Summary

Isolering af CD146<sup> +</sup> Resident Lung Mesenchymale stromacellers fra Rotte Lunger

Published: June 17, 2016
doi:

Summary

Denne protokol beskriver en isolation teknik til opnåelse primære lunge residente mesenchymal stromaceller fra rotter, ved brug af enzymatisk fordøjelse, gradient separation massefylde, plast adhærens og CD146 + magnetiske perler markering.

Abstract

Mesenkymale stromale celler (MSC'er) er i stigende grad anerkendt for deres terapeutiske potentiale i en lang række sygdomme, herunder lungesygdomme. Udover brugen af ​​knoglemarv og navlestrengen MSC for eksogen celleterapi er der også stigende interesse i reparation og regenerativ potentiale hjemmehørende væv MSC. Desuden har de sandsynligvis have en rolle i normal organudvikling, og er blevet tilskrevet roller i sygdom, især dem med en fibrotisk natur. Den vigtigste hindring for studiet af disse residente væv MSC'er er manglen på en klar markør til isolering og identifikation af disse celler. Isoleringen teknikken beskrevet her anvender flere karakteristika lunge residente MSC'er (L-MSC). Efter aflivning af rotterne, er lungerne fjernes og skylles flere gange for at fjerne blod. Efter mekanisk dissociation af skalpel, er lungerne fordøjes i 2-3 timer ved anvendelse af en blanding af kollagenase type I, neutral protease og DNase type I. Den obtained enkelt cellesuspension vaskes efterfølgende og lagt over densitetsgradient medium (densitet 1,073 g / ml). Efter centrifugering er celler fra interfasen vasket og udpladet i kultur-behandlede kolber. Celler dyrkes i 4-7 dage i fysiologisk 5% O2, 5% CO2 betingelser. At nedbryder fibroblaster (CD146 -) og for at sikre en befolkning på kun L-MSC'er (CD146 +), positiv selektion for CD146 + celler udføres gennem magnetisk perle markering. Sammenfattende denne procedure pålideligt producerer en population af primær L-MSC'er til yderligere in vitro-undersøgelse og manipulation. På grund af karakteren af ​​protokollen, kan det nemt oversættes til andre eksperimentelle dyremodeller.

Introduction

Mesenkymale stromale celler (MSC'er) er i stigende grad anerkendt for deres terapeutiske potentiale i en lang række sygdomme, herunder lungesygdomme. Udover brugen af ​​knoglemarv og navlestrengen MSC for eksogen celleterapi er der også stigende interesse i reparation og regenerativ potentiale hjemmehørende væv MSC. Under udvikling, herunder i lungerne, mesenchymet er en vigtig kilde til udviklingsmæssige signaler, og bosiddende MSC er en sandsynlig kandidat til at være i centrum af dette. Desuden er beviser opstå, at hjemmehørende MSC forstyrres i voksne sygdomme, herunder cancer 1,2 og fibrose 3. Den vigtigste forhindring for studiet af disse hjemmehørende væv MSC er manglen på en klar markør til isolering og identifikation af disse celler 4. Stamcelle antigen-1 (Sca-1) blev identificeret i mus som en markør for en række væv stamceller, og kan anvendes til isolering af L-MSC'er 5, men har desværreingen kendt orthologer i andre arter 6. Forskere har rapporteret om en række forskellige isoleringsmetoder til isolering af L-MSC'er fra enten lungevæv eller væske. Disse varierer fra fluorescensaktiveret cellesortering (FACS) baserede metoder selektion for CD31 / CD45 / CD90 + celler 7, CD31 / CD45 / epitel celleadhæsionsmolekyle (EpCAM) – / Sca-1 + -celler 8, multilægemiddelresistens transportør ATP bindende kassette G (ABCG2) positive celler 9 eller Hoechst 33342 farvestof udstrømning 10, til plast tilslutning 11,12 og migration ud af hakket væv 13.

