Engineering Tredimensionella epitelvävnader Embedded inom extracellulär matrix
Summary
Detta manuskript beskriver en mjuk litografi-baserad teknik för att modifiera enhetliga matriser av tredimensionella (3D) epitelvävnader med definierad geometri omgivna av extracellulär matrix. Denna metod är mottaglig för ett stort antal olika celltyper och experimentella sammanhang och gör det möjligt för high-throughput screening av identiska replikat.
Abstract
The architecture of branched organs such as the lungs, kidneys, and mammary glands arises through the developmental process of branching morphogenesis, which is regulated by a variety of soluble and physical signals in the microenvironment. Described here is a method created to study the process of branching morphogenesis by forming engineered three-dimensional (3D) epithelial tissues of defined shape and size that are completely embedded within an extracellular matrix (ECM). This method enables the formation of arrays of identical tissues and enables the control of a variety of environmental factors, including tissue geometry, spacing, and ECM composition. This method can also be combined with widely used techniques such as traction force microscopy (TFM) to gain more information about the interactions between cells and their surrounding ECM. The protocol can be used to investigate a variety of cell and tissue processes beyond branching morphogenesis, including cancer invasion.
Introduction
Utvecklingen av grenade epitelvävnader, så kallade gren morfogenes, regleras av-cellerna, fysiska och miljöfaktorer. I bröstkörteln, förgrening morfogenes är en iterativ process genom vilken styrs kollektiv migration cell skapar en trädliknande arkitektur. Det första steget är det primära knopp bildning från mjölkgångarna, följt av filial initiering och förlängning 1,2. Invasion av filialer till den omgivande stroma induceras genom systemisk frisättning av steroidhormoner vid puberteten. Nya primära knoppar initierar sedan från ändarna av befintliga filialer, och denna process fortsätter att skapa en epitelceller träd 3. Även om många viktiga biokemiska signaler har identifierats, en omfattande förståelse av cell biologiska mekanismer som styr denna komplicerade utvecklingsprocess för närvarande saknas. Dessutom mekanistiska studier på påverkan av specifika signaler är svåra att dekonstruera från erfaringar in vivo, som exakta Spatiotemporal störningar och mätningar är ofta inte möjligt.
Tredimensionella (3D) odlingstekniker, såsom hel organkultur, primära organoids, och cellkulturmodeller, är användbara verktyg för att systematiskt undersöka de mekanismer som ligger bakom vävnadsmorfogenes 4-6. Dessa kan vara särskilt användbart för att bestämma påverkan av specifika faktorer individuellt, såsom mekaniska krafter och biokemiska signaler, på en mängd olika cellbeteenden, bland annat migration, proliferation och differentiering. 6 Engineered cellodlingsmodeller, i synnerhet lätt möjliggör störningen av enskilda celler och deras mikromiljö.
En sådan kultur modellen använder en mikrobaserad metod att konstruera modellbröst epitelvävnader med kontrollerad 3D-struktur som konsekvent och reproducerbart bildar grenar som migrerar kollektivt när induceras med enppropriate tillväxtfaktorer. Den stora fördelen med den modellen är förmågan att exakt manipulera och mäta effekterna av fysikaliska och biokemiska faktorer, såsom mönster av mekanisk påfrestning, med hög statistisk säkerhet. Denna teknik, tillsammans med datormodellering, har redan använts för att bestämma de relativa bidragen från fysiska och biokemiska signaler i ledning av den normala utvecklingen av bröst epitelvävnader och andra grenade epitel 7-11. Som presenteras här är ett detaljerat protokoll för att bygga dessa modell vävnader, som lätt kan utvidgas till andra typer av celler och extracellulär matris (ECM) geler, och som tjänar som en potentiellt verktyg för testning av terapeutiska medel.
Protocol
Representative Results
Discussion
The protocol described above outlines a method to produce identical epithelial tissues of pre-defined shape, enabling spatial control of the mechanical stress experienced by cells in the tissue. An elastomeric mold is used to create cavities in type I collagen that are then filled with epithelial cells and covered with an additional collagen layer such that cells are completely encapsulated in a 3D collagen matrix environment. Further culture of these tissues and treatment with growth factors to induce branching from the…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Detta arbete stöddes delvis av anslag från NIH (HL118532, HL120142, CA187692), David & Lucile Packard Foundation, Camille & Henry Dreyfus Foundation, och Burroughs Welcome fonden. ASP stöddes delvis av en Charlotte Elizabeth Procter honorific gemenskap.
