Summary

Identifisering av kritiske forhold for Farging i Pea Aphid Embryoet: Økende Tissue Permeabilitet og Avtagende bakgrunnsfarging

Published: February 02, 2016
doi:

Summary

A protocol of whole-mount immunostaining on aphid embryos is presented, in which critical conditions for decreasing background staining and increasing tissue permeability are addressed. These conditions are specifically developed for effective detection of protein expression in the embryonic tissues of aphids.

Abstract

Ert aphid Acyrthosiphon Pisum, med en sekvensert genom og rikelig fenotypisk plastisitet, har blitt en ny modell for genomisk og utviklingsstudier. Som andre bladlus, A. Pisum forplante seg raskt via parthenogenetic viviparous reproduksjon, hvor embryoene utvikle innenfor egg kamre i en samlebånds mote i ovariole. Tidligere har vi etablert en robust plattform for hel-mount in situ hybridisering tillater påvisning av mRNA uttrykk i bladlus embryoer. For å analysere uttrykket av protein, men etablerte protokoller for farging de ovarioles av aseksuelle vivipare bladlus ga ikke tilfredsstillende resultater. Her kan vi rapportere forhold som er optimalisert for å øke vev permeabilitet og redusere bakgrunnsfarging, som begge var problemer ved søknad etablerte tilnærminger. Optimaliser omfatter: (1) inkubering av proteinase K (1 ug / ml, 10 min), noe som ble funnet vesentlig feller antistoff penetrasjon i midten og sent stadium bladlus embryoer; (2) erstatning av normalt geiteserum / bovint serumalbumin med en blokkerende reagens leveres av en Digoxigenin (DIG) -basert buffer satt, og (3) anvendelse av metanol i stedet for hydrogenperoksid (H 2 O 2) for bleking av endogen peroksidase; som i betydelig grad reduserte bakgrunnsfarging i bladlus vev. Disse kritiske forhold optimalisert for immunofarging vil tillate effektiv påvisning av genprodukter i embryoene av A. Pisum og andre bladlus.

Introduction

Bladlus er hemipteran insekter med små (1-10 mm) myke kropper. De lever på planter ved å suge phloem sap med piercing munndeler. I tillegg er de avhengige en obligat endosymbiotic bakterien, Buchnera aphidicola, å syntetisere essensielle aminosyrer som er mangelfull i phloem sap kosthold. Bladlus har en kompleks livshistorie som inkluderer parthenogenetic viviparous reproduksjon i løpet av våren og sommeren lang dag fotoperioder og seksuell oviparous reproduksjon utløst av kort-dagers fotoperioder der de lå et begrenset antall overvintrende egg 1,2. Våren disse eggene klekkes til å produsere den første generasjonen av alle kvinnelige bladlus (fundatrices), etter mange runder med parthenogenetic reproduksjon til høsten. Konjunktur parthenogenesis i bladlus, hvor aseksuelle og seksuelle faser veksler i den årlige livssyklus, har vært ansett som en evolusjonær nyhet 1,2. I parthenogenetic vivipare bladlusTar embryogenese sted innenfor egg kamrene i eggstokkene tubuli (ovarioles). I motsetning seksuelle eggleggende embryoer utvikler seg i de befruktede eggene. Bortsett fra reproduktiv plastisitet, kan bladlus vise transgenerational vinge polyphenism: reaksjon på overfylte signaler og rovdyr trusler, kan unwinged aseksuelle kvinner viviparously produsere bevingede avkom for langdistanse migrasjon. Offentliggjøring av genomsekvens av ertebladlus Acyrthosiphon Pisum -den første genomsekvens for en basal hemimetabolous insekt tillater videre utforskning av reproduktiv plastisitet, vinge polyphenism, og andre funksjoner, inkludert insekt-plante-interaksjoner, viral vectoring og symbiose i bladlus på et molekylært basis tre.

