Summary

Ekstern ekspression af neuroner ved hjælp af elektriske og magnetiske felter i en- og todimensionelle kulturer

Published: May 07, 2017
doi:

Summary

Neuronale kulturer er en god model til at studere nye brain stimulation teknikker via deres effekt på enkelte neuroner eller en population af neuroner. Her præsenteres forskellige metoder til stimulering af mønstrede neuronale kulturer ved et elektrisk felt, der frembringes direkte af bad elektroder eller fremkaldt af en tidsvarierende magnetfelt.

Abstract

En neuron vil fyre et aktionspotentiale når dens membranpotentialet overstiger en vis tærskel. I typiske aktivitet i hjernen, dette sker som et resultat af kemiske input til sine synapser. Dog kan neuroner også ophidset af en pålagt elektrisk felt. Især de seneste kliniske anvendelser aktiverer neuroner ved at skabe et elektrisk felt eksternt. Det er derfor af interesse at undersøge, hvordan den neuron reagerer på det eksterne område og hvad der forårsager aktionspotentialet. Heldigvis, præcis og kontrolleret påføring af et ydre elektrisk felt er muligt for embryonale neuronale celler, som er udskåret, dissocieret og dyrkes i kulturer. Dette giver mulighed for undersøgelse af disse spørgsmål i en meget reproducerbar system.

I dette papir nogle af de teknikker, der anvendes til styret påføring af ydre elektrisk felt på neuronale kulturer gennemgås. Netværkene kan være enten en dimensionel, dvs. mønstrede i linear former eller lov til at vokse på hele substratets plan, og således todimensionale. Desuden kan excitationen skabes ved direkte anvendelse af elektrisk felt via elektroder nedsænket i fluidet (bad elektroder) eller ved at inducere det elektriske felt ved hjælp af fjernbetjeningen skabelse af magnetiske impulser.

Introduction

Samspillet mellem neuroner og eksterne elektriske felter har grundlæggende konsekvenser samt praktiske. Medens det er kendt siden de tider af Volta at et eksternt påført elektrisk felt kan excite væv, er de mekanismer, der er ansvarlige for produktionen af en resulterende virkningspotentiale i neuroner først for nylig begyndt at blive bragt i orden 1, 2, 3, 4. Dette omfatter at finde svar på spørgsmål vedrørende den mekanisme, der forårsager depolarisering af membranpotentiale, rolle membranegenskaber og ionkanaler, og selv region i neuron, der imødekommer det elektriske felt 2, 5. Terapeutisk neurostimulation 6, 7, 8, 9, <supclass = "xref"> 10 metoder er særligt afhængig af disse oplysninger, som kan være afgørende for målretning de ramte områder og for forståelse af resultatet af terapien. En sådan forståelse kan også hjælpe med at udvikle behandlingsprotokoller og nye tilgange til stimulering af forskellige områder i hjernen.

Måling af interaktionen inden in vivo hjernen tilføjer en vigtig komponent til denne forståelse, men hæmmes af unøjagtighed og ringe styrbarhed af målinger inden kraniet. I modsætning hertil kan målinger i kulturer let udføres i høj volumen med høj præcision, fremragende signal til støj ydeevne og en høj grad af reproducerbarhed og kontrol. Anvendelse af kulturer en lang række af neuronale egenskaber af kollektive netværk adfærd kan belyses 11, 12, 13, 14, </sup> 15, 16. Ligeledes forventes denne velkontrolleret system højeffektive til at belyse den mekanisme, hvorved andre stimuleringsmetoder arbejde, for eksempel hvordan kanalåbning under optisk stimulering i optogenetically aktive neuroner 17, 18, 19 er ansvarlig for at skabe aktionspotentiale.

Her er fokus på at beskrive den udvikling og forståelse for værktøjer, der effektivt kan ophidse neuron via et eksternt elektrisk felt. I denne artikel beskriver vi fremstilling af todimensionale og endimensional mønstrede hippocampuskulturer, stimulering ved hjælp af forskellige konfigurationer og orientering af en direkte påtrykt elektrisk felt ved bad elektroder og endelig stimulering af todimensional og mønstrede endimensionale kulturer ved en tidsvarierende magnetfelt, som inducerer et elektrisk felt5, 20, 21.

