Summary

Induced pluripotent stamcelle Generation fra Blood Cells hjelp Sendai Virus og sentrifugering

Published: December 21, 2016
doi:

Summary

We propose a protocol for reprogramming peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) into induced pluripotent stem cells (iPSCs). By plating the transduced blood cells onto matrix-coated plates with centrifugation, iPSCs are successfully induced from floating cells. This technique suggests a simple and effective reprogramming protocol for cells such as PBMCs and CBMCs.

Abstract

Den siste utviklingen av menneskeskapte pluripotent stamceller (hiPSCs) viste at modne somatiske celler kan gå tilbake til en udifferensiert, pluripotent tilstand. Nå er omprogrammering utført med forskjellige typer av voksen somatiske celler: keratinocytter, urin celler, fibroblaster, etc. Tidlige forsøk ble vanligvis utført med dermale fibroblaster. Men dette krevde en invasiv kirurgisk prosedyre for å oppnå fibroblaster fra pasientene. Derfor suspensjonsceller, for eksempel blod og urin celler, ble ansett som ideell for omprogrammering på grunn av fordelene med å skaffe de primære celler. Her rapporterer vi en effektiv protokoll for IPSC generasjon fra perifere mononukleære blodceller (PBMC). Ved plating de omsatte PBMC serielt til en ny, matrise-belagt plate ved hjelp av sentrifugering, kan denne protokollen lett gi IPSC kolonier. Denne fremgangsmåte er også anvendelig for å navlestreng blod mononukleære celler (CBMCs). Denne studien viser en enkel og effektiv protocol for omprogrammering av PBMC og CBMCs.

Introduction

Stamceller har vært en av de mest attraktive materialer i klinisk terapi for de siste flere tiår 1. De attraktive egenskapene til stamceller er pluripotency og evnen til å fornye seg selv. I 1981 ble den første embryonale stamceller (ESCS) isolert fra mus embryo 2. Men når teknikken ble brukt til menneskelige embryo, det sto overfor flere etiske problemstillinger.

I 2006, da Dr. Yamanaka og hans team omprogrammert den første pluripotent celle fra musesomatiske celler, gjenvant stamcellefeltet sin mulighet og interesse ble taktene tre. Ved å levere flere definerte faktorer, pluripotente stamceller var vellykket "indusert" fra voksne somatiske celler, og ble dermed kåret til "indusert pluripotent stamceller (iPSCs)." I 2007 ble denne teknikken brukt til menneskeceller 4, som gir cellene med de eksakte egenskapene til ESCs men ingen av den etiske debatten. Teoretisk iPSCs kan genereres fra en hvilken som helst celletype hentet fra en hvilken som helst person eller pasient. Pasient-spesifikke iPSCs stiger som en potensiell verktøy som kan simulere sykdommen fenotyper og epigenetiske forhold til hver enkelt pasient. Ved hjelp av genet redigering eller andre metoder som kan reversere den patogene tilstand, kan pasientspesifikke iPSCs også brukes i personlig medisin 5. Videre er iPSCs mindre forbundet med immunavstøtning fordi de har den samme identitet som immun donor, slik at auto-transplantasjon mer gjennomfør 6. Derfor har iPSCs blitt den mest lovende plattformen i sykdom modellering, legemiddelscreening, og regenererende behandling. Gitt disse fordelene, forbedret protokoller som kan gi renere og høyere avkastning på minst mulig tid fra den minste celle kilden er stadig under utvikling. En viktig faktor for å finne den mest effektive protokollen for fremtidig anvendelse er den primære celletype. De fleste av de tidlige IPSC generasjon protokolonner er optimalisert for heft celler siden den originale IPSC linjer ble indusert av hud fibroblaster 4. Imidlertid isolering og fremstilling av disse cellene er arbeidskrevende. Dessuten er isolering av hudfibroblaster omfatter invasive kirurgiske inngrep som kan bli en stor brist for bredere anvendelse.

Derfor, for den videre anvendelse av iPSCs, er en celle kilde med praktisk anskaffelse nødvendig. Blod er å anse som en ideell celle kilde siden det er innhentet gjennom en ganske minimal invasiv prosedyre 7-9. I denne studien, har vi utviklet en enkel modifikasjon av protokollen generere hiPSCs fra perifere mononukleære blodceller (PBMC). Uten den vanskelige prosessen med utvidelse av en spesifikk celletype, for eksempel CD34 + celler, ble hele blodceller eller PBMC serielt sådd ut på matrix-belagte plater ved sentrifugering etter transduksjon med Sendai-virus inneholdende Yamanaka faktorer. Denne fremgangsmåten reduserer tiden som kreves forfesting av transduserte celler flytende og redusert tap av omprogrammeres celler som ikke var i stand til å feste på egenhånd.

