Summary

Immunoprecipitazione della cromatina Saggio per la identificazione di Arabidopsis interazioni proteina-DNA<em> In Vivo</em

Published: January 14, 2016
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Summary

Cromatina immunoprecipitazione è una tecnica potente per l'identificazione di DNA siti di Arabidopsis proteine ​​in vivo vincolante. Questa procedura include cromatina reticolazione e frammentazione, immunoprecipitazione con anticorpi selettivi contro la proteina di interesse, e l'analisi qPCR di DNA legato. Descriviamo un semplice saggio di ChIP ottimizzato per piante di Arabidopsis.

Abstract

Intricate gene regulatory networks orchestrate biological processes and developmental transitions in plants. Selective transcriptional activation and silencing of genes mediate the response of plants to environmental signals and developmental cues. Therefore, insights into the mechanisms that control plant gene expression are essential to gain a deep understanding of how biological processes are regulated in plants. The chromatin immunoprecipitation (ChIP) technique described here is a procedure to identify the DNA-binding sites of proteins in genes or genomic regions of the model species Arabidopsis thaliana. The interactions with DNA of proteins of interest such as transcription factors, chromatin proteins or posttranslationally modified versions of histones can be efficiently analyzed with the ChIP protocol. This method is based on the fixation of protein-DNA interactions in vivo, random fragmentation of chromatin, immunoprecipitation of protein-DNA complexes with specific antibodies, and quantification of the DNA associated with the protein of interest by PCR techniques. The use of this methodology in Arabidopsis has contributed significantly to unveil transcriptional regulatory mechanisms that control a variety of plant biological processes. This approach allowed the identification of the binding sites of the Arabidopsis chromatin protein EBS to regulatory regions of the master gene of flowering FT. The impact of this protein in the accumulation of particular histone marks in the genomic region of FT was also revealed through ChIP analysis.

Introduction

Negli ultimi anni una vasta gamma di strumenti genetici, molecolari e genomici sono stati sviluppati nella specie modello Arabidopsis thaliana. Questa tecnologia ha facilitato enormemente il progresso nella comprensione di come lo sviluppo della pianta è regolamentata. Tra i processi di sviluppo studiati utilizzando Arabidopsis come modello, il controllo genetico del tempo di fioritura è stata ampiamente analizzata. Questi studi hanno dimostrato che le piante modulano estrema precisione il tempo di fioritura in risposta a stimoli endogeni come ormoni e l'età della pianta, e anche a segnali ambientali come fotoperiodo e temperatura che sincronizzano tempo di fioritura con il ciclo naturale delle stagioni 1, 2. L'isolamento e la caratterizzazione di mutanti di Arabidopsis con alterazioni nel tempo della fioritura è stato determinante nello svelare una complessa rete di geni che regolano il tempo di fioritura in risposta a fattori endogeni ed ambientali. Questi circuiti sono geneticheintegrato a livello di alcuni geni master che agiscono come interruttori di fioritura, e l'esatta tempistica di apertura floreale dipende dall'equilibrio della fioritura e promuovere attività che lavorano a monte dei geni integratore floreali 1,3 reprimere.

La caratterizzazione funzionale dei geni identificati per il loro ruolo nel controllo di iniziazione fioritura, complice il recente uso di approcci genomici, hanno rivelato il ruolo centrale della regolazione trascrizionale nella modulazione del tempo di fioritura. In effetti, molti dei geni maestri codificano fattori di trascrizione fioritura 4. Inoltre, un certo numero di cromatina complessi proteici rimodellamento influenzano l'espressione dei geni maestri di fioritura. Un certo numero di mutanti di Arabidopsis isolati per il loro tempo di fioritura alterato rivelato trasportare mutazioni nei geni che codificano per una varietà di modificatori della cromatina. Diversi rimodellatori cromatina che introducono modificazioni post-a Histone code, riposizionare nucleosomi relativi al DNA o scambiano istoni canoniche da varianti istoni sono necessarie per la corretta regolazione della fioritura in Arabidopsis 5,6. Alcune di queste attività di rimodellamento della cromatina catalizzano la deposizione o la rimozione di modifiche covalenti quali acetilazione o metilazione in specifici residui istoni. Questi segni istoni sono specificamente riconosciuti da effettori specializzate che reclutano altri complessi di rimodellamento della cromatina, fattori di trascrizione o componenti del macchinario trascrizionale per regolare l'attività trascrizionale di geni fioritura.

