Summary

Disseksjon og Flat-montering av trepigget stingsild Branchial Skeleton

Published: May 07, 2016
doi:

Summary

The branchial skeleton, including gill rakers, pharyngeal teeth, and branchial bones, serves as the primary site of food processing in most fish. Here we describe a protocol to dissect and flat-mount this internal skeleton in threespine sticklebacks. This method is also applicable to a variety of other fish species.

Abstract

The posterior pharyngeal segments of the vertebrate head give rise to the branchial skeleton, the primary site of food processing in fish. The morphology of the fish branchial skeleton is matched to a species’ diet. Threespine stickleback fish (Gasterosteus aculeatus) have emerged as a model system to study the genetic and developmental basis of evolved differences in a variety of traits. Marine populations of sticklebacks have repeatedly colonized countless new freshwater lakes and creeks. Adaptation to the new diet in these freshwater environments likely underlies a series of craniofacial changes that have evolved repeatedly in independently derived freshwater populations. These include three major patterning changes to the branchial skeleton: reductions in the number and length of gill raker bones, increases in pharyngeal tooth number, and increased branchial bone lengths. Here we describe a detailed protocol to dissect and flat-mount the internal branchial skeleton in threespine stickleback fish. Dissection of the entire three-dimensional branchial skeleton and mounting it flat into a largely two-dimensional prep allows for the easy visualization and quantification of branchial skeleton morphology. This dissection method is inexpensive, fast, relatively easy, and applicable to a wide variety of fish species. In sticklebacks, this efficient method allows the quantification of skeletal morphology in genetic crosses to map genomic regions controlling craniofacial patterning.

Introduction

En utrolig mengde av mangfold som finnes i hodet skjelettet blant virveldyr, spesielt blant fiskene. I mange tilfeller er dette mangfoldet letter ulike fôringsstrategier 1-4, og kan innebære store endringer i både ekstern og intern kraniofaciale mønster. Den branchial skjelettet er plassert innvendig i halsen på en fisk og omgir det meste av munnhulen. Den branchial skjelettet består av 5 serielt homologe segmenter, fremre hvorav fire støtter gjellene. Sammen disse fem segmenter fungere som et grensesnitt mellom fisk og maten fem. Variasjon i et mangfold av egenskaper, inkludert gill rakers, svelgtann, og branchial bein bidra til effektiv beite på ulike typer mat.

Stingsild har gjennomgått en adaptiv stråling etter forfedrenes oseaniske former kolonis innsjøer og bekker i hele den nordlige halvkule. Skiftet i kostenfra små dyreplankton i havet til større byttedyr i ferskvann har ført til dramatisk trofisk variasjon i flere kraniofaciale trekk 6. Mens mange studier har fokusert på eksterne kraniofaciale forskjeller i stingsild 7 13 viktige kraniofaciale endringer utvikle seg gjentatte ganger i den interne branchial skjelettet. Evnen til å skape fruktbare hybrider mellom morfologisk distinkte stingsild populasjoner gir en utmerket mulighet til å kartlegge genetiske grunnlaget for utviklet seg endringer i branchial skjelettet.

En trofisk egenskap av økologisk betydning er fordelingen av gjelle rakers, periodiske dermal bein som linje fremre og bakre ansiktene til branchial bein og brukes til å filtrere byttedyr. Fisk som vanligvis lever av små byttedyr tendens til å ha lengre og tettere mellomrom gill rakers forhold til fisk som lever av større byttedyr 14,15. Variasjon i gjelle rakers har blitt rapportert både mTVen på og mellom arter 14-19, og aspekter ved gjelle raker mønster bidra til trofiske nisjer og trenings 16. Tiår med forskning har grundig dokumentert gjelle raker antall og lengde variasjon i threespine stingsild 17 21; Men disse studiene typisk fokusere på den første raden av gill rakers. Nyere arbeider har vist modularitet i den genetiske kontrollen av gill rytterens tall over branchial skjelettet 22,23 og over en enkelt rad i gjelle raker avstand 23 og lengde 24 fremhever betydningen av å studere mer enn ro en eller en enkelt gill raker å forstå utviklings genetiske grunnlaget for gill rytterens reduksjon.