Protocol

Etik erklæring: Procedurer, der involverer håndtering af dyr blev udført i overensstemmelse med retningslinjerne fra Institutional Animal Care og brug Udvalg (IACUC) fra Weizmann Institute of Science, og det passende Israelsk lov. Den Weizmann Institute er akkrediteret af Association for Vurdering og akkreditering af Laboratory Animal Care International (AAALAC). Den Weizmann Institutional Animal Care og brug Udvalg godkendte denne undersøgelse, udført med hippocampusneuroner. 1. Fremstil…

Representative Results

Protokollen præsenteret tillader let mønsterdannelse af neuronale kulturer. Når den er kombineret med flere metoder vi udviklet til stimulering, det gør det muligt at foretage målinger af nogle iboende neuron egenskaber såsom Chronaxie og Rheobase 5, for at sammenligne egenskaberne af raske og syge neuroner 27, at finde optimale måder at stimulere kulturer som en funktion af deres struktur og mange flere nye tilgange. Nogle eks…

Discussion

1D mønstring er et vigtigt redskab, der kan anvendes til en lang række applikationer. For eksempel har vi anvendt 1D mønsterdannelse til at skabe logiske porte fra neuronale kulturer 29 og mere for nylig at måle Chronaxie og Rheobase af rotte hippocampale neuroner 5, og opbremsningen i signaludbredelseshastighed af affyringsaktivitet i Down syndrom hippocampale neuroner sammenlignet med den vildtype (WT) hippocampusneuroner 27. Den foreslåede p…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Ofer Feinerman, Fred Wolf, Menahem Segal, Andreas Neef og Eitan Reuveny for meget nyttige diskussioner. Forfatterne takker Ilan Breskin og Jordi Soriano for at udvikle tidlige versioner af teknologien. Forfatterne takker Tsvi Tlusty og Jean-Pierre Eckmann om hjælp med de teoretiske begreber. Denne forskning blev støttet af Minerva Foundation, Ministeriet for Videnskab og Teknologi, Israel, og af Israel Science Foundation tilskud 1320-1309 og Bi-National Science Foundation tilskud 2.008.331.

Materials

APV Sigma-Aldrich A8054 Disconnect the network. Mentioned in Section 2.4.2
B27 supp Gibco 17504-044 Plating medium. Mentioned in Section 1.1.1
bicuculline Sigma-Aldrich 14343 Disconnect the network . Mentioned in Section 2.4.2
Borax (sodium tetraborate decahydrate) Sigma-Aldrich S9640 Borate buffer. Mentioned in Section 1.1.2
Boric acid Frutarom LTD 5550710 Borate buffer. Mentioned in Section 1.1.2
CaCl2 , 1M Fluka  21098 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
CNQX Sigma-Aldrich C239 Disconnect the network . Mentioned in Section 2.4.2
COMSOL COMSOL Inc Multiphysics 3.5 Numerical simulation. Mentioned in Section 3.5.2
D-(+)-Glucose, 1M Sigma-Aldrich 65146 Plating medium, Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.1.1    1.5.2
D-PBS Sigma-Aldrich D8537 Cell Cultures. Mentioned in Section 1.2.4    1.2.6
FCS(FBS) Gibco 12657-029 Plating medium. Mentioned in Section 1.1.1
Fibronectin Sigma-Aldrich F1141 Bio Coating. Mentioned in Section 1.2.6
Fluo4, AM Life technologies F14201 Imaging of spontaneous or evoked activity . Mentioned in Section 1.5.1    1.5.3    1.5.5
FUDR Sigma-Aldrich F0503 Changing medium. Mentioned in Section 1.4.1
Gentamycin Sigma-Aldrich G1272 Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.1.1
GlutaMAX 100X Gibco 35050-038 Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.1.1
Hepes, 1M Sigma-Aldrich H0887 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
HI HS  BI 04-124-1A Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.1.1    1.4.1    1.4.2
KCl,  3M Merck 1049361000 Extracellular recording solution. Mentioned in Section 1.5.2
Laminin  Sigma-Aldrich L2020 Bio Coating. Mentioned in Section 1.2.6
MEM x 1 Gibco 21090-022 Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.4.1    1.4.2
MgCl2 , 1M Sigma-Aldrich M1028 Extracellular recording solution. Mentioned in Section 1.5.2
NaCl, 4M Bio-Lab 19030591 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
Octadecanethiol Sigma-Aldrich 01858 Cleaning Cr-Au coated coverslips (1D cultures). Mentioned in Section 1.2.3
Pluracare F108 NF Prill BASF Corparation  50475278 Bio-Rejection Coating, Bio Coating. Mentioned in Section 1.2.4    1.2.6
Poly-L-lysine 0.01% solution  Sigma-Aldrich  P47075 Promote cell division. Mentioned in Section 1.1.4
Sucrose, 1M Sigma-Aldrich S1888 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
Thiol  Sigma-Aldrich 1858 Bio-Rejection Coating. Mentioned in Section 1.2.3
URIDINE Sigma-Aldrich U3750 Changing medium. Mentioned in Section 1.4.1
Sputtering machine AJA International, Inc ATC Orion-5Series  coating glass with thin layers of metal. Mentioned in Section 1.2.2
Pen plotter  Hewlett Packard  HP 7475A Etching of pattern to the coated coverslip. Mentioned in Section 1.2.5
Electrodes wires  A-M Systems, Carlsborg WA 767000 Electric stimulation of neuronal cultures. Mentioned in Section 2.1    2.2    2.3   2.4.5
Signal generator BKPrecision 4079 Shaping of the electric signal. Mentioned in Section 2.3
Amplifier Homemade Voltage amplification of the signal from the signal generator to the electrodes. Mentioned in Section 2.3
Power supply Matrix  MPS-3005 LK-3  Power supply to the sputtering machine. Mentioned in Section 1.2.2.3
Transcranial magnetic stimulation Magstim, Spring Gardens, UK Rapid 2 Magnetic stimulation of neuronal culture. Mentioned in Section 3.1   3.3   3.4
Epoxy Cognis Versamid 140 Casting of homemade coils. Mentioned in Section 3.4
Epoxy Shell EPON 815  Casting of homemade coils. Mentioned in Section 3.4
Platinum wires 0.005'' thick; A-M Systems,   Carlsborg WA  767000 Electric stimulation of neuronal cultures. Mentioned in Section 2.1
Circular magnetic coil Homemade Magnetic stimulation of neuronal culture. Mentioned in Section 3.3
WaveXpress SW B&K Precision  Waveform editing software. Mentioned in Section 2.1.32
Xion Ultra 897 Andor Sensitive EMCCD camera. Mentioned in Section 2.4.4