Immunoprecipitazione della cromatina (ChIP) permette di individuare in vivo DNA-binding siti per le proteine ​​di interesse (Figura 1). Questa procedura sfrutta la capacità di alcune sostanze chimiche per reticolare le proteine ​​al DNA. I risultanti complessi DNA-proteina possono essere poi immunoprecipitati utilizzando anticorpi specifici agafattori di trascrizione, proteine ​​inst-cromatina legame, o particolari modifiche e epitopi eterologhe (comunemente indicato come "tag") attaccati alla proteina di scelta. Il DNA purificato da queste immunoprecipitati può essere utilizzato come modello in PCR (qPCR) reazioni quantitativa per valutare per l'arricchimento di particolari sequenze di interesse. In questo modo, i siti di legame di fattori di trascrizione o la distribuzione dei voti istone in particolari geni possono essere stabiliti 7,8. Inoltre, in combinazione con Next Generation Sequencing (NGS), che permette il sequenziamento massivo parallelo, tecnologia dei chip ha reso possibile l'identificazione a livello di genoma dei siti di legame di fattori di trascrizione e svelando i paesaggi epigenomiche di modificazioni degli istoni. Inoltre, l'analisi simultanea dell'espressione genica consente il monitoraggio come il legame di regolatori trascrizionali o deposizione di particolari segni istone correlare con trascrizionale activity di geni 9.

L'utilizzo di protocolli chip Arabidopsis ha permesso di valutare l'impatto che una varietà di regolatori trascrizionali hanno sull'organizzazione della cromatina di geni master di fioritura e di come questi cambiamenti strutturali influenzano l'espressione genica 5,6. Risultati precedenti hanno mostrato che la Arabidopsis locus VITE IN ANTICIPO IN GIORNI SHORT (EBS) agisce come repressore della fioritura e mutanti in questo gene mostrano un'accelerazione della fioritura e aumenta del gene maestro di FT fioritura. Inoltre, la perdita di funzione mutazioni in FT sopprimere completamente il fenotipo fioritura precoce delle piante EBS mutanti, indicando che FT è necessaria per la fioritura precoce di mutanti EBS e che EBS è necessaria per la rimozione di questo maestro gene della fioritura 10 , 11. EBS codifica per una proteina che contiene PHD che possono specificatamente legare dell'istone H3 di- e Trimethylated in the lisina 4 residuo (H3K4me2 / 3), suggerendo un ruolo per EBS nella repressione cromatina mediata di FT 12. L'uso del metodo ChIP dimostrato che l'Arabidopsis-PHD contenenti proteine ​​EBS 10,11 lega regioni regolatorie del gene floreale integratore FT per reprimere la sua espressione 12. Ulteriori dati ottenuti tramite l'uso della tecnologia ChIP hanno dimostrato che questa proteina è necessario per mantenere bassi livelli di acetilazione degli istoni, un segno distintivo della trascrizione attiva, nella cromatina di questo maestro gene della fioritura durante le fasi iniziali dello sviluppo Arabidopsis. Queste osservazioni, insieme con i dati di espressione genetica e genica, dimostrare che questo Arabidopsis PHD-contenente proteina ha un ruolo centrale nella messa a punto di tempo di fioritura modulando l'espressione del gene integratore floreale FT 12. Il lavoro qui presentato fornisce un metodo ottimizzato utile non solo per l'analisi degli istoni ma anche per altricromatina proteine ​​associate, e con una maggiore efficienza e riduzione dei tempi di sperimentale. Inoltre, la presente relazione illustra come l'uso di protocolli di chip ha fornito nuove informazioni sul rapporto tra cambiamenti nelle modificazioni della cromatina e stati trascrizionali di geni vegetali, e di come questi meccanismi cromatina mediata di impatto controllo dell'espressione genica sull'insorgenza della fioritura in Arabidopsis.

