Summary

レポーターマウスを用いたIL-22を発現するリンパ球の可視化

Published: January 25, 2017
doi:

Summary

We describe here a transgenic reporter mouse model to visualize the IL-22-producing cells inside different mouse tissues. This method can be used to track the location of other cytokines or secretary proteins in the mouse.

Abstract

レポーターマウスを広く標的遺伝子の発現の局在を観察するために使用されています。このプロトコルは、新しいトランスジェニックレポーターマウスモデルを確立するための戦略に焦点を当てています。我々は、このサイトカインが炎症によって損傷を受けた組織を修復するために寄与する腸における重要な活性を有するので、インターロイキン(IL)22遺伝子の発現を可視化することを選択しました。レポーター系は、 インビボの製品を特定する他の方法に比べてかなりの利点を提供します。 IL-22の場合には、他の研究は、最初の組織から細胞を単離した、その後、インビトロで細胞を再刺激しました。 IL-22、通常は分泌され、薬剤を使用して細胞内に閉じ込められた、そして細胞内染色は、それを視覚化するために使用されました。この方法は、IL-22を産生する能力を有する細胞を識別し、それは彼らが、in vivoでそのようにやっていたかどうかを決定するものではありません。レポーターのデザインは、ワシントン州にあるIL-22遺伝子に蛍光タンパク質(tdTomato)の遺伝子を挿入するステップを含みます蛍光タンパク質を分泌することができないため、 生体内での産生細胞の中に閉じ込められたままであることのy。蛍光の生産は、フローサイトメトリーを介して組織切片またはエキソビボ分析によって可視化することができます。レポーターのための実際の建設プロセスは、IL-22遺伝子を含む細菌人工染色体をコンビニアリング含まれています。この操作された染色体は、その後、マウスゲノムに導入しました。恒常的なIL-22レポーターの発現は、フローサイトメトリー分析により、脾臓、胸腺、リンパ節、パイエル板、および腸を含む種々のマウス組織において観察されました。大腸炎は、T細胞(CD4 + CD45RBhigh)転写によって誘導し、そしてレポーター発現を可視化しました。陽性のT細胞は、腸間膜リンパ節内の最初に存在した後、それらは、遠位小腸および結腸組織の固有層内に蓄積しました。 BACを用いた戦略は、IL-22 EXPRESに比べて良好な忠実度のレポーター発現を与えましたシオン、それがノックイン手順よりも簡単です。

Introduction

レポーター遺伝子の細胞型特異的発現を積極的恒常性と摂動状態の下で組織に標的を発現する細胞を同定するのに有用です。また、そのほかの特性を研究するために、生存したままでこれらの細胞の精製を可能にします。レポーターマウスは、特定のサイトカイン、転写因子、および調節要素の作用機序の解明に利用されています。以前の戦略1、2、3は、マウス染色体、時間とコストのかかる手順で標的遺伝子座にレポーターをノッキングに頼ってきました。したがって、レポーターマウスを生成するための簡単な方法が望ましいです。

サイトカインは、細胞間のシグナル伝達を介して免疫応答を調節する小、分泌タンパク質/ペプチドの幅広いクラスです。インターロイキン22(IL-22)障壁のfuを含む多く報告された活動、とサイトカインでありますnction、組織修復、及び炎症4。 IL-22は当初、T細胞の生成物5として発見されたものの、その後のレポートは人間6およびマウス7で先天性リンパ球8の他のクラスにナチュラルキラー(NK)細胞におけるその発現を示しました。 IL-22産生細胞の広範囲観察にもかかわらず、IL-22の可視化は、以前に抗体を用いた汚れにex vivoで刺激し、透過処理を必要としました。そのため、新規のIL-22レポーターマウスは、恒常性と発病過程におけるIL-22の機能を調べるために非常に有用なツールになります。

ここでは、in vivoおよびde vitroで IL-22産生細胞を観察するために簡略化されたトランスジェニックレポーターマウスモデルを開発しました。 BACのコンビニアリング法9を使用して、我々は、IL-22 LOCにポリ信号断片とtdTomato cDNA配列を挿入しました私たちと私たちはできるだけIL-22の自然調節を模倣したいと思いますので、他の非翻訳領域、エクソン、および調節要素は、乱されていなかったエクソン1を取り替えました。レポーターの挿入部位を急速に分泌されるIL-22自体とは異なり、生細胞内部のレポーターの蓄積をもたらす、シグナル配列を破壊します。この新しい方法はまた、他の分泌タンパク質のためのレポーターマウスの作製に適用することができます。