Materials
| Polydimethylsiloxane (PDMS) | Ellsworth Adhesives | Sylgard 184 | |
| PDMS curing agent | Ellsworth Adhesives | Sylgard 184 | |
| Lithographically patterned silicon master | self-made | N/A | |
| Plastic weigh boat | Fisher Scientific | 08-732-115 | |
| 100-mm-diameter Petri dishes | BioExpress | D-2550-2 | |
| Ethyl Alcohol 200 Proof | Pharmco-Aaper | 111000200 | Make a 70% EtOH (v:v) solution by mixing with dH2O |
| Razor blade | American Safety Razor | 620179 | |
| 1:1 Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium : Ham’s F12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) (1:1) | Hyclone | SH30023FS | |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Atlanta Biologicals | S11150H | |
| 10x Hank’s balanced salt solution (HBSS) | Life Technologies | 14185-052 | |
| Insulin | Sigma Aldrich | I6634-500MG | |
| Gentamicin | Life Technologies | 15750-060 | |
| 10X Phosphate-buffered saline (PBS) | Fisher Scientific | BP399-500 | |
| Sodium hydroxide (NaOH) | Sigma Aldrich | 221465-500G | |
| Bovine type I collagen (non-pepsinized) | Koken | IAC-50 | |
| Albumin from bovine serum (BSA) | Sigma Aldrich | A-7906 | |
| Curved stainless steel tweezers | Dumont | 7 | |
| 35-mm-diameter tissue culture dishes | BioExpress | T-2881-6 | |
| 15 mL conical tubes | BioExpress | C-3394-2 | |
| 1.5 mL Eppendorf Safe-Lock Tube | USA Scientific | 1615-5500 | |
| Circular #1 glass coverslips, 15-mm in diameter | Bellco Glass Inc. | Special order | |
| 0.05% 1X Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25300-054 | |
| Paraformaldehyde | VWR | 100503-916 | |
| Triton X-100 | Perkin Elmer | N9300260 | Detergent |
| HGF | Sigma Aldrich | H 9661 | Resuspended in dH2O at 50 mg/mL |
| Rabbit anti-mouse FAK antibody | Life Technologies | AMO0672 | |
| Goat anti-rabbit Alexa 488 antibody | Life Technologies | A-11034 | |
| Adobe Photoshop | Adobe | N/A | Used for color-coding pixel frequency maps. |
| FIJI (ImageJ) | NIH | N/A | Free image analysis software used for thresholding, registering, and overlaying images to create a pixel frequency map. The StackReg plugin was used for registering binary images. |
Referências
- Affolter, M., et al. Tube or not tube: remodeling epithelial tissues by branching morphogenesis. Dev Cell. 4 (1), 11-18 (2003).
- Zhu, W., Nelson, C. M. PI3K signaling in the regulation of branching morphogenesis. Biosystems. 109 (3), 403-411 (2012).
- Sternlicht, M. D. Key stages in mammary gland development: the cues that regulate ductal branching morphogenesis. Breast Cancer Res. 8 (1), 201 (2006).
- Fata, J. E., et al. The MAPK(ERK-1,2) pathway integrates distinct and antagonistic signals from TGFalpha and FGF7 in morphogenesis of mouse mammary epithelium. Dev Biol. 306 (1), 193-207 (2007).
- Ip, M. M., Darcy, K. M. Three-dimensional mammary primary culture model systems. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 1 (1), 91-110 (1996).
- Lo, A. T., Mori, H., Mott, J., Bissell, M. J. Constructing three-dimensional models to study mammary gland branching morphogenesis and functional differentiation. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 17 (2), 103-110 (2012).
- Nelson, C. M., Vanduijn, M. M., Inman, J. L., Fletcher, D. A., Bissell, M. J. Tissue geometry determines sites of mammary branching morphogenesis in organotypic cultures. Science. 314 (5797), 298-300 (2006).
- Gjorevski, N., Nelson, C. M. Endogenous patterns of mechanical stress are required for branching morphogenesis. Integr Biol (Camb). 2 (9), 424-434 (2010).
- Gjorevski, N., Nelson, C. M. Mapping of mechanical strains and stresses around quiescent engineered three-dimensional epithelial tissues. Biophys J. 103 (1), 152-162 (2012).
- Gjorevski, N., Piotrowski, A. S., Varner, V. D., Nelson, C. M. Dynamic tensile forces drive collective cell migration through three-dimensional extracellular matrices. Sci Rep. 5, 11458 (2015).
- Zhu, W., Nelson, C. M. PI3K regulates branch initiation and extension of cultured mammary epithelia via Akt and Rac1 respectively. Dev Biol. 379 (2), 235-245 (2013).
- Barcellos-Hoff, M. H., Aggeler, J., Ram, T. G., Bissell, M. J. Functional differentiation and alveolar morphogenesis of primary mammary cultures on reconstituted basement membrane. Development. 105 (2), 223-235 (1989).
- Hirai, Y., et al. Epimorphin functions as a key morphoregulator for mammary epithelial cells. J Cell Biol. 140 (1), 159-169 (1998).
- Pavlovich, A. L., Manivannan, S., Nelson, C. M. Adipose stroma induces branching morphogenesis of engineered epithelial tubules. Tissue Eng Part A. 16 (12), 3719-3726 (2010).
