Summary

Kjønnsforskjeller i Muse Hippokampale Astrocytter etter<em> In-Vitro</em> iskemi

Published: October 25, 2016
doi:

Summary

Astrocytter er en av de viktigste nøkkelspillere i sentralnervesystemet (CNS). Her rapporterer vi en praktisk metode for sexed hippocampus astrocyte kultur protokoll for å studere mekanismene bak astrocyte funksjon i mannlige og kvinnelige nyfødte valper etter in vitro iskemi.

Abstract

Astrogliosis følgende hypoksi / iskemi (HI) -relaterte hjerneskade spiller en rolle i økt sykelighet og dødelighet hos nyfødte. Nyere kliniske studier indikerer at graden av hjerneskade synes å være sex avhengig, og at de mannlige nyfødte er mer utsatt for virkningene av HI-relaterte hjerneskade, noe som resulterer i mer alvorlige nevrologiske utfall sammenlignet med kvinner med tilsvarhjerneskader. Utviklingen av pålitelige metoder for å isolere og opprettholde høyanriket populasjoner av sexed hippocampus astrocytter er viktig å forstå den cellulære grunnlag av kjønnsforskjeller i de patologiske konsekvenser av neonatal HI. I denne studien, beskriver vi en fremgangsmåte for å lage kjønnsspesifikke hippocampus astrocyttkulturer som er utsatt for en modell for in-vitro-ischemi, oksygen-glukosemangel, etterfulgt av reoksygenering. Etterfølgende reaktiv astrogliosis ble undersøkt av immunostaining for Glial Fibrillary Surt Protein (GFAP) og S100B. Denne metoden gir et nyttig verktøy for å studere rollen til hann- og hunn hippocampus astrocytter følgende neonatal HI, hver for seg.

Introduction

Astrocytter er en av de viktigste nøkkelspillere i sentralnervesystemet (CNS). Økende bevis indikerer at rollene som astrocytter er mer enn å gi nevronale støtte. Faktisk kan rollene til astrocytter under fysiologiske betingelser være meget komplekse, for eksempel styring av migrasjon av utviklings aksoner 1, regulerer CNS blodstrøm 2, å opprettholde pH homeostase av den synaptiske interstitiell væske 3, og som deltar i blod-hjerne-barrieren 4 og synaptisk transmisjon fem. Under patologiske tilstander, astrocytter svare på skade med en prosess som kalles reaktiv astrogliosis hvori morfologien, antall, plassering, topografi (med hensyn til avstand fra fornærmelse) og funksjon av astrocyttene kan endre seg i en heterogen måte 6,7. Astrogliosis sett følgende neonatal hypoksisk iskemisk encefalopati kanskje bidrar til sykelighet og dødelighet av nyfødte <sopp> 8.

Nylige kliniske og eksperimentelle studier indikerer at graden av hjerneskade synes å være kjønnsavhengig, og at de mannlige nyfødte er mer utsatt for virkningen av hypoksi / ischemi (HI) -relaterte hjerneskade, noe som resulterer i mer alvorlige nevrologiske utfall sammenlignet kvinner med sammenlignbare hjerneskader 9-11. Selv om lokalisering av skaden er avhengig av fosterets alder og varigheten og alvorlighetsgraden av fornærmelse, er hippocampus en av de mest vanlig bevirkes områder i CNS etter betegnelsen neonatal HI, og økt hippocampus astrogliosis er blitt bekreftet ved oppregulering av den Glial Fibrillary Surt Protein (GFAP) 3 d etter neonatal HI 7,10,12,13. Kjønnsforskjeller i astrocyte funksjon ble vist i både nyfødte og voksne gnagere etter cerebral iskemi 14,15. I tillegg ble hann astrocytic mottakelighet for in-vitro-ischemi vist ved øket cell død sammenlignet med kvinnelige kortikale astrocytter i kultur 16.

Kjønnsforskjeller start in-utero og fortsetter til døden 17. I løpet av det siste tiåret, har betydningen av å inkludere kjønnene i eksperimentelle forhold i cellekultur og i-vivo studier vært vektlegging av Institute of Medicine og NIH til å søke grunnleggende kunnskap i kjønnsforskjeller sett i fysiologiske og patologiske tilstander 17,18 . Utvikling av pålitelige metoder for å isolere og opprettholde bestandene av sexed hippocampus astrocytter er viktig å forstå den cellulære grunnlag av kjønnsforskjeller i de patologiske konsekvenser av neonatal HI. Denne studien er designet for å gi teknikker for å forberede beriket kjønnsspesifikke hippocampus astrocyttkulturer fra nyfødte mus for å vurdere rollene til GFAP-immunoreaktive astrocytter følgende Oxygen / glukose deprivasjon (OGD) og Reoksygeneringen (Reox), indusereHI i cellekultur miljø. Denne teknikken kan brukes til å teste en hvilken som helst hypotese med hensyn til hippocampus-astrocytter i neonatale hanner og hunner i henhold til normoksisk og iskemiske tilstander.

