Summary

इंजीनियरिंग तीन आयामी उपकला ऊतकों कोशिकी मैट्रिक्स के भीतर एम्बेडेड

Published: July 10, 2016
doi:

Summary

यह पांडुलिपि एक नरम लिथोग्राफी आधारित तीन आयामी (3 डी) की वर्दी सरणियों परिभाषित ज्यामिति की उपकला ऊतकों बाह्य मैट्रिक्स से घिरा इंजीनियर करने के लिए तकनीक का वर्णन करता है। इस विधि प्रकार की कोशिकाओं और प्रयोगात्मक संदर्भों की एक विस्तृत विविधता के लिए उत्तरदायी है और समान प्रतिकृति के उच्च throughput स्क्रीनिंग के लिए अनुमति देता है।

Abstract

The architecture of branched organs such as the lungs, kidneys, and mammary glands arises through the developmental process of branching morphogenesis, which is regulated by a variety of soluble and physical signals in the microenvironment. Described here is a method created to study the process of branching morphogenesis by forming engineered three-dimensional (3D) epithelial tissues of defined shape and size that are completely embedded within an extracellular matrix (ECM). This method enables the formation of arrays of identical tissues and enables the control of a variety of environmental factors, including tissue geometry, spacing, and ECM composition. This method can also be combined with widely used techniques such as traction force microscopy (TFM) to gain more information about the interactions between cells and their surrounding ECM. The protocol can be used to investigate a variety of cell and tissue processes beyond branching morphogenesis, including cancer invasion.

Introduction

branched उपकला ऊतकों, morphogenesis शाखाओं में बंटी के रूप में जाना के विकास, सेल व्युत्पन्न, शारीरिक, और पर्यावरणीय कारकों द्वारा विनियमित है। स्तन ग्रंथि में, शाखाओं में बंटी morphogenesis चलने का एक प्रक्रिया है जो निर्देशित के माध्यम से सामूहिक सेल प्रवास एक पेड़ की तरह वास्तुकला बनाता है। पहला कदम दुग्ध नलिकाओं से प्राथमिक कली गठन, शाखा दीक्षा और बढ़ाव 1,2 द्वारा पीछा किया। आसपास के स्ट्रोमा में शाखाओं का आक्रमण यौवन पर स्टेरॉयड हार्मोन के प्रणालीगत रिलीज से प्रेरित है। न्यू प्राथमिक कलियों तो मौजूदा शाखाओं की छोर से आरंभ, और इस प्रक्रिया को एक उपकला पेड़ 3 बनाने के लिए जारी है। हालांकि कई महत्वपूर्ण जैव रासायनिक संकेतों पहचान की गई है, कि इस जटिल विकास की प्रक्रिया वर्तमान में कमी है मार्गदर्शन सेल जैविक तंत्र के लिए एक व्यापक समझ। इसके अलावा, विशिष्ट संकेतों के प्रभावों पर यंत्रवत अध्ययनों के अनुभव से deconstruct करने के लिए मुश्किल हो जाता हैविवो में बयान, के रूप में सटीक spatiotemporal perturbations और माप अक्सर संभव नहीं हैं।

इस तरह पूरे अंग संस्कृति, प्राथमिक organoids, और सेल संस्कृति मॉडल के रूप में तीन आयामी (3 डी) संस्कृति तकनीक, व्यवस्थित तंत्र ऊतक morphogenesis 4-6 अंतर्निहित की जांच के लिए उपयोगी उपकरण हैं। ये ऐसे यांत्रिक बलों और जैव रासायनिक संकेतों के रूप में व्यक्तिगत रूप से विशिष्ट कारकों के प्रभाव का निर्धारण करने, सहित प्रवास, प्रसार, और भेदभाव सेल व्यवहार की एक किस्म के लिए विशेष रूप से उपयोगी हो सकता है। 6 इंजीनियर सेल संस्कृति मॉडल, विशेष रूप से, आसानी से गड़बड़ी सक्षम व्यक्ति की कोशिकाओं और उनके microenvironment के।