I tillegg til det sekvenserte genomet, verktøy for karakterisering av gen-ekspresjon og funksjon som er nødvendig for å fremme ert bladlus som et modent modellorganisme 4. Vi har beskrevet robuste protokoller av hel-mount <em> in situ hybridisering for å påvise ekspresjon av mRNA i bladlus embryoer 5-7. RNA-interferens (RNAi) via dobbeltrådet RNA injeksjon og fôring har blitt brukt for genet Slå i bladlus nymfer og voksne, men stabile forhold for genet knockdown i embryoene har ennå ikke blitt rapportert 8-10. Farging, et antistoffbasert tilnærming som kan påvise proteinekspresjon i prøvene før og etter RNAi knockdown, har blitt utført på ert bladlus embryoer 11-13. Men økningen av vev permeabilitet og eliminering av bakgrunnsfarging er foreløpig ikke tilfredsstillende ved bruk av standardprotokoller for farging i de aseksuelle vivipare embryoer av erte bladlus. For eksempel fant vi at penetrasjon av antistoff til vev redusert i gastrulating embryoer (iscenesetter 8-10), og at embryoer med morfologisk identifiserbare lem knopper (trinn 13-14) var knapt gjennomtrengelig for antistoff. I tillegg ble bakgrunnsfarging visualiseres i aseksuell viviparooss ert bladlus embryoer farget ved hjelp av antistoff mot kimlinje markør Vasa samt at mot Engrailed / Invected protein uttrykt i embryonale segmenter 12,13. Faktisk bakgrunnsfarging var fremdeles synlig i embryoer farget med det sekundære antistoff alene.

For å øke permeabilitet uten å ødelegge integriteten av bladlus vev, vi omhyggelig titrert konsentrasjonen av proteinase K og bestemmes optimale betingelser for vev fordøyelse på bladlus embryoer. For å unngå ikke-spesifikk farging i ertebladlus, søkte vi for forbindelser som effektivt kan blokkere embryoer og hemmer aktiviteten av endogen peroksidase (POD), et enzym som anvendes for forsterkning av signaler i løpet av immunfarging. En blokkerende reagens leveres av en Digoxigenin (DIG) -basert buffersett, heller den tradisjonelt brukt normalt geiteserum (NGS) / bovint serumalbumin (BSA), betydelig redusert bakgrunnsfarging. Videre metanol ble funnet å inhibet endogene POD-aktivitet mer effektivt enn hydrogenperoksid (H 2 O 2). Detaljer om disse bladlusspesifikke vilkår for farging på embryo vil bli beskrevet i de neste avsnittene.

Protocol

1. Culture of Bladlus MERK:. Laboratoriet stamme av parthenogenetic viviparous ertebladlus En Pisum ble opprinnelig samlet i den sentrale Taiwan og har blitt oppdratt på vertsplanter (hagen ert Pisum sativum eller bred bønne hestebønne) etter lang dag daglengde for mer enn 300 generasjoner (én generasjon: ~ 10 dager). Spiring av frø Bløtlegg frøene av vertsplanter i vann fra springen i 3-5 dager på RT. Etterfyll med rent vann en gang per dag. …

Representative Results

I denne studien, utførte vi hel-mount immunofarging på befruktede egg av aseksuelle ert bladlus (Figur 1a). Disse hunnene produsere avkom parthenogenetically og viviparously. Disse kvinnelige fostre utvikler innen egg kamrene i eggstokkene tubuli (ovarioles) (Figur 1B og Figur 2A). Før mikroskopi, de dissekerte ovarioles er flekker mål; er imidlertid separeringen av egg kamre som kreves for observasjon av embryoer under et mikroskop …

Discussion

Vi identifiserte optimale forhold kritiske til vellykket farging i ertebladlus A. Pisum, en ny modellorganisme for genomisk og utviklingsstudier 3,15. Optimaliserte betingelser for å øke vev permeabilitet og reduserer bakgrunnsfarging forbedret intensitet og spesifisiteten av signaler. De skiller seg fra standard protokoller for farging i andre dyremodeller i fremgangsmåten for å lage porer i cellemembraner og blokkere ikke-spesifikk antistoffbinding.

For far…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We are grateful to Chau-Ti Ting (Fly Core in Taiwan) for providing the monoclonal 4D9 antibody, Technology Commons (TechComm) of the College of Life Science NTU for confocal microscopy, Hsiao-Ling Lu for proofreading the manuscript, and Chen-yo Chung for helping filming. CC particularly thanks Charles E. Cook for providing strategic suggestions and for critical editing of the manuscript. This work was supported by the Ministry of Science and Technology (101-2313-B-002-059-MY3 and 104-2313-B-002-022-MY3 for GWL and CC), and the National Taiwan University (NTU-CESRP 101R4602D3 for CC; 103R4000 for GWL).

