Summary

Nøyaktig og Fenol Gratis DNA sexing av Dag 30 svinekjøtt embryoer ved PCR

Published: February 14, 2016
doi:

Summary

This protocol describes an accurate, inexpensive, rapid and non-toxic method to determine the sex of Day 30 porcine embryo using PCR method after grinding an embryo into powder without phenol chloroform extraction and DNA column purification.

Abstract

Forskning på prenatal programmering i grisen har vist at kjønn på utvikling av embryo eller foster kan påvirke utviklings utfallet. Derfor er det nødvendig muligheten til å bestemme et embryo er sex i mange eksperimenter spesielt om tidlig utvikling. Den foreliggende protokoll demonstrerer en billig, rask og ikke-toksiske fremstilling av gris genomisk DNA for bruk med PCR. Dag 30 embryo må humant samles i henhold til retningslinjer fastsatt av Institutional Animal politikk og velferdskomiteer for denne protokoll. Fremstillingen av hele embryoet for denne PCR-basert sexing teknikk innebærer ganske enkelt å slipe den frosne embryo til et fint pulver ved anvendelse av en pre-avkjølt morter. PCR-kvalitet DNA frigjøres fra en liten mengde av embryo pulver ved å bruke en varm inkubasjon i en alkalisk lyserings reagens. Deretter blir DNA-løsning blandet med nøytralisering buffer og anvendt direkte for PCR. To primerpar genereres til Detect spesifikk kjønn bestemmelse region av Y-kromosom (SRY) og ZFX region av X- kromosom med høy nøyaktighet og spesifisitet. Det samme protokollen kan brukes på andre langstrakte embryoer (dag 10 til dag 14) tidligere enn dag 30. I tillegg kan denne protokollen gjennomføres med 96-flommet plater når screening et stort antall embryoer, noe som gjør det mulig for automatisering og høy gjennomstrømming sex skrive.

Introduction

Den gris har blitt en grunnleggende forskning fag i utvikling, genetikk og ernæring i både menneskelige og husdyr sektorer. Potensialet av griser som biomedisinske modeller for human forskning kan tilskrives deres fysiologiske likheter. I husdyr, kan manipulering av kjønnsfordelingen forsterke virkningen av seleksjon og genetisk forbedringsprogrammer 1. Sexing individuelle embryo er et grunnleggende verktøy som brukes i mange eksperimentelle undersøkelser inkludert men ikke begrenset til genotype, epigenetikk og X inaktivering av kjønnsdimorfisme under tidlig embryoutvikling 2.

Studier på mus tyder på at mors kosthold og andre faktorer kan føre til kjønnsubalansen tre. I griser, årsaker til sex ratio ubalanse inkluderer faderlig rase 4, livmor kapasitet 5, og purka metabolske tilstand 6. Siden forskjellene observert i embryoer og kull kan være påvirket av seg selvxual dimorphism, bør forskerne være oppmerksom på embryo sex og kjønnsfordelingen før trekke konklusjoner om deres forskning. Utviklingen av effektive verktøy og protokoller for sexing gris embryo på dag 30 av utbyggingen vil bli diskutert her.

Forskjellige metoder for sex typing har blitt utviklet for genetiske studier i modellorganismer og husdyr. Spesielt i husdyr, identifisere mannlige og kvinnelige tidlige embryoer er en svært vanlig praksis å forbedre genetisk seleksjon for avlsprogram. Tidlig embryo karyotypering i gris ved hjelp Giemsa 7 eller intens fluorescens 8,9 teknikker har blitt brukt for sex skrive. Men disse fremgangsmåter er tidkrevende og ikke egnet for screening av et stort antall embryoer raskt og nøyaktig.

Den mest effektive sex skrive metoden er DNA-amplifikasjon ved anvendelse av en varmestabil DNA-polymerase og et par av primere. DNA sexing ved hjelp av PCR-metoden er mer spesifikk, rask og følsom, oare som krever en liten mengde av cellulære materialer. Den første PCR-basert embryo sexing ble utført på mennesker 10, og senere i mus 11, storfe 12, bøffel 13 og sau 14 pre-implantasjon embryoer. I gris, ble den tidligste DNA-typing kjønn metode etablert for pre-implantation embryo via et enkelt par av Y-kromosom spesifikk DNA-primere 15. Imidlertid var de mest vanlige PCR-primere for kjønnsbestemmelse valgt fra Y-kromosomet av mannlig spesifikk SRY gen 16 og den ikke-kjønn diskriminerende område av et sink-finger-genet lokalisert på både X- og Y-kromosom 17. Senere har disse primere er anvendt for å bestemme kjønn på dag 30 embryoer i denne studien med forbedret spesifisitet av primerne for å detektere bare X- kromosomet til en sink-finger-genet.