ऐसा ही एक संस्कृति मॉडल नियंत्रित 3 डी संरचना के साथ मॉडल स्तन उपकला ऊतकों जब एक साथ प्रेरित है कि लगातार और reproducibly शाखाओं कि सामूहिक रूप से विस्थापित फार्म इंजीनियर को एक microfabrication आधारित दृष्टिकोण का उपयोग करता हैppropriate वृद्धि कारक है। मॉडल का प्रमुख लाभ ठीक हेरफेर और इस तरह के यांत्रिक तनाव के पैटर्न, उच्च सांख्यिकीय विश्वास के साथ के रूप में शारीरिक और जैव रासायनिक कारकों के प्रभाव को मापने की क्षमता है। इस तकनीक को एक साथ कम्प्यूटेशनल मॉडलिंग के साथ, पहले से ही स्तन उपकला ऊतकों और अन्य शाखाओं epithelia 7-11 के सामान्य विकास के मार्गदर्शन में शारीरिक और जैव रासायनिक संकेतों के रिश्तेदार योगदान निर्धारित करने के लिए इस्तेमाल किया गया है। यहाँ प्रस्तुत इन मॉडल के ऊतकों, जो आसानी से कोशिकाओं और बाह्य मैट्रिक्स (ईसीएम) जैल के अन्य प्रकारों के लिए बढ़ाया जा सकता है के निर्माण के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल है, और जो चिकित्सा विज्ञान के परीक्षण के लिए एक संभावित उपकरण के रूप में कार्य करता है।

Protocol

1. समाधान की तैयारी एक 5 मिलीग्राम / मिलीलीटर इंसुलिन का समाधान तैयार करने के लिए, पाउडर इंसुलिन शेयर 5 मिमी हाइड्रोक्लोरिक एसिड (एचसीएल) के साथ DH 2 में (विलायक 100 मिलीलीटर में मिलीग्राम इंसुलिन 500) पत?…

Representative Results

स्तन उपकला ऊतक microfabrication के जनरल योजनाबद्ध Microfabrication प्रक्रिया प्रयोगात्मक कार्य प्रवाह रूपरेखा का एक सामान्य योजनाबद्ध चित्र 1 में दिखाया गया है। अंतिम परिणाम समान ज्य?…

Discussion

The protocol described above outlines a method to produce identical epithelial tissues of pre-defined shape, enabling spatial control of the mechanical stress experienced by cells in the tissue. An elastomeric mold is used to create cavities in type I collagen that are then filled with epithelial cells and covered with an additional collagen layer such that cells are completely encapsulated in a 3D collagen matrix environment. Further culture of these tissues and treatment with growth factors to induce branching from the…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

यह काम एनआईएच (HL118532, HL120142, CA187692), डेविड और Lucile Packard फाउंडेशन, केमिली और हेनरी Dreyfus फाउंडेशन, और बरोज से अनुदान द्वारा समर्थित किया गया था आपका स्वागत फंड। एएसपी एक शेर्लोट एलिजाबेथ प्रोक्टर माननीय फैलोशिप द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

Polydimethylsiloxane (PDMS) Ellsworth Adhesives Sylgard 184
PDMS curing agent Ellsworth Adhesives Sylgard 184
Lithographically patterned silicon master self-made N/A
Plastic weigh boat Fisher Scientific 08-732-115
100-mm-diameter Petri dishes BioExpress D-2550-2
Ethyl Alcohol 200 Proof Pharmco-Aaper 111000200 Make a 70% EtOH (v:v) solution by mixing with dH2O
Razor blade American Safety Razor 620179
1:1 Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium : Ham’s F12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) (1:1) Hyclone SH30023FS
Fetal Bovine Serum (FBS) Atlanta Biologicals S11150H
10x Hank’s balanced salt solution (HBSS) Life Technologies 14185-052
Insulin Sigma Aldrich I6634-500MG
Gentamicin Life Technologies 15750-060
10X Phosphate-buffered saline (PBS) Fisher Scientific BP399-500
Sodium hydroxide (NaOH) Sigma Aldrich 221465-500G
Bovine type I collagen (non-pepsinized) Koken IAC-50
Albumin from bovine serum (BSA) Sigma Aldrich A-7906
Curved stainless steel tweezers Dumont 7
35-mm-diameter tissue culture dishes BioExpress T-2881-6
15 mL conical tubes BioExpress C-3394-2
1.5 mL Eppendorf Safe-Lock Tube USA Scientific 1615-5500
Circular #1 glass coverslips, 15-mm in diameter Bellco Glass Inc. Special order
0.05% 1X Trypsin-EDTA Life Technologies 25300-054
Paraformaldehyde VWR 100503-916
Triton X-100 Perkin Elmer N9300260 Detergent
HGF Sigma Aldrich H 9661 Resuspended in dH2O at 50 mg/mL
Rabbit anti-mouse FAK antibody Life Technologies AMO0672
Goat anti-rabbit Alexa 488 antibody Life Technologies A-11034
Adobe Photoshop Adobe N/A Used for color-coding pixel frequency maps.
FIJI (ImageJ) NIH N/A Free image analysis software used for thresholding, registering, and overlaying images to create a pixel frequency map. The StackReg plugin was used for registering binary images.