Protocol

MERK: Denne studien ble gjennomført i samsvar med anbefaling fra Guide for omsorg og bruk av forsøksdyr i National Institute of Health. Dyret protokollen ble godkjent av University of Wisconsin-Madison, Institutional Animal Care og bruk komité. Primær astrocyte Kultur protokoll som er presentert her er adoptert fra protokollene som presenteres av Zhang Y 19 mfl. Og Cengiz P 20 mfl. Med noen modifikasjoner. 1. hippocampus Dissection og astrocyte Kultur Forber…

Representative Results

Forstå roller kjønnede astrocyttkulturer fungerer under fysiologiske eller patofysiologiske tilstander har blitt umåtelig belyst ved å dyrke disse cellene under in vitro betingelser. Det viktige aspektet med å utføre seksuelle dyrkning, er å bestemme kjønn av musen pup før bruk. Vi har fastslått kjønn på mus genetisk ved PCR og ved visuell vurdering (figur 2) 16. Metodikken for kjønnsbestemmelse ved hjelp av PCR ble vedtatt med endringer …

Discussion

For å studere kjønnsforskjeller i egenskaper og funksjon av astrocytter under fysiologiske og patologiske tilstander, utarbeidelse av kjønnede primære astrocytter i cellekultur er et viktig verktøy for å utnytte. I denne studien rapporterer vi en svært effektiv og reproduserbar metode for å kultur et høyanriket homogen befolkning på kjønnede hippocampus astrocytter fra nyfødt (P0-P2) C57Bl / 6 (villtype) eller K19F (GFAP null) museunger in vitro. Etablering av denne metodikken hjelper etterforskerne…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Clinical and Translational Science Award program of NCATS UL1 TR0000427 and KL2 TR000428 (Cengiz P), UL1TR000427 to the UW ICTR from NIH/NCATS and funds from Waisman Center (Cengiz P), K08 NS088563-01A1 from NINDS (Cengiz P) and NIH P30 HD03352 (Waisman Center), NIH/NINDS 1K08NS078113 (Ferrazzano P). We would like to thank Albee Messing, PhD, for providing us the GFAP knockout mice.

Materials

Astrocyte culture media
DMEM, high glucose cellgro 10-013-CV
Horse serum Gibco 26050-070 Final Concentration: 10%
Penicillin-Streptomycin Cellgro  30-002-CI Final Concentration: 1%
L-Leucine methyl ester hydrochloride Aldrich L1002-25G Final Concentration: 5 mM
Solution for brain tissue digestion
HBSS Life Technologies 14170-088
0.25% Trypsin cellgro 25-050-CI Final Concentration: 0.25%
Outro
70% (vol/vol) ethanol Roth 9065.2
Poly-D-Lysine 12mm round coverslips  Corning 354087
Water Sigma W3500 cell culture grade
PBS cellgro 21-040-CV cell culture grade
0.05% Trypsin-EDTA  Life Technologies 25300-062
70 μm Sterile cell strainer  Fisher scientific 22363548
3.5 cm petri dish BD Falcon 353001
15 ml Falcon tube BD Falcon 352096
50 ml Falcon tube BD Falcon 352070
Forceps, fine  Dumont 2-1032; 2-1033 # 3c; # 5
Forceps, flat tip KLS Martin 12-120-11
13 cm surgical scissors Aesculap BC-140-R
Confocal Microscope Nikon A1RSi 
Centrifuge Eppendorf 5805000.017 Centrifuge5804R
Orbital Shaker Thermo Scientific SHKE 4450-1CE MaxQ 4450 
Anti-IBA1 Wako 019-19741 Rabbit monoclonal
Anti-MAP2 Sigma M2320 Mouse monoclonal
Anti-HIF1alpha abcam ab179483 rabbit monoclonal
Anti-S100B Sigma HPA015768 Rabbit polyclonal
Anti-GFAP (cocktail) Biolegend 837602
VECTASTAIN Elite ABC Kit (Rabbit IgG) Vector Labs PK-6101 Contains 4 Reagents 
Goat Anti Rabbit Alexa-Fluor 488 Invitrogen A11070
Goat Anti Mouse Alexa-Fluor 568 Invitrogen A11004