En andre trofiske egenskap av både økologisk og biomedisinsk betydning er fordelingen av svelgtann. Tennene i fisk kan ligge både i den orale kjeve og i branchial skjelett, kjent som svelgtann. Oral tenner brukes primært for prey fange mens svelgtann brukes til tygging og byttedyr manipulasjon 25-27. Begge settene danne via felles utviklingsmekanismer og anses utviklings homolog 28. Interessant modularitet oppstår der noen arter, for eksempel sebrafisk, mangel muntlig og rygg svelget tenner 29, mens andre arter har flere tann ceratobranchials, pharyngobranchials, og noen ganger toothed basihyal og hypobranchials 30. I stingsild, er svelgtann funnet ventralt på den femte ceratobranchial og dorsally på fremre og bakre pharyngobranchials 31. Kinematikk på stingsild fôring viser oral kjeve brukes primært for byttedyr fangst og legge til rette for suging fôring ni forlater tygging til svelget kjeven. I ciklider, lavere svelget kjeve morfologi varierer dramatisk 32,33 og har vist seg å være tilpasningsdyktige og korrelert med trofisk nisje 34. multiple ferskvann stingsild bestander har utviklet seg dramatiske økninger i ventral svelget tann nummer 23,35,36. Nyere arbeider har vist at utviklings genetiske grunnlaget for dette utviklet seg tann gevinsten er stor grad tydelig i to uavhengig avledet bestander av ferskvanns stingsild 36. I motsetning til pattedyr tenner, fisk fornye sine tenner kontinuerlig gjennom hele voksenlivet 37. Begge disse tidligere beskrevet høye tannferskvannsbestander har utviklet en akselerert tann erstatningsrate, noe som gir en sjelden virveldyr system for å studere genetiske grunnlaget for regenerering 36.

En tredje trofiske egenskap som har utviklet seg gjentatte ganger i ferskvann stingsild er lengre epibranchial og ceratobranchial bein, de branchial bue segment homologer i øvre og nedre kjeve, henholdsvis 38. Lengre branchial bein gi en større munnhulen og trolig er adaptive for å tillate større byttedyr å være consumed. Videre i annen fisk, epibranchial bein er viktig for depresjonen i rygg svelget tannplatene 25. Som gill rakers og svelgtann, de branchial bein er interne og dermed vanskelig å enkelt visualisere eller tallfeste.

Her presenterer vi en detaljert protokoll for å dissekere og flat-montere branchial skjelettet, noe som gir enkel visualisering og kvantifisering av en rekke viktige kraniofaciale egenskaper. Mens denne protokollen beskriver en stingsild disseksjon, fungerer den samme metoden på en rekke andre fisker.

Protocol

All fisk arbeidet ble godkjent av Institutional Animal Care og bruk komité ved University of California i Berkeley (protokoll nummer R330). Eutanasi ble utført ved anvendelse av nedsenkning i 0,025% Tricaine-S bufret med 0,1% natrium-bikarbonat 39. Alle trinn utføres ved romtemperatur. 1. Forberedelse Merk: Utfør trinn 1,1-1,5 i koniske rør eller scintillasjonsglass som kan forsegle tett og bli lagt horisontalt. Fisk trenger ikke å være konstant rystet, men forsøke å blande løsningen s…

Representative Results

Denne protokollen gir en dissekert og flat montert branchial skjelett (figur 4), hvor en rekke viktige trofiske egenskaper kan kvantifiseres. Fra en dorsal visning, kan alle rader av gjelle rakers, alle svelget tann plater, og nesten alle branchial bein være lett visualisert og kvantifisert 22 – 24,35,36,38,42. Alizarin Red S fluorescerer også på en rhodamin eller lignende rødt filter som tillater dobbel merking med andre markø…

Discussion

The branchial skeleton is a complex set of bones in the throat of a fish that manipulates, filters, and masticates food items on their way to the esophagus. Many interesting trophic traits including the patterning of gill rakers, pharyngeal teeth, and branchial bones vary across and within species. The majority of these traits are difficult to near impossible to accurately measure with the branchial skeleton in situ (e.g., gill raker length, branchial bone length). This flat-mounting protocol places all…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded in part by NIH R01 #DE021475 to CTM and an NSF Graduate Research Fellowship to NAE. Thanks to Miles Johnson for assistance with imaging and Priscilla Erickson for critical reading of the manuscript.

Materials

Sodium Hydroxide (KOH) EMD PX1480-1
Glycerol Sigma-Alderich G7893-4L
10% Neutral Buffered Formalin (NBF) Azer Scientific NBF-4-G
Alizarin Red S EMD 116-12
Microscope Cover Glasses 22x60mm VWR 16004-350
100x10mm Glass Petri Dish Kimble Chase 23064-10010 To dissect samples on
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Ellsworth Adhesives 184 SIL ELAST KIT 0.5KG Can be poured into glass or plastic petri dishes to make dissecting plates
Modeling Clay Sargent Art 22-4000 1lb cream
Scintillation Vials (case of 500) Wheaton 66021-668 Borosilicate Glass with Screw Cap
Forceps-Dumont #5 Inox (Biologie tip) FST 11252-20 Dumostars are an alternative
Dissecting Scissors  FST 15003-08 Alternate sizes are available depending on size of sample
Dissecting Microscope Leica S6E with KL300 LED Many other models work nicely, having a flat base helps
Microcentrifuge Tubes 1.7mL Denville C-2170
Cardboard slide tray Fisher 12-587-10