Referências

  1. Affolter, M., et al. Tube or not tube: remodeling epithelial tissues by branching morphogenesis. Dev Cell. 4 (1), 11-18 (2003).
  2. Zhu, W., Nelson, C. M. PI3K signaling in the regulation of branching morphogenesis. Biosystems. 109 (3), 403-411 (2012).
  3. Sternlicht, M. D. Key stages in mammary gland development: the cues that regulate ductal branching morphogenesis. Breast Cancer Res. 8 (1), 201 (2006).
  4. Fata, J. E., et al. The MAPK(ERK-1,2) pathway integrates distinct and antagonistic signals from TGFalpha and FGF7 in morphogenesis of mouse mammary epithelium. Dev Biol. 306 (1), 193-207 (2007).
  5. Ip, M. M., Darcy, K. M. Three-dimensional mammary primary culture model systems. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 1 (1), 91-110 (1996).
  6. Lo, A. T., Mori, H., Mott, J., Bissell, M. J. Constructing three-dimensional models to study mammary gland branching morphogenesis and functional differentiation. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 17 (2), 103-110 (2012).
  7. Nelson, C. M., Vanduijn, M. M., Inman, J. L., Fletcher, D. A., Bissell, M. J. Tissue geometry determines sites of mammary branching morphogenesis in organotypic cultures. Science. 314 (5797), 298-300 (2006).
  8. Gjorevski, N., Nelson, C. M. Endogenous patterns of mechanical stress are required for branching morphogenesis. Integr Biol (Camb). 2 (9), 424-434 (2010).
  9. Gjorevski, N., Nelson, C. M. Mapping of mechanical strains and stresses around quiescent engineered three-dimensional epithelial tissues. Biophys J. 103 (1), 152-162 (2012).
  10. Gjorevski, N., Piotrowski, A. S., Varner, V. D., Nelson, C. M. Dynamic tensile forces drive collective cell migration through three-dimensional extracellular matrices. Sci Rep. 5, 11458 (2015).
  11. Zhu, W., Nelson, C. M. PI3K regulates branch initiation and extension of cultured mammary epithelia via Akt and Rac1 respectively. Dev Biol. 379 (2), 235-245 (2013).
  12. Barcellos-Hoff, M. H., Aggeler, J., Ram, T. G., Bissell, M. J. Functional differentiation and alveolar morphogenesis of primary mammary cultures on reconstituted basement membrane. Development. 105 (2), 223-235 (1989).
  13. Hirai, Y., et al. Epimorphin functions as a key morphoregulator for mammary epithelial cells. J Cell Biol. 140 (1), 159-169 (1998).
  14. Pavlovich, A. L., Manivannan, S., Nelson, C. M. Adipose stroma induces branching morphogenesis of engineered epithelial tubules. Tissue Eng Part A. 16 (12), 3719-3726 (2010).
check_url/pt/54283?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Piotrowski-Daspit, A. S., Nelson, C. M. Engineering Three-dimensional Epithelial Tissues Embedded within Extracellular Matrix. J. Vis. Exp. (113), e54283, doi:10.3791/54283 (2016).

View Video