Materials

30% hydrogen perxidase (H₂O₂) Sigma-Aldrich 18304 For bleaching endogenous peroxidase of embryos.
4’6-diamidino-2-phenyl-indole dihydrochloride (DAPI) Sigma-Aldrich D9542 For labeling the double-strand DNA. TOXIC. Wear gloves, dispense into small aliquots and feeze to minimize exposure
4D9 anti-engrailed/invected mouse monoclonal antibody Developmental studies hybridoma bank AB_528224 For labeling the developing segments of embryo.
ApVas1 rabbit polyclonal antibody Our laboratory N/A For labeling the aphid germline specific Vas1 protein in embryos. This antibody was made by our laboratory. 
Austerlitz Insect pins ENTOMORAVIA N/A For seperating each egg chambers from an ovariole. Size 000, BLACK ENAMELLED. 
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich 9048-46-8 For blocking the non-specific binding of antibodies.
Camera connted to compound microscope Canon EOS 5D For photographing of aphid embryos.
Colorimetric 8 cell tray Kartell Labware 357 For developing the staining signal of aphid embryos. Diameter 95 x 57 mm, cell depth 2 mm.
Compound microscope with DIC optics Leica Microsystems DMR For photographing of aphid embryo mounted on the slides.
DIG Wash and Block Buffer Set Sigma-Aldrich (Roche) 1.1586E+10 For blocking the non-specific binding of antibodies. We diluted the 10X Blocking solution into 1X as blocking reagent.
Forceps Ideal-tek N/A For dissection of ovaries from aphids. Manufacturer part No 5: 5 SA. 
Glass dropper N/A N/A For transfering ovaries of aphids from the splot plate to tubes. 150 mm of total length and 5 3/4" of tip length.
Glycerol Sigma-Aldrich G5516 For clearing of aphid embryos and mounting.
Glycine Bioshop N/A For blocking the enzyme activity of proteinase K (PK).
Goat anti-mouse IgG conjugated Alexa Fluor 488 Invitrogen A11017 For detection of primary antibody from mouse.
Goat anti-rabbit IgG conjugated Alexa Fluor 633 Invitrogen A21072 For detection of primary antibody from rabbit.
Intelli mixer ELMI laboratory equipment RM-2M For improving the thorughly reaction of reagents with ovaries.
Laser-scanning confocal microscopy Leica Microsystems SP5 For photographing of aphid embryo mounted on the slides with florecent tag.
methanol  Burdick and Jackson AH2304 For bleaching endogenous peroxidase of embryos.
Microscope slides  Thermo scientific 10143560 For mounting of embryos. SUPERFROST ground edges, ca./env. 76 x 26 mm.
Microscope Cover glasses Marienfeld 0101030 For mounting embryos on the slides. Size 18 x 18 mm. Thickness No. 1 (0.13 to 0.16 mm)
Microscope Cover glasses Marienfeld 0101050 For mounting embryos on the slides. Size 22 x 22 mm. Thickness No. 1 (0.13 to 0.16 mm)
mouse monoclonal anti-alphaTubulin antibody (DM1A) Santa Cruz Biotechnology sc-32293 For labeling the distrbution of alpha-tubulin of cells.
Nail polish N/A N/A For sealing the coverslips on the slides.
Normal goat serum (NGS) Sigma-Aldrich G9023 For blocking the non-specific binding of antibodies.
Paraformaldehyde (PFA) VWR MK262159 For fixation of aphid ovaries.
Phalloidin-TRITC Sigma-Aldrich P1951 For labeling the distrbution of F-actin on embryos.
Phosphate-buffered saline (PBS) N/A N/A As isotonic solution for aphid ovaries.
Plastic dropper N/A N/A For transfering ovaries of aphids from tube to cell tray. Size 3 ml. 
Proteinase K Merck 124678 For creating pores (punching) on the cell membrane and facilitating the access of antibodies. 
Pyrex spot plate N/A N/A For dissection and color reactions of aphid ovaries under microscopy. Each cavity with diameter 22 mm and  depth 7 mm.
SIGMAFAST 3,3’-diaminobenzidine (DAB) tablets  Sigma-Aldrich D4168 For developing of substrated signals. Also called DAB peroxidase substrate tablet set.
Stereo microscope Leica Microsystems EZ4 For dissection and observation of aphid ovaries.
Triton-X 100 Sigma-Aldrich T8787 For creating pores (punching) on the cell membrane. 
VECTASHIELD Elite ABC Kit (Rabbit IgG) Vector laboratories PK-6101 For enhancement of the signal. Including of biotinylated goat anti-rabbit IgG secondary antibody, A and B reagents.
VECTASHIELD mounting medium Vector laboratories H1000 For clearing of aphid embryos and mounting.