Protocol

1. La reticolazione del materiale vegetale (1 ora) Crescere le linee di Arabidopsis usati nell'esperimento (wild type – WT – contro i mutanti, e / o le linee che esprimono la versione tag del proteina di interesse contro linee che esprimono il tag non fuse a qualsiasi proteina) per 12-18 giorni in grandi piastre di Petri (150 mm) con terreno MS-agar (1 L: 1x Murashige e Skoog sali, 10 g di saccarosio, 0,5 g MES, pH 5,7 (KOH), 1% agar). In alternativa, le piante crescono su vasi contenenti 3: 1 miscela di …

Representative Results

Otto passi principali possono essere individuati in questo protocollo ChIP per identificare in vivo interazioni proteina-DNA, tra cui coltura del materiale vegetale, reticolazione di cromatina, isolamento cromatina, cromatina frammentazione, isolamento selettivo dei complessi tra DNA e la proteina di interesse mediante immunoprecipitazione, la digestione delle proteine, la purificazione del DNA, e qPCR analisi (Figura 1). Un passo cruciale nel protocollo chip è la fissazione delle interazioni …

Discussion

Il protocollo ChIP qui descritto è una tecnica riproducibile e potente per analizzare le interazioni tra proteine ​​e specifiche sequenze di DNA in vivo in piante di Arabidopsis. Una individuazione di siti di legame per le proteine ​​di interesse richiede un'adeguata selezione di organi vegetali o stadi di sviluppo in cui le interazioni rilevanti sono effettivamente avvenendo. Inoltre, è fondamentale per ottenere un fissaggio adeguato del materiale vegetale e un taglio ottimale della cromatina med…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to acknowledge The Plant Cell for allowing the use of some data published in this journal to elaborate the representative results described here in Figure 4. This work was supported by the EU 7FP Marie Curie-Initial Training Network EpiTRAITS (Grant Agreement 316965), and by the Spanish Ministerio de Economìa y Competitividad (grants BIO2010-15589 and BIO2013-43098-R).

Materials

MES Sigma M8250
MS (Murashige and Skoog Basal Salt Mixture) Sigma M5524
Formaldehyde 37%  Sigma F8775-25 Use under the fume hood
Protease inhibitor mix cOmplete ULTRA Tablets, Mini, EDTA-free, EASYpack Roche 5892791001
Bioruptor Standard sonication device Diagenode B01010002 (UCD200TO)
Glycine Sigma 50046
QIAquick PCR Purification Kit Qiagen 28104
Dynabeads® magnetic beads coupled with protein A or protein G Life Technologies 10003D/10001D Check manufacturer’s manual for antibody affinity
Miracloth Merck Millipore 475855
Triton™ X-100 Surfact-Amps™ Detergent Solution Life Technologies 85112
(mouse, rat, rabbit…)-IgG Diagenode C15400001, C15420001, C15410206
Magnetic rack – DynaMag™-2 Life Technologies 12321D
H3K9/14ac polyclonal antibody – Premium  Diagenode C15410200-10
Chelex® 100 Resin Bio-Rad 142-2832
Proteinase K Life Technologies 17916
Anti-Myc Tag Antibody, clone 4A6 Millipore 05-724
LightCycler® 480 SYBR Green I Master Roche 4707516001

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Citar este artigo
Komar, D. N., Mouriz, A., Jarillo, J. A., Piñeiro, M. Chromatin Immunoprecipitation Assay for the Identification of Arabidopsis Protein-DNA Interactions In Vivo. J. Vis. Exp. (107), e53422, doi:10.3791/53422 (2016).

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