Fordelene ved heri præsenterede metode er flere gange. Ved at bruge en blid enzymatisk fordøjelse og densitetsgradient 14, opnår man alle cellerne i tæthedsområdet der omfatter MSC'er men udelukker epiteliale eller endotelceller. Den efterfølgende plast adhærencetrin sikrer, at kun den mesenchymal celler klæbe og ophold i kultur, fjerne leukocytter. Vigtigst imidlertid CD146 + selektionstrin muliggør fjernelse af fibroblaster, da disse celler ikke udtrykker CD146. Ekspression af celleadhæsionsmolekyle CD146 er positivt korreleret med multipotency, og er derfor en god markør for at frasortere fibroblaster fra en mesenchymal cellepopulation 15-19. Dette er en fordel ved at benytte CD90 som en selektionsmarkør, da det ikke kun udtrykkes i MSC'er men også i lipofibroblasts 5,20. I denne protokol har vi udtrykkeligt valgt en magnetisk perle udvælgelse, da det er blidere på cellerne, og hele proceduren kan udføres under sterile forhold. En anden vigtig fordel ved denne isolation metode frem for udvæksten metode, er at det er relativt hurtig, 6-10 dage i modsætning til en måned eller mere for udvækst metode. Tre til fem dage efter den oprindelige isolering af mesenkymale befolkning er klar til CD146 + sele Indsatsen; efter yderligere tre til fem dage CD146 + celler er klar til brug i forsøg, eller kan fryses til senere brug. Den reducerede tid Kulturens forbedrer kvaliteten af cellerne som MSC'er transdifferentiate dybt fibroblaster i langvarig ex vivo kultur 19. Endelig på grund af arten af ​​protokollen, er det muligt at anvende denne metode på andre arter ved blot at vælge egnede antistoffer, eller endda til andre organsystemer ved at justere valget af fordøjelsesenzymer og inkubationstid.

En detaljeret protokol af denne isolation fremgangsmåde følger nedenfor, og en skematisk oversigt over isoleringen og efterfølgende udvælgelse af CD146 + subpopulationen er tilvejebragt i figur 1A og 1B henholdsvis. Derudover er detaljer inkluderet for passage, frysning og optøning disse celler.

annonce / 53.782 / 53782fig1.jpg "/>
Figur 1. Skematisk oversigt over isolering af pulmonale mesenkymale celler (A) og efterfølgende CD146 + celle valg (B) min = minutter.; EDTA = ethylendiamintetraeddikesyre 2. Ab = sekundært antistof; a-CD146 Ab = primære anti-CD146-antistof; -ve celler = CD146-negative celler; + ve celler = CD146 positive celler. Klik her for at se en større version af dette tal.

Protocol

Alle procedurer blev godkendt af Animal Care udvalg fra University of Ottawa (dyr etik protokol Ohri-1696). Animal pleje blev udført i overensstemmelse med de institutionelle retningslinier. 1. Isolering af Lung Mesenchymale stromacellers Forbered enzymet mix i en 50 ml rør: vejer 30 U Neutral Protease, 2500 U Collagenase I og 500 U DNAse I. Disse beløb er tilstrækkelige til lungerne af en voksen mus eller rotte hvalp. Forbered på dag af isolation og opbevares ved 4 ° C indt…

Representative Results

To af de mest pålidelige fysiske egenskaber for MSC, tæthed og plast vedhæftning, der bruges i den første del af denne protokol til at opnå den mesenkymale cellefraktion af lungen, der indeholder L-MSC'er. Selvom densitetsgradient interfase vil omfatte monocytter og makrofager foruden lunge mesenchymal-celler, plast vedhæftning efterfulgt af 3-5 dages dyrkning sikre at det kun lungen mesenkymale celler forbliver. Faktisk denne celle population udtrykker de klassiske MSC overfla…

Discussion

Den isolering og dyrkning af primære L-MSC'er giver mulighed for bedre at forstå deres funktion og samspil med andre cellepopulationer på celleniveau, og deres rolle i lunge udvikling, sundhed og sygdom. Dette er især vigtigt da manglen på en specifik enkelt markør for disse celler gør det næsten umuligt at studere disse celler in situ. Som med alle primære cellepopulationer, bør man huske på, at disse celler er mere tilbøjelige til at ændre deres karakter jo længere de holdes i kultur 19…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JJPC is supported by a Canadian Institutes of Health Research (CIHR) postdoctoral fellowship. MAM receives a merit scholarship from the German National Academic Foundation – Studienstiftung des Deutschen Volkes and is supported by a grant from the EFCNI (European Foundation for the Care of the Newborn Infant). BT is supported by CIHR, the Canadian Lung Association, the Stem Cell Network and the Children’s Hospital of Eastern Ontario Research Institute.