Protocol

全ての動物は、癌研究のためのフレデリック国立研究所の実験動物委員会の管理と使用に関する2011ガイドに記載の実験手順に従い、適切なケアを受けました。 BAC遺伝子改変によるIL-22-tdTomatoレポーターマウスの1世代注:マウスは無意識であるべきであり、有害な刺激に応答して移動しません。 70%エタノールで手術領域を滅菌し、ガラスビーズ滅菌?…

Representative Results

マウスIL-22レポーター導入遺伝子は、IL-22遺伝子座を保有する細菌人工染色体を変更するには、コンビニアリングを使用して作成されました。 図1は、sacBII遺伝子を含むpBACe3.6ベクター、ポジティブ選択マーカー、およびクロラムフェニコール抗生物質耐性遺伝子11の図を示しています。 図2に示すように、エクソン1にtd…

Discussion

IL-22は、先天性宿主防御と組織リモデリングに重要な役割を果たしています。 IL-22産生細胞は、細胞内染色によってエキソビボで同定されています。しかし、それはまだ正常な状態または炎症状態のいずれかで、 その場での IL-22の発現を追跡することが困難なままです。このプロトコルは、 生体内でのレポーター発現細胞を局在化することを可能にIL-22レポーターマウス…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Kelli Czarra and Megan Karwan for animal technical assistance, Kathleen Noer and Roberta Matthai for flow cytometry assistance, and Donna Butcher andMiriam R. Anver for pathology analysis. This project was supported by a grant from the Ely and Edythe Broad Foundation (to Scott Durum) and has been funded in whole or in part with federal funds from the National Cancer Institute, National Institutes of Health, under Contract No. HHSN261200800001E (MRA).

Materials

RP23-401E11 BAC Thermo Fisher Scientific RPCI23.C Need gene ID: 50929
NucleoBond BAC 100 Takara Clontech 740579
PCR SuperMix High Fidelity Thermo Fisher Scientific 10790020
PI-SceI New England Biolabs R0696S
SpeI New England Biolabs R0133S
LB Broth Thermo Fisher Scientific 10855-001 1L: 10 g SELECT Peptone 140, 5 g SELECT Yeast Extract, 5 g sodium chloride 
Anti-mouse CD3 eBioscience 11-0031
Anti-mouse CD4 eBioscience 17-0041
Anti-mouse CD45 Thermo Fisher Scientific MCD4530
Anti-mouse CD45RB eBioscience 11-0455
Anti-mouse RFP Abcam Ab62341
HBSS, no calcium, no magnesium, no phenol red Thermo Fisher Scientific 14175145 KCl, KH2PO4, Na2HPO4, NaHCO3, NaCl, D-Glucose
Dnase I Roche 10104159001
ACK lysing buffer Thermo Fisher Scientific A1049201
Percoll GE healthcare life sciences 17-0891-01
Collagenase D Roche 11088858001
Dispase II (neutral protease, grade II) Roche 4942078001
IX70 inverted fluorescence microscope Olympus Ask for quote
Nikon Eclipse 80i microscope Nikon Ask for quote
Dynal shaker Electron Microscopy Science 61050-10
FACSAria BD Bioscience Ask for quote
LSRII SORP/flow cytometry Becton, Dickinson and Company  Ask for quote

