Summary

Murine flexor sene skade og reparer Surgery

Published: September 19, 2016
doi:

Summary

Flexor sener i hånden er ofte skadet, noe som fører til nedsatt håndfunksjon. Imidlertid er det arr-vev healing respons ikke godt karakterisert. En murine modell av flexor sene healing er vist her. Denne modellen kan øke forståelsen av helbredelsesprosessen og vurdere terapeutiske tilnærminger for å forbedre helbredelse.

Abstract

Sene forbinder muskel-skjelettlidelser og bein, tilrettelegging bevegelse nesten hele kroppen. I hånden, flexor sener (FTS) mulig fleksjon av fingre og generell håndfunksjon. Skader i FTS er vanlig, og tilfredsstillende healing er ofte svekket på grunn av overflødig arrvev og sammenvoksninger mellom sene og omkringliggende vev. Men lite er kjent om de molekylære og cellulære komponenter i FT reparasjon. For dette formål er en murin modell av FT reparasjon som sammenfatter mange aspekter av helbredelse hos mennesker, inkludert svekket spekter av bevegelser og redusert mekaniske egenskaper, har blitt utviklet og tidligere beskrevet. Her en grundig demonstrasjon av denne kirurgiske prosedyren er gitt, innebærer tran og påfølgende reparasjon av flexor digitorum longus (FDL) sene i murine bakfot. Denne teknikken kan brukes til å gjennomføre avstamning analyse av forskjellige celletyper, vurdere virkningene av genet gevinst eller tap-av-funksjon, og for å teste effcacy av farmakologiske intervensjoner i helbredelsesprosessen. Imidlertid er det to primære begrensninger i denne modellen: i) FDL sene i midtpartiet av det murine bakpote, hvor det transeksjon og reparasjon forekommer, ikke er omgitt av en kappe synovial. Derfor er denne modellen tar ikke hensyn til det potensielle bidrag av kappen til arrdannelse prosessen. ii) For å beskytte integriteten av reparasjonsstedet, er FT utgitt på myotendinous krysset, redusere de mekaniske kreftene i senen, trolig bidra til økt arrdannelse. Isolering av tilstrekkelige celler fra granulasjonsvev av FT under tilhelingsprosessen for flowcytometrisk analyse har vist seg å være vanskelig; cytologi sentrifugering for å konsentrere disse cellene er en alternativ metode som brukes, og gir mulighet for generering av cellepreparater som immunofluorescerende merking kan utføres. Med denne metoden blir kvantifisering av celler eller proteiner av interesse under FT helbredelse mulig.

Introduction

Flexor sener i hånden arbeidet i konsert med flexor musklene i underarmen og digitale hylser for å muliggjøre fleksjon av sifrene og fatte funksjon av hånden. Flexor sener løpe langs håndflate-siden av hånden; denne relativt overfladisk stedet resulterer ofte i skader på flexor sener under traumer til hånden. Sener helbrede gjennom et arrvev respons i stedet for regenerering av normalt senevev en. Selv om dette arrvev gir kontinuitet til sene, er funksjonen dramatisk redusert i forhold til sunn sene. Sene-arrvev kompositter er preget av svekket mekaniske egenskaper 1, gjengi de reparerte sener mer sannsynlig til å sprekke. I tillegg mangler arrvev organiseringen av det native sene kollagen fiberstruktur, noe som resulterer i en økning i størrelse sene og bulk. Gitt de anatomiske begrensninger av den sene-skjede enhet, selv en beskjeden økning i sene størrelse kan drastisk rødUCE den glidende funksjon i sene, og derfor sifret omfanget av bevegelse og håndfunksjon.