Materials

Neutral Protease Worthington Biochemical Corporation LS02104 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
Collagenase I Worthington Biochemical Corporation LS004196 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
DNAse I Sigma-Aldrich D5025 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
Pentobarbital sodium (Euthanyl) Bimeda-MTC Animal Health Inc, Dublin, Ireland Use 0.2 mL for rat pups between 20-30g; larger animals may need more.
Dulbecco’s PBS + Sodium-pyruvate + Glucose Life Technologies 14287-072 Very crucial to use this type of D-PBS, as the calcium and magnesium that are present in this D-PBS facilitate facilitate the enzymatic digestion
Ficoll-Paque PREMIUM (1.073 g/cm3) GE Healthcare 17-5446-52 Density gradient media. To obtain a good interphase, it is crucial that the layering of the single cell suspension occurs at a >45o angle at very low speed, and that the subsequent centrifugation is done at 19oC.
αMEM Sigma-Aldrich M8042 Warm in 37oC water bath before use
200 mM L-Glutamine Life Technologies 25030-164
100x Antibiotic-Antimycotic Life Technologies 15240-062 Penicillin/Streptomycin/Fungizone
M-280 Dynabeads Life Technologies 11205D Magnetic beads
biotinylated polyclonal rabbit-anti-mouse IgG Dako, Agilent Technologies E0464 Biotinylated secondary antibody that matches with the anti-rat CD146 antibody described below
DynaMag5-magnet Life Technologies 12303D Magnet that is recommended for use with Dynabeads. NOTE: magnet should be chosen based on the manufacturer’s instructions of the magnet beads of choice.
TrypLE express  Life Technologies 12605-028 Gentle non-trypsin alternative, use 1 mL of TrypLE express/ 25cm2 surface area. After detachment, 10 mL L-MSC culture medium is sufficient to inactivate 3 mL TrypLE
anti-rat CD146 antibody Lifespan Biosciences Inc. C35841 12.5 μl per 0.5 x 106 cells
Pentaspan (pentastarch solution) Bristol-Myers Squibb Canada Can be obtained through local blood donation services or hematology departments. Alternatively, one could use the PSI 20% Pentastarch solution (Preservation Solutions, PST001) diluted 1:1 with 0.9% NaCl.
Mr.Frosty freezing container ThermoFisher Scientific 5100-0001 Improves viability when freezing L-MSCs overnight at -80oC