Genomisk DNA fra svin pre-implantasjon embryo kan hentes ut ved å utsette et intakt blastocyst til buffer med proteinase K 16 eller ved å ta en biopsi av noen få celler fra den individuelle tidlig spalting embryoer 15 og ved hjelp av dem for direkte PCR. Men utgivelsen av DNA fra svin blod, hår, vev eller et stort Conceptus over noen få centimeter i størrelse er ikke effektivt gjøres ved hjelp av proteinase K-metoden. DNA ekstraksjonsmetoder for disse materialene er etablert ved hjelp av enten tidkrevende fenol / kloroform protokoller 6 eller dyrt kolonne basert kits 18. For å unngå bruk av potensielt toksiske kjemikalier, er det en tendens til å utvikle billige, enkle og fenol-fri DNA-ekstraksjonsmetoder. Denne type av protokoll for isolering av PCR-kvalitet genomisk DNA fra mus 19 og sebrafisk 20 vev har blitt etablert ved hjelp av varmt natriumhydroksyd og Tris (hotshot). Denne studien gir en protokoll for å få DNA med modifiserte hotshot og redesignet duplex primerpar for PCR sex skrive direkte fra cellelysater av Day 30 svin embryoer medhøy nøyaktighet.

Protocol

I samsvar med den kanadiske Rådet for dyrestell retningslinjer og med godkjenning av fakultetet Animal Policy and Welfare Committee – Oppdrett av University of Alberta, ble gravide purker avlivet av opplært staber på ca dag 30 av svangerskapet og embryoer ble samlet. Bruk eksamen hansker hele tiden under prosedyrene. 1. Prøvetaking og prøveoppbevaring Avlive purke hjelp fange bolt fulgt av blodtapping. Bruk undersøkelseshansker for å samle den reproduktive traktater og embryoer fra hver avlives…

Representative Results

Et representativt resultat av kjønnsbestemmelse fra 345 DNA-lysater screening ved PCR er vist i figur 7 og oppsummert i tabell 1. Som det kan ses på figur 7, er primerne glødetemperaturen ved 65 ° C er den optimale tilstand i denne PCR-protokollen generere lik intensitet og betinget amplikon størrelser (figur 5)</…

Discussion

De fleste av de eksisterende protokoller svin embryoer DNA sex typing er bare egnet for tidlig pre-implantasjon scenen 15,16. Vi har utviklet en protokoll egnet for svin embryo screening sent i svangerskapet. Basert på studier med liknende utviklingsstadier av embryoer fra tidligere studier 6,18, er den foreliggende protokoll anses å være sikrere og lave kostnader.

Denne protokollen er også egnet for et stort antall prøver for sex skrive ved hjelp av PCR ved overf?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å erkjenne samarbeid og økonomiske bidrag fra følgende forskningsmidler byrå: Alberta buskap og Meat Agency Ltd, svinekjøtt CRC, Alberta svinekjøtt, Hypor A Hendrix Genetics Company og NSERC CRSNG.

Materials

KAPA HiFi HotStart Ready Mix PCR kit  KAPABiosystems KR0370 other Hot Start Taq polymerase can be used after optimization
SYBR Safe DNA Gel Stain Life Technologies S33102 Ethidium bromide can be substituted for SYBR Safe
Pig female and male genomic DNA Zyagen GP-160-F1 & GP-160-M5 Postive controls from the tissues of known sex DNA can be used.
Typhoon FLA 9500 laser scanner GE Healthcare Life Sciences 28-9969-43 other imaging system can be used
Free Soft Nitrile Examination Gloves WWR 89038-270 any other examination glove can be used
Sodium hydroxide, solid  Fisher BP 359 -212 Molecular Biology Grade
Eppendorff DNA LoBind Tubes, 1.5 ml, PCR clean Eppendorff 0030 108.051 heat resistant
ThermoStat plus Eppendorff 22670204 Use as a incubator for 95C, don't need to use the heater
Toothpick Bunzl Plc 75200815 Any round wooden toothpicks can be used – quality wood
Microcentrifuge 5417R/5417C Eppendorff 22621807 This model was discontinued. But another newer model can be used
Microspatula Fisher SDI28540115 Autoclaved before use each time.