Referências

  1. Powell, E. M., Geller, H. M. Dissection of astrocyte-mediated cues in neuronal guidance and process extension. Glia. 26, 73-83 (1999).
  2. Koehler, R. C., Roman, R. J., Harder, D. R. Astrocytes and the regulation of cerebral blood flow. Trends in neurosciences. 32, 160-169 (2009).
  3. Seifert, G., Schilling, K., Steinhauser, C. Astrocyte dysfunction in neurological disorders: a molecular perspective. Nature reviews. Neuroscience. 7, 194-206 (2006).
  4. Ballabh, P., Braun, A., Nedergaard, M. The blood-brain barrier: an overview: structure, regulation, and clinical implications. Neurobiology of disease. 16, 1-13 (2004).
  5. Araque, A., Parpura, V., Sanzgiri, R. P., Haydon, P. G. Tripartite synapses: glia, the unacknowledged partner. Trends in neurosciences. 22, 208-215 (1999).
  6. Anderson, M. A., Ao, Y., Sofroniew, M. V. Heterogeneity of reactive astrocytes. Neuroscience letters. 565, 23-29 (2014).
  7. Cengiz, P., et al. Inhibition of Na+/H+ exchanger isoform 1 is neuroprotective in neonatal hypoxic ischemic brain injury. Antioxidants & redox signaling. 14, 1803-1813 (2011).
  8. Ferriero, D. M. Neonatal brain injury. The New England journal of medicine. 351, 1985-1995 (2004).
  9. Hill, C. A., Fitch, R. H. Sex differences in mechanisms and outcome of neonatal hypoxia-ischemia in rodent models: implications for sex-specific neuroprotection in clinical neonatal practice. Neurol Res Int. , 1-9 (2012).
  10. Cikla, U., et al. ERalpha Signaling Is Required for TrkB-Mediated Hippocampal Neuroprotection in Female Neonatal Mice after Hypoxic Ischemic Encephalopathy(1,2,3). eNeuro. 3, (2016).
  11. Uluc, K., et al. TrkB receptor agonist 7, 8 dihydroxyflavone triggers profound gender- dependent neuroprotection in mice after perinatal hypoxia and ischemia. CNS Neurol Disord Drug Targets. 12, 360-370 (2013).
  12. Cikla, U., et al. Suppression of microglia activation after hypoxia-ischemia results in age-dependent improvements in neurologic injury. J Neuroimmunol. 291, 18-27 (2016).
  13. McQuillen, P. S., Ferriero, D. M. Selective vulnerability in the developing central nervous system. Pediatr Neurol. 30, 227-235 (2004).
  14. Morken, T. S., et al. Altered astrocyte-neuronal interactions after hypoxia-ischemia in the neonatal brain in female and male rats. Stroke; a journal of cerebral circulation. 45, 2777-2785 (2014).
  15. Chisholm, N. C., Sohrabji, F. Astrocytic response to cerebral ischemia is influenced by sex differences and impaired by aging. Neurobiology of disease. 85, 245-253 (2016).
  16. Liu, M., Oyarzabal, E. A., Yang, R., Murphy, S. J., Hurn, P. D. A novel method for assessing sex-specific and genotype-specific response to injury in astrocyte culture. Journal of neuroscience methods. 171, 214-217 (2008).
  17. . Exploring the biological contributions to human health: does sex matter?. Journal of women’s health & gender-based. 10, 433-439 (2001).
  18. Collins, F. S., Tabak, L. A. Policy: NIH plans to enhance reproducibility. Nature. 505, 612-613 (2014).
  19. Zhang, Y., et al. Rapid single-step induction of functional neurons from human pluripotent stem cells. Neuron. 78, 785-798 (2013).
  20. Cengiz, P., et al. Sustained Na+/H+ exchanger activation promotes gliotransmitter release from reactive hippocampal astrocytes following oxygen-glucose deprivation. PloS one. 9, e84294 (2014).
  21. Landis, S. C., et al. A call for transparent reporting to optimize the predictive value of preclinical research. Nature. 490, 187-191 (2012).
  22. Hamby, M. E., Uliasz, T. F., Hewett, S. J., Hewett, J. A. Characterization of an improved procedure for the removal of microglia from confluent monolayers of primary astrocytes. J Neurosci Methods. 150, 128-137 (2006).
  23. McClive, P. J., Sinclair, A. H. Rapid DNA extraction and PCR-sexing of mouse embryos. Molecular reproduction and development. 60, 225-226 (2001).
  24. Wolterink-Donselaar, I. G., Meerding, J. M., Fernandes, C. A method for gender determination in newborn dark pigmented mice. Lab Anim (NY). 38, 35-38 (2009).
  25. Uliasz, T. F., Hamby, M. E., Jackman, N. A., Hewett, J. A., Hewett, S. J. Generation of primary astrocyte cultures devoid of contaminating microglia. Methods Mol Biol. 814, 61-79 (2012).
  26. Raponi, E., et al. S100B expression defines a state in which GFAP-expressing cells lose their neural stem cell potential and acquire a more mature developmental stage. Glia. 55, 165-177 (2007).
  27. Souza, D. G., Bellaver, B., Souza, D. O., Quincozes-Santos, A. Characterization of adult rat astrocyte cultures. PloS one. 8, e60282 (2013).
  28. Puschmann, T. B., Dixon, K. J., Turnley, A. M. Species differences in reactivity of mouse and rat astrocytes in vitro. Neuro-Signals. 18, 152-163 (2010).
  29. Schildge, S., Bohrer, C., Beck, K., Schachtrup, C. Isolation and culture of mouse cortical astrocytes. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2013).
  30. Saura, J. Microglial cells in astroglial cultures: a cautionary note. J Neuroinflammation. 4 (26), (2007).
check_url/pt/53695?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Chanana, V., Tumturk, A., Kintner, D., Udho, E., Ferrazzano, P., Cengiz, P. Sex Differences in Mouse Hippocampal Astrocytes after In-Vitro Ischemia. J. Vis. Exp. (116), e53695, doi:10.3791/53695 (2016).

View Video