Summary

Isolering og dyrkning af Adult Zebrafisk Brain-afledte Neurosfærer

Published: February 29, 2016
doi:

Summary

Her giver vi en reproducerbar metode til at undersøge voksen neurogenese ved anvendelse af en neurosfære assay afledt af hele hjernen eller fra enten telencephalic, tectal eller cerebellare regioner af den voksne zebrafisk hjerne. Desuden har vi beskrive, hvorledes det manipulere genekspression i zebrafisk neurosfærer.

Abstract

The zebrafish is a highly relevant model organism for understanding the cellular and molecular mechanisms involved in neurogenesis and brain regeneration in vertebrates. However, an in-depth analysis of the molecular mechanisms underlying zebrafish adult neurogenesis has been limited due to the lack of a reliable protocol for isolating and culturing neural adult stem/progenitor cells. Here we provide a reproducible method to examine adult neurogenesis using a neurosphere assay derived from zebrafish whole brain or from the telencephalon, tectum and cerebellum regions of the adult zebrafish brain. The protocol involves, first the microdissection of zebrafish adult brain, then single cell dissociation and isolation of self-renewing multipotent neural stem/progenitor cells. The entire procedure takes eight days. Additionally, we describe how to manipulate gene expression in zebrafish neurospheres, which will be particularly useful to test the role of specific signaling pathways during adult neural stem/progenitor cell proliferation and differentiation in zebrafish.

Introduction

Mammale neurale stamceller (NSC) er blevet karakteriseret in vitro ved deres evne til at vokse i frit flydende kulturer som klynger af delende celler betegnet neurosfærer 1. I nærvær af epidermal vækstfaktor (EGF) og fibroblast vækstfaktor (FGF), NSC'er opdele enten symmetrisk at generere selvfornyende NSC'er eller asymmetrisk at generere to forskellige datterceller, dvs.., En differentierende progenitorcelle og en hidtil ukendt NSC. Neurosfære kulturer er derfor en blanding af neurale stamceller / progenitorceller og mere differentierede neurale celler 2-4 NSC'er kan imidlertid skelnes fra andre neurosfære celletyper ved to specifikke egenskaber:. De udviser langvarig selvfornyelse i fri- flydende kulturer og de ​​kan differentiere til alle neurale cellelinier (dvs. neuroner, astrocytter og oligodendrocytter) efter tilbagetrækning af vækstfaktorer og adhæsion til ekstracellulær matrix substrater. I Mammals, neurosfæren kultur-systemet var den første in vitro-system, der anvendes til at påvise tilstedeværelsen af NSC i den voksne hjerne og er fortsat det mest anvendte værktøj til at analysere spredning, selvfornyelse kapacitet og multipotency af neurale stamceller og stamceller. Selv om kugle-dannende analyser lider nogle ulemper og begrænsninger 4, denne kultur system er værdifuld for at vurdere potentialet i en celle til at opføre sig som en stamcelle, når fjernet fra dets in vivo-niche 4 og har været medvirkende til at identificere centrale regulatorer af NSC selv-fornyelse og celle skæbne beslutsomhed 5-7.

I modsætning til pattedyr, der har begrænset voksen neurogenese, zebrafisk konstitutivt producere nye neuroner langs hele hjernen akse hele deres liv. Zebrafisk voksne hjerne vises flere neurogene nicher huser neurale stamceller / progenitorceller gør zebrafisk en kraftfuld model organisme for forståelse than stamcelle aktivitet i hjernen samt de molekylære programmer, som kræves for centralnervesystemet regenerering. I løbet af de sidste 17 år, flere forskergrupper udviklet metoder til isolering og dyrkning af zebrafisk nerveceller 8,9. Disse undersøgelser havde til formål at producere embryonale neuronal og gliaceller in vitro, men ikke på at fastholde NSC'er og undersøge deres egenskaber. Selvom neurosfærer er blevet genereret i den voksne Apteronotus leptorhynchus (Brown Ghost Knifefish) 10, en neurosfære-dannende assay i zebrafisk manglede at blive etableret.

Her beskriver vi en neurosfære-dannende assay at demonstrere rolle miR-107 under zebrafisk neurogenese 11. Protokollen giver: 1) indsamling af voksne neurale stamceller / progenitorceller enten fra zebrafisk hele hjernen eller fra flere dissekerede hjernen regioner som telencephalon den Tectum, og lillehjernen; 2) dannelse af flydende og selvfornyende neurosfærer fra voksne neurale stamceller / stamceller; 3) down- og opregulering af ekspressionen af kodende gener eller små ikke-kodende RNA'er 11 i neurosfærer, for at undersøge deres rolle i proliferation og differentiering af neurale stamceller / progenitorceller.

