Bergstrom, J. Muscle electrolytes in man. Scand J Clin Lab Invest. 14, (1962).
- Edwards, R., Young, A., Wiles, M. Needle biopsy of skeletal muscle in the diagnosis of myopathy and the clinical study of muscle function and repair. N Engl J Med. 302 (5), 261-271 (1980).
- Edwards, R. H. Percutaneous needle-biopsy of skeletal muscle in diagnosis and research. Lancet. 2 (7724), 593-595 (1971).
- Edwards, R. H., Round, J. M., Jones, D. A. Needle biopsy of skeletal muscle: a review of 10 years experience. Muscle Nerve. 6 (9), 676-683 (1983).
- Shanely, R. A., Zwetsloot, K. A., Triplett, N. T., Meaney, M. P., Farris, G. E., Nieman, D. C. Human skeletal muscle biopsy procedures using the modified Bergstrom technique. J Vis Exp. (91), e51812 (2014).
- Coggan, A. R. Muscle biopsy as a tool in the study of aging. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 50, 30-34 (1995).
- Henriksson, K. G. ‘Semi-open’ muscle biopsy technique. A simple outpatient procedure. Acta Neurol Scand. 59 (6), 317-323 (1979).
- Dorph, C., Nennesmo, I., Lundberg, I. E. Percutaneous conchotome muscle biopsy. A useful diagnostic and assessment tool. J Rheumatol. 28 (7), 1591-1599 (2001).
- Poulsen, M. B., Bojsen-Moller, M., Jakobsen, J., Andersen, H. Percutaneous conchotome biopsy of the deltoid and quadricep muscles in the diagnosis of neuromuscular disorders. J Clin Neuromuscul Dis. 7 (1), 36-41 (2005).
- Dietrichson, P., Mellgren, S. I., Skre, H. Muscle biopsy with the percutaneous conchotome technique. J Oslo City Hosp. 30 (5), 73-79 (1980).
- Dietrichson, P., Coakley, J., Smith, P. E., Griffiths, R. D., Helliwell, T. R., Edwards, R. H. Conchotome and needle percutaneous biopsy of skeletal muscle. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 50 (11), 1461-1467 (1987).
- Andonopoulos, A. P., Papadimitriou, C., Melachrinou, M., Meimaris, N., Vlahanastasi, C., Bounas, A., Georgiou, P. Asymptomatic gastrocnemius muscle biopsy: an extremely sensitive and specific test in the pathologic confirmation of sarcoidosis presenting with hilar adenopathy. Clin Exp Rheumatol. 19 (5), 569-572 (2001).
- Helliwell, T. R., Coakley, J., Smith, P. E., Edwards, R. H. The morphology and morphometry of the normal human tibialis anterior muscle. Neuropathol Appl Neurobiol. 13 (4), 297-307 (1987).
- Patel, H. P., Jameson, K. A., Syddall, H. E., Martin, H. J., Stewart, C. E., Cooper, C., Sayer, A. A. Developmental influences, muscle morphology, and sarcopenia in community-dwelling older men. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 67 (1), 82-87 (2012).
- Patel, H. P., Syddall, H. E., Martin, H. J., Stewart, C. E., Cooper, C., Sayer, A. A. Hertfordshire Sarcopenia Study: design and methods. BMC Geriatrics. 10 (1), 43 (2010).
- Anderson, J. R. Recommendations for the biopsy procedure and assessment of skeletal muscle biopsies. Virchows Arch. 431 (4), 227-233 (1997).
- Patel, H. P., Syddall, H. E., Martin, H. J., Cooper, C., Stewart, C., Sayer, A. A. The Feasibility and Acceptability of Muscle Biopsy in Epidemiological Studies: Findings from the Hertfordshire Sarcopenia Study (HSS). J Nutr Health Aging. 15 (1), 10-15 (2011).
- Charifi, N., Kadi, F., Feasson, L., Costes, F., Geyssant, A., Denis, C. Enhancement of microvessel tortuosity in the vastus lateralis muscle of old men in response to endurance training. J Physiol. 554 (Pt 2), 559-569 (2004).
- Frontera, W. R., Suh, D., Krivickas, L. S., Hughes, V. A., Goldstein, R., Roubenoff, R. Skeletal muscle fiber quality in older men and women. Am J Physiol Cell Physiol. 279 (3), C611-C618 (2000).
- He, J., Watkins, S., Kelley, D. E. Skeletal muscle lipid content and oxidative enzyme activity in relation to muscle fiber type in type 2 diabetes and obesity. Diabetes. 50 (4), 817-823 (2001).
- Patel, H. P., Al-Shanti, N., Davies, L. C., Barton, S. J., Grounds, M. D., Tellam, R. L., Stewart, C. E., Cooper, C., Sayer, A. A. Lean mass, muscle strength and gene expression in community dwelling older men: findings from the Hertfordshire Sarcopenia Study (HSS). Calcif Tissue Int. 95 (4), 308-316 (2014).
- Peterson, C. M., Johannsen, D. L., Ravussin, E. Skeletal muscle mitochondria and aging: a review. J Aging Res. 2012, 194821 (2012).
