Summary

Genteknik av en okonventionell Jäst för förnybart biobränsle och biokemisk produktion

Published: September 20, 2016
doi:

Summary

We herein report methods on the molecular genetic manipulation of the Yarrowia lipolytica Po1g strain for improved gene deletion efficiency. The resulting engineered Y. lipolytica strains have potential applications in biofuel and biochemical production.

Abstract

Yarrowia lipolytica är en icke-patogen, dimorfa och strikt aeroba jästarter. På grund av dess utmärkande fysiologiska funktioner och metaboliska egenskaper, är denna okonventionella jäst inte bara en bra modell för att studera den grundläggande karaktären av svamp differentiering men är också en lovande mikrobiell plattform för biokemisk produktion och olika biotekniska tillämpningar, som kräver omfattande genetiska manipulationer. Dock genetiska manipulationer av Y. lipolytica har varit begränsad på grund av avsaknaden av en effektiv och stabil genetisk transformation system samt mycket höga hastigheter av icke-homolog rekombination som kan huvudsakligen hänföras till Ku70 genen. Här rapporterar vi en enkel och snabb protokoll för effektiv genetisk transformation och gendeletion i Y. lipolytica Po1g. Först, ett protokoll för effektiv omvandling av exogent DNA i Y. lipolytica Po1g bildades. Second, för att uppnå den förbättrade dubbel crossover homolog rekombination hastighet för ytterligare deletion av målgener ades Ku70 genen raderas genom transformering av en avbrottskassett som bär 1 kb homologiarmar. För det tredje, för att visa den förbättrade gendeletion effektivitet efter strykningen av Ku70 genen, raderade vi individuellt 11 mål gener som kodar alkoholdehydrogenas och alkoholoxidas med användning av samma förfaranden på Ku70 knockout plattform stam. Det observerades att hastigheten för exakt homolog rekombination ökade avsevärt från mindre än 0,5% för radering av Ku70-genen i Po1g till 33% -71% för den enda gendeletion av de 11 mål gener i Po1g Ku70 Δ. En replikativ plasmid som bär den hygromycin B-resistensmarkören och Cre / LoxP-systemet konstruerades, och selektionsmarkörgen i jästen knockout stammar var så småningom avlägsnas genom uttryck av Cre-rekombinas för att underlätta flera omgångar av targeted genetiska manipulationer. De resulterande enda gen deletionsmutanter har potentiella tillämpningar inom biobränsle och biokemisk produktion.

Introduction

Till skillnad från Saccharomyces cerevisiae, Yarrowia lipolytica, en okonventionell jäst kan växa i form av jäst eller mycel som svar på förändringar i miljöförhållanden 1,2. Således kan detta dimorphic jäst användas som en bra modell för att studera svamp differentiering, morfogenes och taxonomi 3,4,5. Det är allmänt betraktas som en säker (GRAS) jästarter, som ofta används för att tillverka en mängd olika livsmedelstillsatser som organiska syror, polyalkoholer, aromföreningar, emulgeringsmedel och ytaktiva 6,7,8,9. Det är en obligat aerob och en välkänd olje jäst kan naturligtvis ackumulera lipider vid höga halter, det vill säga upp till 70% av celltorrvikt 10. Det kan också utnyttja ett brett spektrum av kolkällor för tillväxt, inklusive olika typer av rester i avfallsresurser som näringsämnen 11,12,13. Alla dessa unika funktioner gör Y. lipolytica mycket attraktivt förolika biotekniska tillämpningar.

Även om hela genomsekvens av Y. lipolytica har publicerats 14,15, är genetisk manipulation av denna okonventionella jäst mer komplex än andra jästarter. För det första är transformation av denna jästarter mycket mindre effektiv på grund av frånvaron av en stabil och effektiv genetisk transformation systemet 16,17. För det andra är arbetskrävande genomisk integrering av linjära expressionskassetter som vanligen används för uttryck av gener av intresse som ingen naturlig episomala plasmid systemet har hittats i denna jäst 18. Tredje generation av genetiska knock-outs och knock-ins är begränsade eftersom genmålsökning effektivitet via exakt homolog rekombination i denna jäst är låg och de flesta integrationshändelser sker genom icke-homolog sammanfogning (NHEJ) 19.

