Summary

Mouse микрохирургии Настой Техника для Targeted вещества Доставка в ЦНС<i> с помощью</i> Артерию внутренней сонной

Published: January 31, 2017
doi:

Summary

The present protocol describes a mouse microsurgery infusion technique, which effectively delivers substances directly into the brain via the internal carotid artery.

Abstract

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous substances into the brain. These exogenous substances may induce injurious impact or constitute therapeutic strategy. The most common delivery methods of exogenous substances into the brain are based on systemic deliveries, such as subcutaneous or intravenous routes. Although commonly used, these approaches have several limitations, including low delivery efficacy into the brain. In contrast, surgical methods that locally deliver substances into the CNS are more specific and prevent the uptake of the exogenous substances by other organs. Several surgical methods for CNS delivery are available; however, they tend to be very traumatic. Here, we describe a mouse infusion microsurgery technique, which effectively delivers substances into the brain via the internal carotid artery, with minimal trauma and no interference with normal CNS functionality.

Introduction

В естественных условиях модели центральной нервной системы (ЦНС) , заболевания требуют эффективной доставки экзогенных веществ, таких как наркотики, патогенных микроорганизмов, или экзосомы, в мозг. Следовательно, идеальный способ доставки должен вызывать минимальную травму животному, сохранить целостность нейронной сети, и достигать высоких концентраций веществ в головном мозге 1.

Несколько хирургических методов локальной доставки действующего вещества были описаны, в том числе внутри-оболочки, внутрицеребральная, внутрижелудочкового инъекций или имплантатов 2, 3, 4, 5. Эти подходы, однако, считаются травматическое в ЦНС, и позволить введение только низких объемов вещества, представляющего интерес. Кроме того, было высказано предположение , что экзогенные вещества могут быть быстро удалены спинно – мозговой жидкости 6 </sвверх>, и низкий диапазон проникновения в паренхиме головного мозга наблюдалась 7 , когда вышеуказанные методы используются. Системные методы доставки, такие как пероральный, легочный, подкожного и внутривенного путей, чаще используются в моделях на животных, хотя они демонстрируют низкую эффективность в доставке веществ в ЦНС, благодаря поглощению другими органами 8, 9. Таким образом, эти маршруты поставки требуют повышенных доз на администрируемых веществ, увеличивая риск побочных эффектов и токсичности 10, 11.

Здесь мы опишем метод микрохирургии мыши настой, который эффективно доставляет вещества непосредственно в мозг через внутреннюю сонную артерию. В дополнение к ориентации на доставку в ЦНС, этот метод не обходит нормальные физиологические барьеры и поэтому весьма актуальным для Биологическийл процессы, участвующие в проходах терапевтических средств или патогенов в мозг.

Protocol

Процедуры, участвующие в следующем протоколе были одобрены в Университете Майами Institutional уходу и использованию животных комитета (IACUC). Кроме того, все процедуры проводятся в учреждениях, утвержденных Ассоциацией по оценке и аккредитации лабораторных животных Care International (AAALAC). <p class="jo…

Representative Results

Техника микрохирургии мышь вливание описанный здесь очень универсальна и используется для доставки различных веществ непосредственно в мозг, в том числе доставку опухолевых клеток в репрезентативной модели формирования метастаз головного мозга 1,</su…

Discussion

Описанный здесь настой микрохирургии было доказано быть очень успешным в доставке экзогенных веществ различных биологических особенностей в ЦНС, предотвращая нежелательное распространение по всему телу 1, 12. Срыв гематоэнцефалического барьера являет?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Dr. Lei Chen (Icahn School of Medicine at Mount Sinai, NY) who first established the use of this model in our laboratory, and to Dr. Gretchen Wolff (German Cancer Research Center, Heidelberg, Germany) for disseminating the technique in our laboratory. Supported in part by HL126559, DA039576, MH098891, MH63022, MH072567, DA027569, and NSC 2015/17/B/NZ7/02985.

Materials

Anesthesia instrument Vetequip 901806
Surgical scissors Fine Science Tool 14558-09
Surgical forceps straight tip Fine Science Tool 00108-11
Surgical forceps angled tip Fine Science Tool 00109-11
Spring scissors Fine Science Tool 15000-08
Nylon suture Braintree Scientific SUT-S 104
Capillary tubing (Micro-Renathane 0.010” x 0.005” per ft.)  Braintree Scientific MRE01050
Closing suture VWR 95057-036
Isoflurane Piramal
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride FisherScientific 50-121-8005

Referências

  1. Chen, L., Swartz, K. R., Toborek, M. Vessel microport technique for applications in cerebrovascular research. J Neurosci Res. 87 (7), 1718-1727 (2009).
  2. Frisella, W. A., et al. Intracranial injection of recombinant adeno-associated virus improves cognitive function in a murine model of mucopolysaccharidosis type VII. Mol Ther. 3 (3), 351-358 (2001).
  3. Wei, L., Erinjeri, J. P., Rovainen, C. M., Woolsey, T. A. Collateral growth and angiogenesis around cortical stroke. Stroke. 32 (9), 2179-2184 (2001).
  4. Wu, G., et al. Targeted delivery of methotrexate to epidermal growth factor receptor-positive brain tumors by means of cetuximab (IMC-C225) dendrimer bioconjugates. Mol Cancer Ther. 5 (1), 52-59 (2006).
  5. Pignataro, G., Studer, F. E., Wilz, A., Simon, R. P., Boison, D. Neuroprotection in ischemic mouse brain induced by stem cell-derived brain implants. J Cereb Blood Flow Metab. 27 (5), 919-927 (2007).
  6. Sugiyama, Y., Kusuhara, H., Suzuki, H. Kinetic and biochemical analysis of carrier-mediated efflux of drugs through the blood-brain and blood-cerebrospinal fluid barriers: importance in the drug delivery to the brain. J Control Release. 62 (1-2), 179-186 (1999).
  7. Pardridge, W. M. Drug and gene delivery to the brain: the vascular route. Neuron. 36 (4), 555-558 (2002).
  8. Vantyghem, S. A., Postenka, C. O., Chambers, A. F. Estrous cycle influences organ-specific metastasis of B16F10 melanoma cells. Cancer Res. 63 (16), 4763-4765 (2003).
  9. Huang, R. Q., et al. Efficient gene delivery targeted to the brain using a transferrin-conjugated polyethyleneglycol-modified polyamidoamine dendrimer. FASEB J. 21 (4), 1117-1125 (2007).
  10. Liu, R., Martuza, R. L., Rabkin, S. D. Intracarotid delivery of oncolytic HSV vector G47Delta to metastatic breast cancer in the brain. Gene Ther. 12 (8), 647-654 (2005).
  11. Kumar, P., et al. Transvascular delivery of small interfering RNA to the central nervous system. Nature. 448 (7149), 39-43 (2007).
  12. Wrobel, J. K., Wolff, G., Xiao, R., Power, R. F., Toborek, M. Dietary Selenium Supplementation Modulates Growth of Brain Metastatic Tumors and Changes the Expression of Adhesion Molecules in Brain Microvessels. Biol Trace Elem Res. , (2015).
check_url/pt/54804?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Leda, A. R., Dygert, L., Bertrand, L., Toborek, M. Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery. J. Vis. Exp. (119), e54804, doi:10.3791/54804 (2017).

View Video