Før 1960-tallet skader flexor sener, spesielt de i sone II i hånden, ble ikke rutinemessig reparert på grunn av alvorlige komplikasjoner i healing som oppsto med disse reparasjonene 2. Dette området av hånden ble referert til som "ingenmannsland" 3. Men forbedringer i kirurgiske teknikker, sutur mønstre og fysioterapi rehabilitering protokoller har dramatisk forbedret utfall av flexor sene reparasjoner 2. Til tross for disse fremskrittene, opptil 40% av reparasjoner resultere i tilstrekkelig vedheft formasjon for å hindre håndfunksjon 4. Derfor er en biologisk metode som kreves for å forbedre helbredelsen. Dessverre, svært lite er kjent om den sene helbredelsesprosessen på cellulært og molekylært nivå. Således var målet å utvikle en murin modell som kan brukes for å forbedre den grunnleggende understanding av de cellulære og molekylære komponenter av flexor sene helbredelse og arrdannelse respons, som et middel til å identifisere nye terapeutiske mål å bedre healing.

Større dyremodeller har vært medvirkende i å fremme forståelse av flexor sene helbredelsesprosessen. Canine og kaninstudier har vist både den indre og ytre helbredende evne av flexor sener 5,6, betydningen av tidlig kontrollert passiv bevegelse i å minimere adhesjonsdannelse i forhold til immobilisering 7, så vel som virkningene av forskjellige sutur mønster på helbredelsesprosessen 8 , 9. I tillegg har hundemodell vært nyttig ved testing av translasjonelle vev-tekniske metoder for å forbedre helbredelsen 10. Imidlertid er det flere viktige fordeler i å bruke en murin modell i forhold til et stort dyremodell, inkludert den relative kostnad, tilgjengelighet av murine spesifikke reagenser, og den enkle å generere globalt Knock-outs eller vevsspesifikke sletting / overekspresjon konstruksjoner. Videre de funksjonelle likheter mellom mennesker og mus med hensyn til flexor sener 11 indikerer potensielle nytten i å utvikle en murine modell.

Utvikling av en murine modell av flexor sene tran og reparasjon ligner mange aspekter av klinisk helbredelse, inkludert dannelsen av rikelig arrvev og nedskrevne mekaniske egenskaper. Modellen som er beskrevet her er ikke en ekte gjentagelse av klinisk praksis på grunn av tran av FDL på myotendinous krysset for å beskytte reparasjonsstedet. Videre gjør denne modellen ikke hensyn til bidraget av synovial-celler kappe for den helbredende respons, da det ikke er leddkappe som dekker midtpartiet av den sene hvor reparasjonen foregår. Til tross for disse begrensningene, har denne modellen fordelen av å generere omfanget av bevegelse begrensende voksninger, som ennå ikke er demonstrert i murine modeller at flere closely tilnærmet klinisk scenario. Denne modellen har blitt brukt til å vurdere knock-out musemodeller 12,13, og for å teste ulike farmakologiske tilnærminger for å forbedre helbredelse 14-17. Histologisk analyse av denne modellen, ved hjelp av immunhistokjemi og in situ hybridisering, kan gi viktig innsikt i til lokalisering av viktige gener og proteiner under healing. Imidlertid gir histologi bare et tverrsnitts romlige analyse og ikke tillater kvantifisering gjennom hele vev. Flowcytometri representerer en mer kvantitativ tilnærming, men bare et svært begrenset antall celler kan bli isolert fra den helbredende sene vev i musemodellen, og dette tall er ytterligere redusert i løpet av fikseringen, permeabiliseringen, og vasketrinn. Tar dette på kontoen, flowcytometri blir en unfeasible tilnærming på grunn av antall dyr som ville være nødvendig. En alternativ metode er nødvendig for å bevare de fleste av denne lille cellepopulasjonen i rekkefølgefor ytterligere å karakterisere den helbredende miljø. Metoden som brukes for å oppnå dette, er vist her, involverer konsentrasjon av de isolerte celler via cytologi sentrifugering på en glass-slide, etterfulgt av immunocytokjemi. I den foreliggende undersøkelse EDU (5-etynyl-2'deoxyuridine, en tymidinanalog) inkorporering og påfølgende merking ble anvendt for å bestemme den relative proliferativ tilstand av celler ved helbredelse området. Denne tilnærmingen kan brukes for å teste effektiviteten av farmakologiske behandlinger på celleformering, gene knock-out eller overekspresjon, eller for å identifisere og kvantifisere forskjellige cellepopulasjoner.