Protocol

Etikk Uttalelse: Denne studien protokollen ble godkjent av Institutional Review Board of The Catholic University of Korea (KC12TISI0861). 1. Isolering av monocyttiske celler fra blod Isolering av monocyttiske celler (Dag -5) Få minst 10 ml friskt blod fra en blod uavgjort i en celle forberedelse tube (CPT). Overføre blodet til en ny 50-ml konisk rør og fortynne den med steril fosfatbufret saltløsning (PBS) ved en 1: 4 forhold. MERK: En høyere andel av fortynning kan bruk…

Representative Results

Denne protokollen gir en enkel metode for å omprogrammere PBMC isolert fra blod. Ved hjelp av en kombinasjon av serie plating og sentrifugering ble iPSCs vellykket generert. Med denne metoden kan iPSCs bli generert med en liten mengde av fullblodceller uten å isolere eller utvidelse av en bestemt celletype. Vi har med hell generert iPSCs fra bare 1×10 4-celler i en liten cellekulturplate. Før omprogrammering, ble…

Discussion

Siden embryonale stamceller (ESCS) viste flere mangler, ble det behov for et alternativt verktøy er nødvendig. Derfor er utviklingen av induserte pluripotente stamceller (iPSCs) av Yamanaka kom under det internasjonale søkelyset. Det har vært nesten et tiår siden Yamanaka oppdaget at pluripotency kan induseres ved å legge til bare fire gener inn voksne somatiske celler. Siden iPSCs er "indusert" fra modne somatiske celler, kan de unngå etiske problemstillinger som en gang hadde vært bekymring knyttet t…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by a grant from the Basic Science Research Program through the National Research Foundation of Korea (NRF), funded by the Ministry of Science, ICT, and Future Planning (2013R1A1A1076125).

Materials

Plasticware
100mm Dish TPP  93100
6-well Plate TPP 92006
50 mL Cornical Tube SPL 50050
15 mL Cornical Tube SPL 50015
10 mL Disposable Pipette Falcon 7551
5 mL Disposable Pipette Falcon 7543
12-well Plate TPP 92012
24-well Plate TPP 92024
PBMC Isolation Materials
DPBS Life Technologies 14190-144
Ficoll GE Healthcare 17-1440-03
StemSpan STEMCELL Technologies 9805 Blood cell media
CC110 STEMCELL Technologies 8697 Blood cell media supplement (100x)
iPSC Generation and Culture Materials
CytoTune-iPSC Sendai Reprogramming Kit Life Technologies A16518
TeSR-E8 Media STEMCELL Technologies 5940 iPSC media
Vitronectin Life Technologies A14700
ROCK Inhibitor Sigma Aldrich Y0503
TrypLE express (TrypLE) Life Technologies 12604-039
ReleSR STEMCELL Technologies 12604-039 Colony detaching solution
Quality Control Materials
18 mm Cover Glass Superior HSU-0111580
4% Paraformaldyhyde Tech & Innovation BPP-9004
Triton X-100 BIOSESANG 9002-93-1
Bovine Serum Albumin  Vector Lab SP-5050 
Anti-SSEA4 Antibody Millipore MAB4304
Anti-Oct4 Antibody Santa Cruz SC9081
Anti-TRA-1-60 Antibody Millipore MAB4360
Anti-Sox2 Antibody Biolegend 630801
Anti-TRA-1-81 Antibody Millipore MAB4381
Anti-Klf4 Antibody Abcam ab151733
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L) antibody Molecular Probe A11029
Alexa Fluor 594 goat anti-rabbit IgG (H+L) antibody Molecular Probe A11037
DAPI Molecular Probe D1306
Prolong gold antifade reagent Invitrogen P36934
Slide Glass, Coated  Hyun Il Lab-Mate HMA-S9914
Trizol Invitrogen 15596-018
Chloroform Sigma Aldrich 366919
Isoprypylalcohol Millipore 109634
Ethanol Duksan 64-17-5
RevertAid First Strand cDNA Synthesis kit Thermo Scientfic K1622
i-Taq DNA Polymerase iNtRON BIOTECH 25021
UltraPure 10X TBE Buffer  Life Technologies 15581-044
loading star Dyne Bio A750
Agarose Sigma-Aldrich 9012-36-6
1kb (+) DNA ladder marker Enzynomics DM003
Alkaline Phosphatase Millipore SCR004
Tris base Fisher Scientific BP152-1 Rinse Buffer
Sodium Chloride Duchefa Biochemie S0520.1000 Rinse Buffer
Tween-20 BIOSESANG T1027 Rinse Buffer
Hydrochloric Acid Duksan 1129 Rinse Buffer

Referências

  1. Serra, M., Brito, C., Correia, C., Alves, P. M. Process engineering of human pluripotent stem cells for clinical application. Trends Biotechnol. 30 (6), 350-359 (2012).
  2. Martin, G. R. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 78 (12), 7634-7638 (1981).
  3. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  4. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  5. Chun, Y. S., Byun, K., Lee, B. Induced pluripotent stem cells and personalized medicine: current progress and future perspectives. Anat Cell Biol. 44 (4), 245-255 (2011).
  6. Seki, T., Fukuda, K. Methods of induced pluripotent stem cells for clinical application. World J Stem Cells. 7 (1), 116-125 (2015).
  7. Churko, J. M., Burridge, P. W., Wu, J. C. Generation of human iPSCs from human peripheral blood mononuclear cells using non-integrative Sendai virus in chemically defined conditions. Methods Mol Biol. 1036, 81-88 (2013).
  8. Loh, Y. H., et al. Reprogramming of T cells from human peripheral blood. Cell Stem Cell. 7 (1), 15-19 (2010).
  9. Ohmine, S., et al. Induced pluripotent stem cells from GMP-grade hematopoietic progenitor cells and mononuclear myeloid cells. Stem Cell Res Ther. 2 (6), (2011).
  10. Mae, S., et al. Monitoring and robust induction of nephrogenic intermediate mesoderm from human pluripotent stem cells. Nat Commun. 4, 1367 (2013).
check_url/pt/54650?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Rim, Y. A., Nam, Y., Ju, J. H. Induced Pluripotent Stem Cell Generation from Blood Cells Using Sendai Virus and Centrifugation. J. Vis. Exp. (118), e54650, doi:10.3791/54650 (2016).

View Video