I denna studie rapporterar vi ett optimerat transformationsprotokoll för Y. lipolytica </em> Po1g-stam, som är lätt, snabb, effektiv och reproducerbar. För att öka frekvensen av exakt homolog rekombination, raderade vi Ku70-genen, som kodar för ett nyckelenzym i den NHEJ-vägen. Genom att använda den optimerade transformationsprotokoll och omvandla en linjär knockout kassett som innehåller flankerande homologiregioner av 1 kb, den Ku70 genen hos Y. lipolytica Po1g har tagits bort. Robust av denna gen radering metodik sedan visat genom att rikta alkoholdehydrogenas och alkoholoxidas gener i Po1g Ku70 Δ stam. Det observerades att den Ku70 deletionsstam uppvisade en betydligt högre verkningsgrad av homolog rekombination förmedlad genmålsökning än den för vildtyp Po1g stam. Dessutom genomfördes ett replika Cre expression plasmid som bär den hygromycin B-resistensmarkören tillverkat för att utföra markör räddning. Markören rädda underlättar flera omgångar av riktad genmodifiering i the erhållna genen deletionsmutanter. Förutom gendeletion, kan våra protokoll för genetisk transformation och gendeletion beskrivs här tillämpas för att infoga gener till specifika loci, och att införa platsspecifika mutationer i Y. lipolytica genomet.

Protocol

1. Generering av Y. lipolytica Ku70 deletionsstam Konstruktion av avbrottskassett Obs: Se tabell 1 för alla primers som används i polymeraskedjereaktion (PCR) förstärkningar. Konstruktions primrar 20 för att PCR-amplifiera LEU2-expressionskassett (se tabell 1) från en Y. lipolytica expressionsvektor och införa loxP-ställen i 5'- och 3'-ändarna av LEU2-kassett med en långsträckt främre …

Representative Results

Den linjäriserade Y. lipolytica expressionsvektor infördes i pBR dockningsplattform i genomet hos Y. lipolytica Po1g stammen genom att utföra en enda crossover rekombination 27. Genom att använda snabb kemisk omvandling förfarande som fastställs i denna studie, den linjäriserade Y. lipolytica uttryckningsvektor framgångsrikt transformeras in i vildtyp Po1g töjning vid en transformationseffektivitet av> 100 cfu / | ag DNA. En knockout kass…

Discussion

Vårt mål för denna studie är att möjliggöra snabb och effektiv generering av riktade gen knockouts i Y. lipolytica Po1g stam. Flera faktorer måste åtgärdas för att uppnå detta. För det första är en hög transformationseffektivitet krävs. Således, en effektiv och bekväm kemisk omvandling protokoll för Y. lipolytica Po1g stam beskrivs i denna studie. Användningen av PEG-4000 är en avgörande faktor för den lyckade omvandlingen av denna stam. Inga transformanter erhölls för…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar finansieringen stöd från National Environment Agency of Singapore (ETRP 1.201.102), konkurrens Research Program av National Research Foundation i Singapore (NRF-CRP5-2009-03), byrån för vetenskap, teknologi och forskning i Singapore ( 1324004108), Global R & D Project Program, ministeriet för kunskapsekonomin, Republiken Korea (N0000677), Reduction Agency Defense Threat (DTRA, HDTRA1-13-1-0037) och Syntetisk biologi initiativ National University of Singapore ( DPRT / 943/09/14).