Protocol

The University Committee on Animal Forskning ved University of Rochester godkjent alle dyreforsøk. Ti 12 uker gamle hunn C57BL / 6J mus ble anvendt. 1. Utarbeidelse av dyr for flexor sene Surgery (~ 15 min) Autoklaver kirurgiske instrumenter til å sterilisere, slitasje sterile hansker hele, og opprettholde et sterilt operasjonsfelt. Bedøve mus via intraperitoneal injeksjon (ip) med et volum av ketamin (80 mg / kg) og xylazin (10 mg / kg), tilsvarende kroppsvekt. Bekre…

Representative Results

Flexor digitorum longus (FDL) muskel, som ligger i leggen, virker til å bøye sifrene i mus hind labben via bøyesenen (markert i blått i figur 1A, og vist histologisk i figur 2A), som går proksimalt fra myotendinous krysset og ender i de distale falanger. I denne modellen av flexor sene helbredelse, er FDL sene transektert og reparert ved midten av foten, proksimalt til forgreningen i til sifrene i bakpoten (røde piler, figur 1A). F…

Discussion

Den kirurgiske prosedyre for en murin modell av fullstendig transeksjon og reparasjon av flexor digitorum longus sene er presentert i denne studien. I tillegg er en ny anvendelse for å konsentrere små cellepopulasjoner med cytologi sentrifuge er vist, slik at for kvantitativ immuncytokjemisk analyse av det cellulære miljø i løpet av flexor sene helbredelse. Denne modellen av bøye sene reparasjon viser en reproduserbar helbredende respons, som kan brukes til å vurdere endringer i helbredelsesprosessen ved bruk av …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble delvis støttet av American Society for Surgery av hånd Pilot Award og NIH / NIAMS 1K01AR068386-01 (til AEL) og NIAMS / NIH P30AR061307.

Materials

Surgical preparation
C57BL/6J mice  Jackson Laboratories 000664
Ketamine Hospira NDC# 0409-2051-05
Xylazine Lloyd Inc. NDC# 61311-482-10
Buprenorphine Par Pharmaceutical Inc. NDC# 42023-179-10
0.9% sodium chloride irrigation Hospira NDC# 0409-6138-03 For preparation of ketamine/xylazine and buprenorphine solutions
1ml syringe BD 309659
30G needle BD 305106
Povidone-Iodine solution Aplicare 82-226
70% ethanol
Puralube vet opthalmic ointment Dechra Veterinary Products NDC# 17033-211-38
Name Company Catalog Number Comments
Surgical tools
Portable balance 200g Ohaus SP202
Spring scissors Fine Science Tools 15124-12
Dumont #5 forceps Fine Science Tools 11251-30
Needle holders Fine Science Tools 91201-13
Micro spring scissors Fine Science Tools 15003-08
Micro needle holders Fine Science Tools 12061-02
5-0 nylon sutures Ethicon 668G
8-0 microsurgery nylon sutures Ethicon 2808G
Lab-Line histology slide warmer Barnstead International 26025
Name Company Catalog Number Comments
Cytospin method
Collagenase Type I, lyophilized Life Technologies  1700-017
Bovine Serum Albumin Cell Signaling Technologies 9998S
1X PBS Thermo Fisher 10010-023
Cytology funnels Fisher HealthCare 10-354
HistoBond+ microscope slides VWR 16005-110
Cytospin 2 centrifuge Shandon SH-CYTO2
Name Company Catalog Number Comments
Immunocytochemistry
Slide staining tray with black lid IHC World M920-2
Click-iT Plus EdU Imaging Kit Life Technologies  C10639 Includes EdU and  Hoeschst 33342
Immedge hydrophobic barrier pen Vector Laboratories H-4000
ProLong Diamond mounting medium Thermo Fisher P36970
Glass coverslips 24x50mm #1.5
Clear nail polish