Referências

  1. Cooper, W. J., Westneat, M. W. Form and function of damselfish skulls: rapid and repeated evolution into a limited number of trophic niches. BMC Evol. Biol. 9 (24), (2009).
  2. Albertson, R. C., Kocher, T. D. Genetic and developmental basis of cichlid trophic diversity. Heredity. 97 (3), 211-221 (2006).
  3. Martin, C. H., Wainwright, P. C. Trophic novelty is linked to exceptional rates of morphological diversification in two adaptive radiations of cyprinodon pupfish. Evolution. 65 (8), 2197-2212 (2011).
  4. Wainwright, P. C., et al. The evolution of pharyngognathy: A phylogenetic and functional appraisal of the pharyngeal jaw key innovation in labroid fishes and beyond. Syst. Biol. 61 (6), 1001-1027 (2012).
  5. Sibbing, F. Food capture and oral processing. Cyprinid Fishes. , 377-412 (1991).
  6. Bell, M., Foster, S. . The Evolutionary Biology of the Threespine Stickleback. , (1994).
  7. Kimmel, C. B., et al. Evolution and development of facial bone morphology in threespine sticklebacks. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 102 (16), 5791-5796 (2005).
  8. Mcgee, M. D., Wainwright, P. C. Convergent evolution as a generator of phenotypic diversity in threespine stickleback. Evolution. 67 (4), 1204-1208 (2013).
  9. McGee, M. D., Schluter, D., Wainwright, P. C. Functional basis of ecological divergence in sympatric stickleback. BMC Evol. Biol. 13, 277 (2013).
  10. McGuigan, K., Nishimura, N., Currey, M., Hurwit, D., Cresko, W. A. Quantitative genetic variation in static allometry in the threespine stickleback. Integr. Comp. Biol. 50 (6), 1067-1080 (2010).
  11. Caldecutt, W. J., Bell, M. A., Buckland-Nicks, J. A. Sexual dimorphism and geographic variation in dentition of threespine stickleback, Gasterosteus aculeatus. Copeia. 2001 (4), 936-944 (2001).
  12. Berner, D., Moser, D., Roesti, M., Buescher, H., Salzburger, W. Genetic architecture of skeletal evolution in european lake and stream stickleback. Evolution. 68 (6), 1792-1805 (2014).
  13. Jamniczky, H. a., Barry, T. N., Rogers, S. M. Eco-evo-devo in the study of adaptive divergence: examples from threespine stickleback (Gasterosteus aculeatus). Integr. Comp. Biol. 55 (1), 166-178 (2015).
  14. Magnuson, J., Heitz, J. Gill raker apparatus and food selectivity among mackerels, tunas, and dolphins. Fish. Bull. 69 (2), 361-370 (1971).
  15. Kahilainen, K. K., et al. The role of gill raker number variability in adaptive radiation of coregonid fish. Evol. Ecol. 25 (3), 573-588 (2011).
  16. Arnegard, M. E., et al. Genetics of ecological divergence during speciation. Nature. 511 (7509), 307-311 (2014).
  17. Gross, H. P., Anderson, J. M., Gross, H. P., Anderson, J. Geographic variation in the gillrakers and diet of European threespine sticklebacks, Gasterosteus aculeatus. Copeia. 1984 (1), 87-97 (1984).
  18. Hagen, D., Gilbertson, L. Geographic variation and environmental selection in Gasterosteus aculeatus L in the Pacific Northwest, America. Evolution. 26 (1), 32-51 (1972).
  19. McPhail, J. D. Ecology and evolution of sympatric sticklebacks (Gasterosteus): morphological and genetic evidence for a species pair in Enos Lake, British Columbia. Can. J. Zool. 62 (7), 1402-1408 (1984).
  20. Schluter, D., McPhail, J. D. Ecological character displacement and speciation in sticklebacks. Am. Nat. 140 (1), 85-108 (1992).
  21. Robinson, B. Trade offs in Habitat-specific foraging efficiency and the nascent adaptive divergence of sticklebacks in lakes. Behaviour. 137 (7), 865-888 (2000).
  22. Glazer, A. M., Cleves, P. A., Erickson, P. A., Lam, A. Y., Miller, C. T. Parallel developmental genetic features underlie stickleback gill raker evolution. Evodevo. 5 (1), (2014).
  23. Miller, C. T., Glazer, A. M., et al. Modular skeletal evolution in sticklebacks is controlled by additive and clustered quantitative trait loci. Genética. 197 (1), 405-420 (2014).