Referências

  1. Seidel, G. E. Economics of selecting for sex: the most important genetic trait. Theriogenology. 59, 585-598 (2003).
  2. Gutiérrez-Adán, A., et al. Development consequences of sexual dimorphism during pre-implantation embryonic development. Reprod. Domest. Anim. 41, 54-62 (2006).
  3. Rosenfeld, C. S., Roberts, R. M. Maternal diet and other factors affecting offspring sex ratio: a review. Biol Reprod. 71, 1063-1070 (2004).
  4. Gorecki, M. T. Sex ratio in litters of domestic pigs (Sus scrofa f. domestica Linnaeus, 1758). Biol. Lett. 40, 111-118 (2003).
  5. Chen, Z. Y., Dziuk, P. J. Influence of initial length of uterus per embryo and gestation stage on prenatal survival, development, and sex ratio in the pig. J. Anim. Sci. 71, 1895-1901 (1993).
  6. Vinsky, M. D., Novak, S., Dixon, W. T., Dyck, M. K., Foxcroft, G. R. Nutritional restriction in lactating primiparous sows selectively affects female embryo survival and overall litter. Reprod. Fertil. Dev. 18, 347-355 (2006).
  7. Cassar, G., King, W. A., King, G. J. Influence of sex on early growth of pig conceptuses. J. Reprod. Fertil. 101, 317-320 (1994).
  8. Zudova, D., Rezacova, O., Kubickova, S., Rubes, J. Aneuploidy detection in porcine embryos using fluorescence in situ hybridization. Cytogenet Genome Res. 102, 179-183 (2003).
  9. Hornak, M., Oracova, E., Hulinska, P., Urbankova, L., Rubes, J. Aneuploidy detection in pigs using comparative genomic hybridization: from the oocytes to blastocysts. PLoS One. 7, (2012).
  10. Handyside, A. H., Pattinson, J. K., Penketh, R. J., Delhanty, J. D., Winston, R. M., Tuddenham, E. G. Biopsy of human preimplantation embryos and sexing by DNA amplification. Lancet. 1, 347-349 (1989).
  11. Wilton, L. J., Shaw, J. M., Trounson, A. O. Successful single-cell biopsy and cryopreservation of preimplantation mouse embryos. Feri. Steril. 51, 513-517 (1989).
  12. Peura, J. M., Turunen, M., Janne, J. A reliable sex determination assay for bovine preimplantation embryos using the polymerase chain reaction. Theriogenology. 35, 547-555 (1991).
  13. Rao, K. B., Pawshe, C. H., Totey, S. M. Sex determination of in vitro developed buffalo (Buhalus buhalis.) embryos by DNA amplification. Mol. Reprod. Dev. 36, 291-296 (1993).
  14. Herr, C. M., Matthaei, K. I., Petrzak, U., Reed, K. C. A rapid Y-chromosome-detecting ovine embryo sexing assay. Theriogenology. 33, 245 (1990).
  15. Fajfar-Whetstone, C. J., LaneRayburn, A., Schook, L. B., Wheeler, M. B. Sex determination of porcine during preimplantation embryos via y-chromosome specific DNA sequences. Animal Biotechnology. 4, 183-193 (1993).
  16. Pomp, D., Good, B. A., Geisert, R. D., Corbin, C. J., Conley, A. J. Sex identification in mammals with polymerase chain reaction and its use to examine sex effects on diameter of day-10 or -11 pig embryos. J. Anim. Sci. 73, 1408-1415 (1995).
  17. Aasen, E., Medrano, J. F. Amplification of the ZFY and ZFX genes for sex identification in humans, cattle, sheep and goats. Biotechnology (N Y). 8, 1279-1281 (1990).
  18. Oliver, G., et al. Restricted feed intake in lactating primiparous sows. II. Effects on subsequent litter sex ratio and embryonic gene expression. Reprod Fertil. Dev. 23, 899-911 (2011).
  19. Truett, G. E., Heeger, P., Mynatt, R. L., Truett, A. A., Walker, J. A., Warman, M. L. Preparation of PCR-quality mouse genomic DNA with hot sodium hydroxide and tris (HotSHOT). Biotechniques. 29, 52-54 (2000).
  20. Meeker, N. D., Hutchinson, S. A., Ho, L., Trede, N. S. Method for isolation of PCR-ready genomic DNA from zebrafish embryos. Biotechniques. 43, 610-614 (2007).
  21. Almeida, F. C. R. L., Machado, G. S., Borges, A. L. C. C., Rosa, B. O., Fontes, D. O. Consequences of different dietary energy sources during folliculardevelopment on subsequent fertility of cyclic gilts. Animal. 8, 293-299 (2014).
  22. Foxcroft, G. R., Dixon, W. T., Dyck, M. K., Novak, S., Harding, J. C. S., Almeida, F. C. R. L., Rodriguez-Martinez, Prenatal programming of postnatal development in the pig. Control of Pig Reproduction VIII. , 212-213 (2009).
check_url/pt/53301?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Blanes, M. S., Tsoi, S. C., Dyck, M. K. Accurate and Phenol Free DNA Sexing of Day 30 Porcine Embryos by PCR. J. Vis. Exp. (108), e53301, doi:10.3791/53301 (2016).

View Video