Referências

  1. Lin, T. Biomechanics of tendon inury and repair. J Biomech. 37, 865-877 (2004).
  2. Strickland, J. W. Development of flexor tendon surgery: twenty-five years of progress. J Hand Surg [Am]. 25, 214-235 (2000).
  3. Bunnell, S. Repair of tendons in the fingers and description of two new instruments. Surg Gynecol Obstet. 26, 103-110 (1918).
  4. Aydin, A., et al. Single-stage flexor tendoplasty in the treatment of flexor tendon injuries. Acta Orthop Traumatol Turc. 38, 54-59 (2004).
  5. Gelberman, R. H., Steinberg, D., Amiel, D., Akeson, W. Fibroblast chemotaxis after tendon repair. J Hand Surg Am. 16, 686-693 (1991).
  6. Lundborg, G., Rank, F. Experimental intrinsic healing of flexor tendons based upon synovial fluid nutrition. J Hand Surg Am. 3, 21-31 (1978).
  7. Aoki, M., Kubota, H., Pruitt, D. L., Manske, P. R. Biomechanical and histologic characteristics of canine flexor tendon repair using early postoperative mobilization. J Hand Surg Am. 22, 107-114 (1997).
  8. Kim, H. M., et al. Technical and biological modifications for enhanced flexor tendon repair. J Hand Surg Am. 35, 1031-1037 (2010).
  9. Aoki, M., Manske, P. R., Pruitt, D. L., Kubota, H., Larson, B. J. Work of flexion after flexor tendon repair according to the placement of sutures. Clin Orthop Relat Res. , 205-210 (1995).
  10. Zhao, C., et al. Award for Outstanding Orthopaedic Research: Engineering flexor tendon repair with lubricant, cells, and cytokines in a canine model. Clin Orthop Relat Res. 472, 2569-2578 (2014).
  11. Wong, J., Bennett, W., Ferguson, M. W., McGrouther, D. A. Microscopic and histological examination of the mouse hindpaw digit and flexor tendon arrangement with 3D reconstruction. J Anat. 209, 533-545 (2006).
  12. Katzel, E. B., et al. Impact of Smad3 loss of function on scarring and adhesion formation during tendon healing. J. Orthop. Res. 29, 684-693 (2011).
  13. Loiselle, A. E., et al. Bone marrow-derived matrix metalloproteinase-9 is associated with fibrous adhesion formation after murine flexor tendon injury. PloS one. 7, e40602 (2012).
  14. Lee, D. J., et al. Parathyroid hormone 1-34 enhances extracellular matrix deposition and organization during flexor tendon repair. J Orthop Res. 33, 17-24 (2015).
  15. Geary, M. B., et al. Systemic EP4 Inhibition Increases Adhesion Formation in a Murine Model of Flexor Tendon Repair. PloS one. 10, e0136351 (2015).
  16. Loiselle, A. E., et al. Development of antisense oligonucleotide (ASO) technology against Tgf-beta signaling to prevent scarring during flexor tendon repair. J Orthop Res. 33, 859-866 (2015).
  17. Orner, C. A., Geary, M. B., Hammert, W. C., O’Keefe, R. J., Loiselle, A. E. Low-dose and short-duration Matrix Metalloproteinase 9 Inhibition does not affect adhesion formation during murine flexor tendon healing. Plast Reconstr Surg. , (2016).
  18. Loiselle, A. E., et al. Remodeling of murine intrasynovial tendon adhesions following injury: MMP and neotendon gene expression. J Orthop Res. 27, 833-840 (2009).
  19. Tsubone, T., et al. Effect of TGF-beta inducible early gene deficiency on flexor tendon healing. J Orthop Res. 24, 569-575 (2006).
  20. Beason, D. P., Kuntz, A. F., Hsu, J. E., Miller, K. S., Soslowsky, L. J. Development and evaluation of multiple tendon injury models in the mouse. J Biomech. 45, 1550-1553 (2012).
  21. David, M. A., et al. Tendon repair is compromised in a high fat diet-induced mouse model of obesity and type 2 diabetes. PloS one. 9, e91234 (2014).
  22. Wong, J. K., et al. The cellular biology of flexor tendon adhesion formation: an old problem in a new paradigm. Am J Pathol. 175, 1938-1951 (2009).
check_url/pt/54433?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ackerman, J. E., Loiselle, A. E. Murine Flexor Tendon Injury and Repair Surgery. J. Vis. Exp. (115), e54433, doi:10.3791/54433 (2016).

View Video