Referências

  1. Nagarajan, S. S., Durand, D. M., Warman, E. N. Effects of induced electric fields on finite neuronal structures: a simulation study. IEEE Trans Biomed Eng. 40 (11), 1175-1188 (1993).
  2. Nowak, L. G., Bullier, J. Axons but not cell bodies, are activated by electrical stimulation in cortical gray matter. II. Evidence from selective inactivation of cell bodies and axon initial segments. Exp Brain Res. 118 (4), 489-500 (1998).
  3. Ranck, J. B. Which elements are excited in electrical stimulation of mammalian central nervous system: a review. Brain Res. 98 (3), 417-440 (1975).
  4. Rattay, F. The basic mechanism for the electrical stimulation of the nervous system. Neurociência. 89 (2), 335-346 (1999).
  5. Stern, S., Agudelo-Toro, A., Rotem, A., Moses, E., Neef, A. Chronaxie Measurements in Patterned Neuronal Cultures from Rat Hippocampus. PLoS One. 10 (7), e0132577 (2015).
  6. Brunelin, J., et al. Examining transcranial direct-current stimulation (tDCS) as a treatment for hallucinations in schizophrenia. Am J Psychiatry. 169 (7), 719-724 (2012).
  7. Cruccu, G., et al. EFNS guidelines on neurostimulation therapy for neuropathic pain. Eur J Neurol. 14 (9), 952-970 (2007).
  8. Kennedy, S. H., et al. Canadian Network for Mood and Anxiety Treatments (CANMAT) Clinical guidelines for the management of major depressive disorder in adults. IV. Neurostimulation therapies. J Affect Disord. 117, S44-S53 (2009).
  9. Minzenberg, M. J., Carter, C. S. Developing treatments for impaired cognition in schizophrenia. Trends Cogn Sci. 16 (1), 35-42 (2012).
  10. Vaidya, N. A., Mahableshwarkar, A. R., Shahid, R. Continuation and maintenance ECT in treatment-resistant bipolar disorder. J ECT. 19 (1), 10-16 (2003).
  11. Bartlett, W. P., Banker, G. A. An electron microscopic study of the development of axons and dendrites by hippocampal neurons in culture. II. Synaptic relationships. J Neurosci. 4 (8), 1954-1965 (1984).
  12. Bartlett, W. P., Banker, G. A. An electron microscopic study of the development of axons and dendrites by hippocampal neurons in culture. I. Cells which develop without intercellular contacts. J Neurosci. 4 (8), 1944-1953 (1984).
  13. Beggs, J. M., Plenz, D. Neuronal avalanches in neocortical circuits. J Neurosci. 23 (35), 11167-11177 (2003).
  14. Breskin, I., Soriano, J., Moses, E., Tlusty, T. Percolation in living neural networks. Phys Rev Lett. 97 (18), (2006).
  15. Feinerman, O., Moses, E. Transport of information along unidimensional layered networks of dissociated hippocampal neurons and implications for rate coding. J Neurosci. 26 (17), 4526-4534 (2006).
  16. Soriano, J., Rodriguez Martinez, ., Tlusty, M., T, E., Moses, Development of input connections in neural cultures. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (37), 13758-13763 (2008).
  17. Deisseroth, K. Optogenetics. Nat Methods. 8 (1), 26-29 (2011).