Referências

  1. Awasthi, A., et al. Cutting edge: IL-23 receptor gfp reporter mice reveal distinct populations of IL-17-producing cells. J Immunol. 182, 5904-5908 (2009).
  2. Price, A. E., Reinhardt, R. L., Liang, H. E., Locksley, R. M. Marking and quantifying IL-17A-producing cells in vivo. PLoS One. 7, e39750 (2012).
  3. Kamanaka, M., et al. Expression of interleukin-10 in intestinal lymphocytes detected by an interleukin-10 reporter knockin tiger mouse. Immunity. 25, 941-952 (2006).
  4. Sonnenberg, G. F., Fouser, L. A., Artis, D. Border patrol: regulation of immunity, inflammation and tissue homeostasis at barrier surfaces by IL-22. Nat Immunol. 12, 383-390 (2011).
  5. Dumoutier, L., Louahed, J., Renauld, J. C. Cloning and characterization of IL-10-related T cell-derived inducible factor (IL-TIF), a novel cytokine structurally related to IL-10 and inducible by IL-9. J Immunol. 164, 1814-1819 (2000).
  6. Cella, M., et al. A human natural killer cell subset provides an innate source of IL-22 for mucosal immunity. Nature. 457, 722-725 (2009).
  7. Sanos, S. L., et al. RORgammat and commensal microflora are required for the differentiation of mucosal interleukin 22-producing NKp46+ cells. Nat Immunol. 10, 83-91 (2009).
  8. Spits, H., et al. Innate lymphoid cells–a proposal for uniform nomenclature. Nat Rev Immunol. 13, 145-149 (2013).
  9. Mazzucchelli, R. I., et al. Visualization and identification of IL-7 producing cells in reporter mice. PLoS One. 4, e7637 (2009).
  10. Shen, W., Hixon, J. A., McLean, M. H., Li, W. Q., Durum, S. K. IL-22-Expressing Murine Lymphocytes Display Plasticity and Pathogenicity in Reporter Mice. Front Immunol. 6, 662 (2015).
  11. Gong, S., Yang, X. W., Li, C., Heintz, N. Highly efficient modification of bacterial artificial chromosomes (BACs) using novel shuttle vectors containing the R6Kgamma origin of replication. Genome Res. 12, 1992-1998 (2002).
  12. Shen, W., Huang, Y., Tang, Y., Liu, D. P., Liang, C. C. A general method to modify BACs to generate large recombinant DNA fragments. Mol Biotechnol. 31, 181-186 (2005).
  13. Cho, A., Haruyama, N., Kulkarni, A. B. Generation of transgenic mice. Curr Protoc Cell Biol. Chapter. Chapter 19, Unit 19 11 (2009).
  14. Danneman, P. J., Stein, S., Walshaw, S. O. Humane and practical implications of using carbon dioxide mixed with oxygen for anesthesia or euthanasia of rats. Lab Anim Sci. 47, 376-385 (1997).
  15. Omata, Y., et al. Isolation of coccidian enteroepithelial stages of Toxoplasma gondii from the intestinal mucosa of cats by Percoll density-gradient centrifugation. Parasitol Res. 83, 574-577 (1997).
  16. Kumar, N., Borth, N. Flow-cytometry and cell sorting: an efficient approach to investigate productivity and cell physiology in mammalian cell factories. Methods. 56, 366-374 (2012).
  17. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Cryosectioning tissues. CSH Protoc. 2008, pdb.prot4991 (2008).
  18. Hilbe, W., et al. Comparison of automated cellular imaging system and manual microscopy for immunohistochemically stained cryostat sections of lung cancer specimens applying p53, ki-67 and p120. Oncol Rep. 10, 15-20 (2003).
  19. Suzuki, Y., Furukawa, M., Abe, J., Kashiwagi, M., Hirose, S. Localization of porcine trappin-2 (SKALP/elafin) in trachea and large intestine by in situ hybridization and immunohistochemistry. Histochem Cell Biol. 114, 15-20 (2000).
  20. Wolk, K., et al. IL-22 increases the innate immunity of tissues. Immunity. 21, 241-254 (2004).
  21. Brand, S., et al. IL-22 is increased in active Crohn’s disease and promotes proinflammatory gene expression and intestinal epithelial cell migration. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 290, G827-G838 (2006).
  22. Nagalakshmi, M. L., Rascle, A., Zurawski, S., Menon, S., Waal Malefyt, d. e., R, Interleukin-22 activates STAT3 and induces IL-10 by colon epithelial cells. Int Immunopharmacol. 4, 679-691 (2004).
  23. Maloy, K. J., Powrie, F. Intestinal homeostasis and its breakdown in inflammatory bowel disease. Nature. 474, 298-306 (2011).
  24. Andoh, A., et al. Interleukin-22, a member of the IL-10 subfamily, induces inflammatory responses in colonic subepithelial myofibroblasts. Gastroenterology. 129, 969-984 (2005).
  25. Bhan, A. K., Mizoguchi, E., Smith, R. N., Mizoguchi, A. Colitis in transgenic and knockout animals as models of human inflammatory bowel disease. Immunol Rev. 169, 195-207 (1999).
  26. Mombaerts, P., et al. Spontaneous development of inflammatory bowel disease in T cell receptor mutant mice. Cell. 75, 274-282 (1993).
  27. Powrie, F. Immune regulation in the intestine: a balancing act between effector and regulatory T cell responses. Ann N Y Acad Sci. 1029, 132-141 (2004).
  28. Ahlfors, H., et al. IL-22 fate reporter reveals origin and control of IL-22 production in homeostasis and infection. J Immunol. 193, 4602-4613 (2014).
check_url/pt/54710?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Shen, W., Li, W., Hixon, J. A., Andrews, C., Durum, S. K. Visualization of IL-22-expressing Lymphocytes Using Reporter Mice. J. Vis. Exp. (119), e54710, doi:10.3791/54710 (2017).

View Video