Materials

Reagent/Material
Oligonucleotide primers Integrated DNA Technologies 25 nmole  DNA oligos
Y. lipolytica strain Po1g Yeastern Biotech leucine auxotrophic derivative of the wild-type strain W29 (ATCC 20460)
Vector pYLEX1 Yeastern Biotech FYY203-5MG Y. lipolytica expression vector 
E. coli TOP10  Invitrogen For cloning and propagation of plasmids
pGEM-T vector  Promega A3600 TA cloning vector
QIAprep Spin Miniprep Kit Qiagen 27106 For plasmid isolation
Wizard SV Gel and
PCR Clean-Up System
Promega A9282 Extract DNA fragments from agarose gels
and purify PCR products from an amplification reaction
The iProof high-fidelity
DNA polymerase
Bio-Rad 172-5302 High-fidelity DNA polymerase
BamHI  New England Biolabs R0136S Restriction enzyme
BglII  New England Biolabs R0144L Restriction enzyme
KpnI New England Biolabs R0142S Restriction enzyme
NdeI  New England Biolabs R0111S Restriction enzyme
NotI New England Biolabs R0189L Restriction enzyme
PmlI New England Biolabs R0532S Restriction enzyme
PstI  New England Biolabs R0140S Restriction enzyme
SacII New England Biolabs R0157S Restriction enzyme
SalI New England Biolabs R0138S Restriction enzyme
XhoI New England Biolabs R0146L Restriction enzyme
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202L
Taq DNA polymerase  Bio-Rad M0267L
Ampicillin Gibco-Life Technologies 11593-027 Antibiotics
Hygromycin B PAA P21-014 Antibiotics
GeneRuler 1 kb DNA ladder Thermo Scientific SM0312 1 kb DNA ladder
PEG4000 Sigma 95904-F
Tris Promega H5135
EDTA Bio-Rad 161-0729
Salmon Sperm DNA Invitrogen 15-632-011
Lithium Acetate Sigma
Acetic acid Sigma
Glass beads (425-600 µm) Sigma G8772
RNAse A Thermo Scientific EN0531
DNA Loading Dye Thermo Scientific R0611
Bacto Yeast Extract BD 212750
Bacto Peptone BD 211677
D-Glucose 1st Base BIO-1101
YNB without amino acids Sigma Y0626
DO Supplement-Leu Clontech 630414
Glycerol Sigma G5516
Difco LB Broth BD 244620
Difco LB Agar BD 244520
Bacto Agar BD 214010
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
PCR machine Biorad T100 Thermal Cycler
Water bath Memmert WNB 14
Stationary/Shaking Incubator Yihder LM-570RD
Thermo-shaker Allsheng MS-100
Micro centrifuge Eppendorf 5424R
Centrifuge Eppendorf 5810R
Spectrophotometer Eppendorf  BioPhotometer plus
Gel imager GE Amersham Imager 600