Referências

  1. Blackman, R. L., Minks, A. K., Harrewijn, P. Reproduction, cytogenetics and development. Aphids: their biology, natural enemies. , 163-195 (1987).
  2. Davis, G. K. Cyclical parthenogenesis and viviparity in aphids as evolutionary novelties. J. Exp. Zool. 318, 448-459 (2012).
  3. The International Aphid Genomics Consortium. Genome sequence of the pea aphid Acyrthosiphon pisum. PLoS Biol. 8 (2), e1000313 (2010).
  4. Abzhanov, A., et al. Are we there yet? Tracking the development of new model systems. Trends Genet. 24 (7), 353-360 (2008).
  5. Chang, C., et al. Apvasa marks germ-cell migration in the parthenogenetic pea aphid Acyrthosiphon pisum (Hemiptera: Aphidoidea)). Dev. Genes Evol. 217 (4), 275-287 (2007).
  6. Chang, C., et al. Whole-mount identification of gene transcripts in aphids: Protocols and evaluation of probe accessibility. Arch. Insect Biochem. 68 (4), 186-196 (2008).
  7. Chung, C. Y., Cook, C. E., Lin, G. W., Huang, T. Y., Chang, C. Reliable protocols for whole-mount fluorescent in situ hybridization (FISH) in the pea aphid Acyrthosiphon pisum: a comprehensive survey and analysis. Insect Sci. 21 (3), 265-277 (2014).
  8. Mutti, N. S., Park, Y., Reese, J. C., Reeck, G. R. RNAi knockdown of a salivary transcript leading to lethality in the pea aphid, Acyrthosiphon pisum. J. Insect Sci. 6, 38 (2006).
  9. Jaubert-Possamai, S., et al. Gene knockdown by RNAi in the pea aphid Acyrthosiphon pisum. BMC Biotechnol. 7, 63 (2007).
  10. Sapountzis, P., et al. New insight into the RNA interference response against cathepsin-L gene in the pea aphid, Acyrthosiphon pisum: Molting or gut phenotypes specifically induced by injection or feeding treatments. Insect Biochem. Mol. Biol. 51, 20-32 (2014).
  11. Braendle, C., et al. Developmental origin and evolution of bacteriocytes in the aphid-Buchnera symbiosis. PLoS Biol. 1 (1), e21 (2003).
  12. Miura, T., et al. A comparison of parthenogenetic and sexual embryogenesis of the pea aphid Acyrthosiphon pisum (Hemiptera: Aphidoidea). J. Exp. Zool. 295 (1), 59-81 (2003).
  13. Chang, C., Lee, W. C., Cook, C. E., Lin, G. W., Chang, T. Germ-plasm specification and germline development in the parthenogenetic pea aphid Acyrthosiphon pisum: Vasa and Nanos as markers. Int. J. Dev. Biol. 50 (4), 413-421 (2006).
  14. Koshy, A. A., Cabral, C. M. 3-D imaging and analysis of neurons infected in vivo with Toxoplasma gondii. J. Vis. Exp. (94), e52237 (2014).
  15. Brisson, J. A., Stern, D. L. The pea aphid, Acyrthosiphon pisum: an emerging genomic model system for ecological, developmental and evolutionary studies. Bioessays. 28 (7), 747-755 (2006).
  16. Tautz, D., Pfeifle, C. A non-radioactive in situ hybridization method for the localization of specific RNAs in Drosophila embryos reveals translational control of the segmentation gene hunchback. Chromosoma. 98 (2), 81-85 (1989).
  17. Harland, R. M. In-situ hybridization: an improved whole-mount method for Xenopus embryos. Method. Cell Biol. 36, 685-695 (1991).
  18. Wolff, C., Sommer, R., Schroder, R., Glaser, G., Tautz, D. Conserved and divergent expression aspects of the Drosophila segmentation gene hunchback in the short germ band embryo of the flour beetle Tribolium. Development. 121 (12), 4227-4236 (1995).
  19. Jowett, T. Double in situ hybridization techniques in zebrafish. Methods. 23 (4), 345-358 (2001).
  20. Lin, G. W., Cook, C. E., Miura, T., Chang, C. Posterior localization of ApVas1 positions the preformed germ plasm in the sexual oviparous pea aphid Acyrthosiphon pisum. Evodevo. 5, 18 (2014).
  21. Straus, W. Inhibition of peroxidase by methanol and by methanol-nitroferricyanide for use in immunoperoxidase procedures. J. Histochem. Cytochem. 19 (11), 682-688 (1971).

Play Video

Citar este artigo
Lin, G., Chang, C. Identification of Critical Conditions for Immunostaining in the Pea Aphid Embryos: Increasing Tissue Permeability and Decreasing Background Staining. J. Vis. Exp. (108), e53883, doi:10.3791/53883 (2016).

View Video