Referências

  1. Bhowmick, N. A., Neilson, E. G., Moses, H. L. Stromal fibroblasts in cancer initiation and progression. Nature. 432, 332-337 (2004).
  2. Wei, H. J., et al. FOXF1 mediates mesenchymal stem cell fusion-induced reprogramming of lung cancer cells. Oncotarget. 5, 9514-9529 (2014).
  3. Marriott, S., et al. ABCG2pos lung mesenchymal stem cells are a novel pericyte subpopulation that contributes to fibrotic remodeling. Am J Physiol Cell Physiol. 307, 684-698 (2014).
  4. Collins, J. J., Thebaud, B. Lung mesenchymal stromal cells in development and disease: to serve and protect. Antioxid Redox Signal. 21, 1849-1862 (2014).
  5. McQualter, J. L., et al. Endogenous fibroblastic progenitor cells in the adult mouse lung are highly enriched in the sca-1 positive cell fraction. Stem Cells. 27, 623-633 (2009).
  6. Holmes, C., Stanford, W. L. Concise review: stem cell antigen-1: expression, function, and enigma. Stem Cells. 25, 1339-1347 (2007).
  7. Gottschling, S., et al. Mesenchymal stem cells in non-small cell lung cancer–different from others? Insights from comparative molecular and functional analyses. Lung Cancer. 80, 19-29 (2013).
  8. Bertoncello, I., McQualter, J. Isolation and clonal assay of adult lung epithelial stem/progenitor cells. Current protocols in stem cell biology. , (2011).
  9. Jun, D., et al. The pathology of bleomycin-induced fibrosis is associated with loss of resident lung mesenchymal stem cells that regulate effector T-cell proliferation. Stem Cells. 29, 725-735 (2011).
  10. Majka, S. M., et al. Identification of novel resident pulmonary stem cells: form and function of the lung side population. Stem Cells. 23, 1073-1081 (2005).
  11. Hennrick, K. T., et al. Lung cells from neonates show a mesenchymal stem cell phenotype. Am J Respir Crit Care Med. 175, 1158-1164 (2007).
  12. Salama, M., et al. Endothelin-1 governs proliferation and migration of bronchoalveolar lavage-derived lung mesenchymal stem cells in bronchiolitis obliterans syndrome. Transplantation. 92, 155-162 (2011).
  13. Hoffman, A. M., et al. Lung-derived mesenchymal stromal cell post-transplantation survival, persistence, paracrine expression, and repair of elastase-injured lung. Stem Cells Dev. 20, 1779-1792 (2011).
  14. Grisendi, G., et al. GMP-manufactured density gradient media for optimized mesenchymal stromal/stem cell isolation and expansion. Cytotherapy. 12, 466-477 (2010).
  15. Bardin, N., et al. S-Endo 1, a pan-endothelial monoclonal antibody recognizing a novel human endothelial antigen. Tissue antigens. 48, 531-539 (1996).
  16. Covas, D. T., et al. Multipotent mesenchymal stromal cells obtained from diverse human tissues share functional properties and gene-expression profile with CD146+ perivascular cells and fibroblasts. Exp Hematol. 36, 642-654 (2008).
  17. Russell, K. C., et al. In vitro high-capacity assay to quantify the clonal heterogeneity in trilineage potential of mesenchymal stem cells reveals a complex hierarchy of lineage commitment. Stem Cells. 28, 788-798 (2010).
  18. Sorrentino, A., et al. Isolation and characterization of CD146+ multipotent mesenchymal stromal cells. Exp Hematol. 36, 1035-1046 (2008).
  19. Halfon, S., Abramov, N., Grinblat, B., Ginis, I. Markers distinguishing mesenchymal stem cells from fibroblasts are downregulated with passaging. Stem Cells Dev. 20, 53-66 (2011).
  20. McGowan, S. E., Torday, J. S. The pulmonary lipofibroblast (lipid interstitial cell) and its contributions to alveolar development. Annu Rev Physiol. 59, 43-62 (1997).
  21. Dulbecco, R., Vogt, M. Plaque formation and isolation of pure lines with poliomyelitis viruses. The Journal of experimental medicine. 99, 167-182 (1954).
  22. Hayakawa, J., et al. 5% dimethyl sulfoxide (DMSO) and pentastarch improves cryopreservation of cord blood cells over 10% DMSO. Transfusion. 50, 2158-2166 (2010).
  23. Sarugaser, R., Hanoun, L., Keating, A., Stanford, W. L., Davies, J. E. Human mesenchymal stem cells self-renew and differentiate according to a deterministic hierarchy. PLoS One. 4, 6498 (2009).