Referências

  1. Jiménez-Bremont, J. F., Rodrìguez-Hernández, A. A., Rodrìguez-Kessler, M., J, R. u. i. z. -. H. e. r. r. e. r. a. . Development and dimorphism of the yeast Yarrowia lipolytica. Dimorphic fungi: Their importance as models for differentiation and fungal pathogenesis. , 58-66 (2012).
  2. Coelho, M., Amaral, P., Belo, I., Méndez-Vilas, A. . Yarrowia lipolytica: an industrial workhorse. Current research, technology and education topics in applied microbiology and microbial biotechnology. , 930-940 (2010).
  3. Martinez-Vazquez, A., et al. Identification of the transcription factor Znc1p, which regulates the yeast-to-hypha transition in the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica. Plos One. 8 (6), e66790 (2013).
  4. Richard, M., Quijano, R. R., Bezzate, S., Bordon-Pallier, F., Gaillardin, C. Tagging morphogenetic genes by insertional mutagenesis in the yeast Yarrowia lipolytica. J. Bacteriol. 183 (10), 3098-3107 (2001).
  5. Flores, C. L., Martìnez-Costa, O. H., Sánchez, V., Gancedo, C., Aragòn, J. J. The dimorphic yeast Yarrowia lipolytica possesses an atypical phosphofructokinase: characterization of the enzyme and its encoding gene. Microbiology. 151 (5), 1465-1474 (2005).
  6. Domìnguez, &. #. 1. 9. 3. ;., et al. Non-conventional yeasts as hosts for heterologous protein production. Int. Microbiol. 1 (2), 131-142 (1998).
  7. Zinjarde, S. S. Food-related applications of Yarrowia lipolytica. Food Chem. 152, 1-10 (2014).
  8. Finogenova, T., Morgunov, I., Kamzolova, S., Chernyavskaya, O. Organic acid production by the yeast Yarrowia lipolytica: a review of prospects. Appl. Biochem. Micro+. 41 (5), 418-425 (2005).
  9. Groguenin, A., et al. Genetic engineering of the β-oxidation pathway in the yeast Yarrowia lipolytica to increase the production of aroma compounds. J. Mol. Catal. B-Enzym. 28 (2), 75-79 (2004).
  10. Meng, X., et al. Biodiesel production from oleaginous microorganisms. Renew. Energ. 34 (1), 1-5 (2009).
  11. Papanikolaou, S., Aggelis, G. Lipid production by Yarrowia lipolytica growing on industrial glycerol in a single-stage continuous culture. Bioresource Technol. 82 (1), 43-49 (2002).
  12. Tai, M., Stephanopoulos, G. Engineering the push and pull of lipid biosynthesis in oleaginous yeast Yarrowia lipolytica for biofuel production. Metab. Eng. 15, 1-9 (2013).
  13. Liu, H. H., Ji, X. J., Huang, H. Biotechnological applications of Yarrowia lipolytica: Past, present and future. Biotechnol. Adv. 33 (8), 1522-1546 (2015).
  14. Liu, L., Alper, H. S. Draft genome sequence of the oleaginous yeast Yarrowia lipolytica PO1f, a commonly used metabolic engineering host. Genome Announc. 2 (4), e00652-e00614 (2014).
  15. Dujon, B., et al. Genome evolution in yeasts. Nature. 430 (6995), 35-44 (2004).
  16. Chen, D. C., Beckerich, J. M., Gaillardin, C. One-step transformation of the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica. Appl. Microbial. Biotechnol. 48 (2), 232-235 (1997).
  17. Wang, J. H., Hung, W., Tsai, S. H. High efficiency transformation by electroporation of Yarrowia lipolytica. J. Microbiol. 49 (3), 469-472 (2011).
  18. Matsuoka, M., et al. Analysis of regions essential for the function of chromosomal replicator sequences from Yarrowia lipolytica. Mol. Gen. Genet. 237 (3), 327-333 (1993).
  19. Kretzschmar, A., et al. Increased homologous integration frequency in Yarrowia lipolytica strains defective in non-homologous end-joining. Curr. Genet. 59 (1-2), 63-72 (2013).
  20. Lorenz, T. C. Polymerase Chain Reaction: Basic Protocol Plus Troubleshooting and Optimization Strategies. J. Vis. Exp. (63), e3998 (2012).
  21. Kobs, G. Cloning blunt-end DNA fragments into the pGEM-T Vector Systems. Promega Notes. 62, 15-18 (1997).
  22. Sanders, E. R. Aseptic laboratory techniques: plating methods. J. Vis. Exp. (63), e3064 (2012).
  23. Hegemann, J. H., Heick, S. B. Delete and repeat: a comprehensive toolkit for sequential gene knockout in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Methods Mol. Biol. 765, 189-206 (2011).
  24. Yamane, T., Sakai, H., Nagahama, K., Ogawa, T., Matsuoka, M. Dissection of centromeric DNA from yeast Yarrowia lipolytica and identification of protein-binding site required for plasmid transmission. J. Biosci. Bioeng. 105 (6), 571-578 (2008).
  25. McGinnis, S., Madden, T. L. BLAST: at the core of a powerful and diverse set of sequence analysis tools. Nucleic Acids Res. 32 ((Web Server issue)), W20-W25 (2004).
  26. Madzak, C., Tréton, B., Blanchin-Roland, S. Strong hybrid promoters and integrative expression/secretion vectors for quasi-constitutive expression of heterologous proteins in the yeast Yarrowia lipolytica. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2 (2), 207-216 (2000).
  27. Nicaud, J. M., Le Clainche, A., Le Dall, M. T., Wang, H., Gaillardin, C. Yarrowia lipolytica, a yeast model for the genetic studies of hydroxy fatty acids biotransformation into lactones. J. Mol. Catal. B-Enzym. 5 (1), 175-181 (1998).
check_url/pt/54371?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Yu, A., Pratomo, N., Ng, T., Ling, H., Cho, H., Leong, S. S. J., Chang, M. W. Genetic Engineering of an Unconventional Yeast for Renewable Biofuel and Biochemical Production. J. Vis. Exp. (115), e54371, doi:10.3791/54371 (2016).

View Video