Protocol

Zebrafisk af WT CF stammen blevet rejst og vedligeholdt i henhold til protokoller er godkendt af Yale University Institutional Animal Care og brug Udvalg (IACUC protokol nummer 2012-11.473). Alle forsøg skal først godkendes af alle relevante statslige og institutionelle etik regulerer organer med hensyn til brugen af ​​dyr til forskningsformål. 1. Forberedelser Forbered 10 ml dissektion medium, tilsættes 200 pi 100x penicillin-streptomycin i 9,…

Representative Results

Opbygningen af ​​den Adult Zebrafisk neurosfæren Kultur Her beskriver vi alle trin i protokollen for en neurosfære-dannende assay udføres fra den voksne zebrafisk hjerne. For det første har voksne neurale stamceller / progenitorceller blevet indsamlet enten fra zebrafisk hele hjernen eller fra flere dissekerede hjerneregioner såsom telencephalon, den tectum og cerebellum (figur 1A-C). Enkelt cellesusp…

Discussion

The main aim of this protocol is to isolate and culture adult zebrafish brain-derived neurospheres for studying the cellular and molecular features of neural stem/progenitor cells. Here, we report how to select multipotent neural cells and generate the three neural cell types, i.e., astrocytes, neurons and oligodendrocytes, from the adult zebrafish brain. The protocol is highly significant since a reproducible neurosphere-forming assay had not been established in the zebrafish so far.

<p class="jove_content"…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Guillermina Hill-Teran and Marie-Elise Schwartz for assistance. This work was supported by grants from the National Institutes of Health (5R00HL105791 to S.N.) and from the Alzheimer (NIRP 12-259162). This work was also supported by Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (CFC and JLT), Agence Nationale de la Recherche (13-BSV4-0002-01 (JLT), NIH (1R01EB016629-01A1 (JLT), Connecticut Stem Cell Research Fund (13-SCA-Yale-04 (JLT).

Materials

DPBS 1X Life Technologies 14190-144
DMEM/F12 1X Life Technologies 11330-032
L-Cysteine hydrochloride monohydrate  Sigma C6852-25g
B-27 Life Technologies 17504-044
N-2 Life Technologies 17502-048 N-2 supplement (100x) liquid 
HEPES  Life Technologies 15630 1M
D-(+)-Glucose 45%  Sigma G8769
Penicillin-streptomycin  Life Technologies 15140-122
Fetal Bovine Serum  Life Technologies 16000044
Human FGF-basic  Peprotech  100-18B
Human EGF  Peprotech AF-100-15
Insulin  Sigma I5500-50 mg
DNAse Sigma DN25-10mg
Papain  Worthington Biochemical Corporation LS003126
Matrigel  Becton Dickinson 356234
PFA  TCI P0018
PBS AmericanBio AB11072-04000
Tricaine MS-222 Sigma A5040 stock solution of 4 mg/ml. 
Trycold gel  Sigma TGP8 gel pack
Amaxa Basic Nucleofector Kit Lonza VPI-1004
Trypan blue stain  Life Technologies 15250061

Referências

  1. Rietze, R. L., Reynolds, B. A. Neural stem cell isolation and characterization. Methods Enzymol. 419, 3-23 (2006).
  2. Brewer, G. J., Torricelli, J. R. Isolation and culture of adult neurons and neurospheres. Nat Protoc. 2, 1490-1498 (2007).
  3. Guo, W., Patzlaff, N. E., Jobe, E. M., Zhao, X. Isolation of multipotent neural stem or progenitor cells from both the dentate gyrus and subventricular zone of a single adult mouse. Nat Protoc. 7, 2005-2012 (2012).
  4. Pastrana, E., Silva-Vargas, V., Doetsch, F. Eyes wide open: a critical review of sphere-formation as an assay for stem cells. Cell Stem Cell. 8, 486-498 (2011).
  5. Winter, M., et al. Vertebrate neural stem cell segmentation, tracking and lineaging with validation and editing. Nat Protoc. 6, 1942-1952 (2011).
  6. Gage, F. H. Mammalian neural stem cells. Science. 287, 1433-1438 (2000).
  7. Reynolds, B. A., Rietze, R. L. Neural stem cells and neurospheres–re-evaluating the relationship. Nat Methods. 2, 333-336 (2005).
  8. Ghosh, C., Liu, Y., Ma, C., Collodi, P. Cell cultures derived from early zebrafish embryos differentiate in vitro into neurons and astrocytes. Cytotechnology. 23, 221-230 (1997).
  9. Chen, Z., et al. Primary neuron culture for nerve growth and axon guidance studies in zebrafish (Danio rerio). PloS one. 8, e57539 (2013).
  10. Hinsch, K., Zupanc, G. K. Generation and long-term persistence of new neurons in the adult zebrafish brain: a quantitative analysis. Neurociência. 146, 679-696 (2007).
  11. Ristori, E., et al. A dicer-miR-107 interaction regulates biogenesis of specific miRNAs crucial for neurogenesis. Dev Cell. 32, 546-560 (2015).
  12. Louis, S. K., SIegel, A. C. Cell Viability Analysis Using Trypan Blue: Manual and Automated Methods. Methods Mol Bio. 740, (2011).
  13. Harrison, M. M., Jenkins, B. V., O’Connor-Giles, K. M., Wildonger, J. A CRISPR view of development. Genes dev. 28, 1859-1872 (2014).
  14. Marz, M., et al. Heterogeneity in progenitor cell subtypes in the ventricular zone of the zebrafish adult telencephalon. Glia. 58, 870-888 (2010).

Play Video

Citar este artigo
Lopez-Ramirez, M. A., Calvo, C., Ristori, E., Thomas, J., Nicoli, S. Isolation and Culture of Adult Zebrafish Brain-derived Neurospheres. J. Vis. Exp. (108), e53617, doi:10.3791/53617 (2016).

View Video