  24. Prockop, D. J. Repair of tissues by adult stem/progenitor cells (MSCs): controversies, myths, and changing paradigms. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 17, 939-946 (2009).
  25. Respiratory Physiology. UCL Available from: https://www.ucl.ac.uk/anesthesia/people/RespPhysiolLong.pdf (2015)
  26. Boron, W. F., Boulpaep, E. L. . Medical Physiology. 2nd edn. , (2009).
  27. Carreau, A., El Hafny-Rahbi, B., Matejuk, A., Grillon, C., Kieda, C. Why is the partial oxygen pressure of human tissues a crucial parameter? Small molecules and hypoxia. J Cell Mol Med. 15, 1239-1253 (2011).
  28. Heller, H., Brandt, S., Schuster, K. D. Determination of alveolar-capillary O2 partial pressure gradient by using 15NO. Nitric oxide : biology and chemistry / official journal of the Nitric Oxide Society. 12, 127-128 (2005).
  29. Mohyeldin, A., Garzon-Muvdi, T., Quinones-Hinojosa, A. Oxygen in stem cell biology: a critical component of the stem cell niche. Cell stem cell. 7, 150-161 (2010).
  30. Simon, M. C., Keith, B. The role of oxygen availability in embryonic development and stem cell function. Nature reviews. Molecular cell biology. 9, 285-296 (2008).
  31. Le, Q. T., et al. An evaluation of tumor oxygenation and gene expression in patients with early stage non-small cell lung cancers. Clin Cancer Res. 12, 1507-1514 (2006).
  32. Krampera, M., et al. Immunological characterization of multipotent mesenchymal stromal cells-The International Society for Cellular Therapy (ISCT) working proposal. Cytotherapy. , (2013).
  33. Corselli, M., et al. Identification of perivascular mesenchymal stromal/stem cells by flow cytometry. Cytometry. Part A : the journal of the International Society for Analytical Cytology. 83, 714-720 (2013).
  34. Russell, K. C., et al. Cell-Surface Expression of Neuron-Glial Antigen 2 (NG2)and Melanoma Cell Adhesion Molecule (CD146) in Heterogeneous Cultures of Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells. Tissue engineering. Part A. , (2013).
  35. Lv, F. J., Tuan, R. S., Cheung, K. M., Leung, V. Y. Concise review: the surface markers and identity of human mesenchymal stem cells. Stem Cells. 32, 1408-1419 (2014).
  36. Dagur, P. K., et al. Secretion of interleukin-17 by CD8+ T cells expressing CD146 (MCAM). Clinical immunology. 152, 36-47 (2014).
  37. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell stem cell. 3, 301-313 (2008).
  38. da Silva Meirelles, L., et al. Cultured human adipose tissue pericytes and mesenchymal stromal cells display a very similar gene expression profile. Stem Cells Dev. , (2015).
  39. Caplan, A. I. All MSCs are pericytes. Cell stem cell. 3, 229-230 (2008).
  40. Barkauskas, C. E., et al. Type 2 alveolar cells are stem cells in adult lung. J Clin Invest. 123, 3025-3036 (2013).
  41. McGowan, S. E., McCoy, D. M. Regulation of fibroblast lipid storage and myofibroblast phenotypes during alveolar septation in mice. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 307, 618-631 (2014).
  42. Chen, L., Acciani, T., Le Cras, T., Lutzko, C., Perl, A. K. Dynamic regulation of platelet-derived growth factor receptor alpha expression in alveolar fibroblasts during realveolarization. Am J Respir Cell Mol Biol. 47, 517-527 (2012).
  43. Zhou, S., et al. The ABC transporter Bcrp1/ABCG2 is expressed in a wide variety of stem cells and is a molecular determinant of the side-population phenotype. Nat Med. 7, 1028-1034 (2001).
  44. Bonyadi, M., et al. Mesenchymal progenitor self-renewal deficiency leads to age-dependent osteoporosis in Sca-1/Ly-6A null mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 5840-5845 (2003).
  45. Ito, C. Y., Li, C. Y., Bernstein, A., Dick, J. E., Stanford, W. L. Hematopoietic stem cell and progenitor defects in Sca-1/Ly-6A-null mice. Blood. 101, 517-523 (2003).
  46. Chow, K., et al. Dysfunctional resident lung mesenchymal stem cells contribute to pulmonary microvascular remodeling. Pulmonary circulation. 3, 31-49 (2013).
check_url/pt/53782?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Collins, J. J., Möbius, M. A., Thébaud, B. Isolation of CD146+ Resident Lung Mesenchymal Stromal Cells from Rat Lungs. J. Vis. Exp. (112), e53782, doi:10.3791/53782 (2016).

View Video