  24. Glazer, A. M., Killingbeck, E. E., Mitros, T., Rokhsar, D. S., Miller, C. T. Genome assembly improvement and mapping convergently evolved skeletal traits in sticklebacks with Genotyping-by-Sequencing. G3. 5, 1463-1472 (2015).
  25. Wainwright, P. Functional morphology of the pharyngeal jaw apparatus. Fish Physiol. Fish Biomech. , 77-102 (2006).
  26. Hulsey, C. D., Fraser, G. J., Streelman, J. T. Evolution and development of complex biomechanical systems: 300 million years of fish jaws. Zebrafish. 2 (4), 243-257 (2005).
  27. Lauder, G. Functional design and evolution of the pharyngeal jaw apparatus in euteleostean fishes. Zool. J. Linn. Soc. 77, 1-38 (1983).
  28. Fraser, G. J., et al. An ancient gene network is co-opted for teeth on old and new jaws. PLoS Biol. 7 (2), e1000031 (2009).
  29. Stock, D. Zebrafish dentition in comparative context. J. Exp. Zool. B. Mol. Dev. Evol. 308, 523-549 (2007).
  30. Liem, K., Greenwood, P. A functional approach to the phylogeny of the pharyngognath teleosts. Am. Zool. 21 (1), 83-101 (1981).
  31. Anker, G. C. Morphology and kinetics of the head of the stickleback, Gasterosteus aculeatus. Trans. Zool. Soc. London. 32 (5), 311-416 (1974).
  32. Meyer, A. Morphometrics and allometry in the trophically polymorphic cichlid fish, Cichlusomu citrinelfum: Alternative adaptations and ontogenetic changes in shape. J. Zool., Lond. 221, 237-260 (1990).
  33. Huysseune, A. Phenotypic plasticity in the lower pharyngeal jaw dentition of Astatoreochromis alluaudi (Teleostei: Cichlidae). Arch. Oral Biol. 40 (11), 1005-1014 (1995).
  34. Muschick, M., Indermaur, A., Salzburger, W. Convergent Evolution within an adaptive radiation of cichlid fishes. Curr. Biol. 22 (24), 2362-2368 (2012).
  35. Cleves, P. A., et al. Evolved tooth gain in sticklebacks is associated with a cis-regulatory allele of Bmp6. Proc. Natl. Acad. Sci. 111 (38), 13912-13917 (2014).
  36. Ellis, N. A., et al. Distinct developmental and genetic mechanisms underlie convergently evolved tooth gain in sticklebacks. Development. (142), 2442-2451 (2015).
  37. Tucker, A. S., Fraser, G. J. Evolution and developmental diversity of tooth regeneration. Semin. Cell Dev. Biol. 25-26, 71-80 (2014).
  38. Erickson, P. A., Glazer, A. M., Cleves, P. A., Smith, A. S., Miller, C. T. Two developmentally temporal quantitative trait loci underlie convergent evolution of increased branchial bone length in sticklebacks. Proc. R. Soc. B. 281, (2014).
  39. Leary, S., et al. . AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals. , (2013).
  40. Bell, M. A. Evolutionary phenetics and genetics. Evol. Genet. Fishes. , 431-528 (1984).
  41. Taylor, W. R., Van Dyke, G. C. Revised procedures for staining and clearing small fishes and other vertebrates for bone and cartilage study. Cybium. 9 (2), 107-119 (1985).
  42. Erickson, P. A., et al. A 190 base pair, TGF-β responsive tooth and fin enhancer is required for stickleback Bmp6 expression. Dev. Biol. 401 (2), 310-323 (2015).
  43. Miller, C. T., et al. cis-Regulatory changes in Kit ligand expression and parallel evolution of pigmentation in sticklebacks and humans. Cell. 131 (6), 1179-1189 (2007).
  44. Aigler, S. R., Jandzik, D., Hatta, K., Uesugi, K., Stock, D. W. Selection and constraint underlie irreversibility of tooth loss in cypriniform fishes. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 111 (21), 7707-7712 (2014).
  45. Pasco-Viel, E., et al. Evolutionary trends of the pharyngeal dentition in Cypriniformes (Actinopterygii Ostariophysi). PLoS One. 5 (6), e11293 (2010).
check_url/pt/54056?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ellis, N. A., Miller, C. T. Dissection and Flat-mounting of the Threespine Stickleback Branchial Skeleton. J. Vis. Exp. (111), e54056, doi:10.3791/54056 (2016).

View Video