  18. Fenno, L., Yizhar, O., Deisseroth, K. The development and application of optogenetics. Annu Rev Neurosci. 34, 389-412 (2011).
  19. Williams, S. C., Deisseroth, K. Optogenetics. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (41), 16287 (2013).
  20. Rotem, A., Moses, E. Magnetic stimulation of curved nerves. IEEE Trans Biomed Eng. 53 (3), 414-420 (2006).
  21. Rotem, A., Moses, E. Magnetic stimulation of one-dimensional neuronal cultures. Biophys J. 94 (12), 5065-5078 (2008).
  22. Feinerman, O., Moses, E. A picoliter ‘fountain-pen’ using co-axial dual pipettes. J Neurosci Methods. 127 (1), 75-84 (2003).
  23. Feinerman, O., Segal, M., Moses, E. Signal propagation along unidimensional neuronal networks. J Neurophysiol. 94 (5), 3406-3416 (2005).
  24. Papa, M., Bundman, M. C., Greenberger, V., Segal, M. Morphological analysis of dendritic spine development in primary cultures of hippocampal neurons. J Neurosci. 15 (1 Pt 1), 1-11 (1995).
  25. Bikson, M., et al. Effects of uniform extracellular DC electric fields on excitability in rat hippocampal slices in vitro. J Physiol. 557 (1), 175-190 (2004).
  26. Rahman, A., et al. Cellular effects of acute direct current stimulation: somatic and synaptic terminal effects. J Physiol. 591 (10), 2563-2578 (2013).
  27. Stern, S., Segal, M., Moses, E. Involvement of Potassium and Cation Channels in Hippocampal Abnormalities of Embryonic Ts65Dn and Tc1 Trisomic Mice. EBioMedicine. 2 (9), 1048-1062 (2015).
  28. Rotem, A., et al. Solving the orientation specific constraints in transcranial magnetic stimulation by rotating fields. PLoS One. 9 (2), e86794 (2014).
  29. Feinerman, O., Rotem, A., Moses, E. Reliable neuronal logic devices from patterned hippocampal cultures. Nat Phys. 4 (12), 967-973 (2008).
  30. Kleinfeld, D., Kahler, K. H., Hockberger, P. E. Controlled outgrowth of dissociated neurons on patterned substrates. J Neurosci. 8 (11), 4098-4120 (1988).
  31. Bugnicourt, G., Brocard, J., Nicolas, A., Villard, C. Nanoscale surface topography reshapes neuronal growth in culture. Langmuir. 30 (15), 4441-4449 (2014).
  32. Roth, S., et al. Neuronal architectures with axo-dendritic polarity above silicon nanowires. Small. 8 (5), 671-675 (2012).
  33. Peyrin, J. M., et al. Axon diodes for the reconstruction of oriented neuronal networks in microfluidic chambers. Lab Chip. 11 (21), 3663-3673 (2011).
  34. Renault, R., et al. Combining microfluidics, optogenetics and calcium imaging to study neuronal communication in vitro. PLoS One. 10 (4), e0120680 (2015).
  35. Roth, B. J., Basser, P. J. A model of the stimulation of a nerve fiber by electromagnetic induction. IEEE Trans Biomed Eng. 37 (6), 588-597 (1990).
check_url/pt/54357?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Stern, S., Rotem, A., Burnishev, Y., Weinreb, E., Moses, E. External Excitation of Neurons Using Electric and Magnetic Fields in One- and Two-dimensional Cultures. J. Vis. Exp. (123), e54357, doi:10.3791/54357 (2017).

View Video