Summary

工程人为因素来特异性地操纵人细胞中的选择性剪接

Published: April 26, 2017
doi:

Summary

该报告介绍了一种生物工程方法来设计和构建特异性调节在哺乳动物细胞中靶基因的剪接新颖人工剪接因子(ASFS)。该方法可以进一步扩展来设计各种人为因素来操纵RNA代谢的其它方面。

Abstract

大多数真核RNA的处理是由RNA介导的结合的模块化配置,包括一个RNA识别模块,其特异性地结合前mRNA靶和效应结构域的蛋白质(限制性商业惯例)。以前,我们已经利用所述PUF结构域的独特RNA结合模式在人类Pumilio 1,以产生一个可编程的RNA结合的支架,将其用于设计各种人造限制性商业惯例来操纵RNA代谢。这里,详细的协议描述来构建专门设计用于调节靶基因的可变剪接工程剪接因子(ESFS)。该协议包括如何设计和构建定制的PUF支架用于特定RNA靶,如何通过融合设计者PUF结构域和效应子结构域,以及如何使用ESFS来操纵目标基因的剪接以构建ESF表达质粒。在该方法的代表性结果,我们还描述了常见的测定法的使用拼接记者,ESF的培养的人细胞中的应用,和剪接改变后续效应ESF活动。按照本报告中的详细协议,它可以设计并为不同类型的选择性剪接(AS)的规ESFS,提供了一个新的战略研究剪接调节和不同的剪接异构体的功能。此外,通过用设计PUF域融合不同的功能结构域,研究人员可以设计靶向特定RNA操纵RNA加工的各种步骤人为因素。

Introduction

大多数的人类基因经历选择性剪接(AS),以产生多种同种型具有不同的活动,这大大增加了基因组1,2的编码的复杂性。 AS提供的主要机制来调节基因的功能,并且在不同的细胞和发育阶段3,4通过各种途径紧密调节。因为拼接错误调节是人类疾病5,6,7,8的常见原因,靶向剪接调节正在成为一种有吸引力的治疗路线。

根据剪接调节的简化模型,如由剪接调节 -elements(SRES)中前mRNA剪接增强子或替代外显子沉默发挥功能的主要控制。钍ESE的SRE具体招募各种式作用蛋白因子促进或抑制剪接反应3,9( 剪接因子)。大多数式作用剪接因子有单独的序列特异性RNA结合域认识到自己的目标和效应域控制剪接。最熟知的例子是丝氨酸/富含精氨酸的(SR)蛋白家族的含有N-末端的RNA识别基序(RRMS),其结合外显子剪接增强子,和C-末端RS结构域的成员,其中促进外显子内含10 。相反地,核蛋白A1通过RRM结构域结合至外显子剪接沉默子,并通过C末端的富含甘氨酸的结构域11抑制外显子包含。使用这种模块化配置,研究人员应该能够通过合并来设计人工剪接因子特异性RNA结合结构域(RBD)具有不同的短跑运动员激活或抑制剪接的结构域。

这种设计的关键是使用可编程RNA结合特异性识别给定靶标的RBD,其类似于TALE结构域的DNA结合模式。然而,大多数天然剪接因子含有RRM或K同源性(KH)结构域,其识别具有弱亲和力的短RNA元件,因此缺乏预测性RNA-蛋白质识别“代码” 12 。 PUF重复蛋白( PUF结构域)的RBD具有独特的RNA识别模式,允许重新设计PUF结构域以特异性识别不同的RNA靶标13,14 。典型的PUF结构域包含八个重复的三个α螺旋,每个重复在8-nt RNA靶标中识别单个碱基。第二个α-螺旋的某些位置的氨基酸侧链与t的Watson-Crick边缘形成特定的氢键他的RNA碱基决定了每个重复的RNA结合特异性( 图1A )。 PUF重复的RNA碱基识别代码令人惊讶地简单( 图1A ),允许产生识别任何可能的8碱基组合的PUF结构域(由Wei和Wang 15综述)。

该模块化设计原则允许产生由定制的PUF域和剪接调制域( SR域或富含Gly域)组成的工程化拼接因子(ESF)。这些ESFs可以作为剪接活化剂或作为抑制剂来控制各种类型的剪接事件,并且已被证明可用作操纵与人类疾病相关的内源基因的剪接16,17 。例如,我们已经构建了PUF-Gly型ESFs来特异性地改变Bcl-x基因的剪接,将抗凋亡长的同种型(Bcl-xL)转化为促细胞凋亡的短异构体(Bcl-xS)。改变Bcl-x同种型的比例足以使几种癌细胞对多种抗癌化学药物16敏感,这表明这些人为因子可能作为潜在的治疗试剂。

