O canal iônico é uma orquestração orientada por estímulos de movimentos de proteínas que leva a transições entre estados fechados, abertos e dessensibilizados. Fundamental para essas transições é a flexibilidade intrínseca da proteína, que é criticamente modulada pela composição lipídica da membrana. Para entender melhor a base estrutural da função do canal, é necessário estudar a dinâmica das proteínas em um ambiente de membrana fisiológica. A espectroscopia de Ressonância Paramagnética Eletrônica (EPR) é uma ferramenta importante para caracterizar transições conformacionais entre estados funcionais. Em comparação com a RMN e a cristalografia de raios-X, as informações obtidas da EPR são intrinsecamente de menor resolução. No entanto, ao contrário de outras técnicas, no EPR não há limite superior para o peso molecular da proteína, os requisitos da amostra são significativamente menores e, mais importante, a proteína não é restringida pelas forças da rede cristalina. Portanto, o EPR é exclusivamente adequado para estudar grandes complexos de proteínas e proteínas em sistemas reconstituídos. Neste artigo, discutiremos protocolos gerais para marcação de spin dirigida ao local e reconstituição da membrana usando um canal iônico controlado por ligante pentamérico dependente de prótons procariótico (pLGIC) de Gloeobacter violaceus (GLIC) como exemplo. Uma combinação de abordagens EPR de onda contínua (CW) e pulsada (ressonância eletrônica de elétron duplo-DEER) em estado estacionário será descrita para permitir uma caracterização quantitativa completa da dinâmica do canal.