除了用已知的剪接效应子结构域( 例如, RS或富含Gly的结构域)控制剪接之外,工程化PUF因子也可用于检查新的剪接因子的活性。例如,使用这种方法,我们已经证明,当结合到不同的前mRNA区域18时,几种SR蛋白质的C-末端结构域可以激活或抑制剪接,RBM4的富含丙氨酸的基序可以抑制剪接19 ,并且DAZAP1的富含脯氨酸的基序可以增强剪接20,21/ sup>。这些新功能域可用于构建其他类型的人为因子以微调拼接。

Protocol

通过重叠PCR 1. PUF支架与定制的构建RNA结合特异性设计一系列的包含在每个位置12(参照表1的引物序列和参见图1, 一种用于在RNA:PUF识别码)特异性识别不同的RNA核苷酸序列PUF的PCR引物。对于每个PUF重复,设计四个不同的引物识别每个位置的不同基地。 注意:这些引物将在一系列的四个回合的PCR反应中使?…

Representative Results

这份报告描述了ESFS和拼接记者的设计和施工的完整的协议。它还概述ESFS的操纵内源基因16的AS的进一步应用。为了说明的ESF介导的拼接变化的典型结果,我们使用的数据来自我们以前的工作作为一个例子。具有不同的功能结构域的ESFS可用于促进或抑制靶盒外显子( 图1 D&E)的夹杂物。 ESFS也可影响在报道?…

Discussion

本报告详细描述了可以特异性操纵靶基因选择性剪接的人工剪接因子的设计和构建。该方法利用PUF重复的独特的RNA结合模式产生具有定制特异性的RNA结合支架。它可以用于激活或抑制拼接。

该协议中的关键步骤是生成定义了ESF特异性的重新编程的PUF结构域。已经开发并优化了PCR拼接方案,用于快速生成PUF支架。其成功的关键是将不同重叠模板的比例调整为1:1:1。每次循环?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作是由美国国立卫生研究院资助R01-CA158283和国家自然科学基金委员会授予31400726到ZWYW由青年千人计划和中国国家自然科学基金(赠款31471235和81422038)的资助支持。 XY是由中国博士后科学基金会(2015M571612)资助。

Materials

High-fidelity DNA polymerase (Phusion High-Fidelity) with PCR buffer New England Biolabs M0530L
DNA ligase (T4 DNA ligase) New England Biolabs M0202L
Liposomal transfection reagent (Lipofectamine 2000) Invitrogen 11668-019
Reduced serum medium (Opti-MEM) Gibco 31985-062
RNA extraction buffer (TRIzol Reagent) ambion 15596018 TRIzol reagent includes phenol, which can cause burns. Wear gloves when handling
BSA (Bovine Serum Albumin) Sigma-Aldrich A7638-5G
PBS (1X) Life Technologies 10010-031
SuperScript III reverse transcriptase Invitrogen 18080044
Caspase-3 antibody Cell Signaling Technology 9668
PARP antibody Cell Signaling Technology 9542
Bcl-x antibody BD Bioscience 610211
beta-actin antibody Sigma-Aldrich A5441
alpha-tubulin antibody Sigma-Aldrich T5168
FLAG antibody Sigma-Aldrich F4042
Nitrocellulose membrane Amersham-Pharmacia RPN203D
ECL Western Blotting detection reagents Invitrogen WP20005
Cy5-dCTP GE Healthcare PA55021
Fluorescence-activated cell sorter BD Bioscience FACSCalibur 
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM) GE Healthcare SH30243.01
Fetal bovine serum Invitrogen 26140079
Propidium iodide (PI) Sigma P4170
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma A7638-5G
Triton-X100 Promega H5142
Poly-lysine  Sigma P-4832 Filter sterilize and store at 4 °C
Vector  pWPXLd Addgene 12258
Vector pMD2.G Addgene 12259
Vector psPAX2 Addgene 12260
DNase I (RNase-free) New England Biolabs M0303S
Oligo(dT)18 Primer Thermo Scientific SO131 
Anti-mouse secondary antibody (Anti-mouse IgG, HRP-linked Antibody) Cell Signaling Technology 7076S

Referências

  1. Wang, E. T., et al. Alternative isoform regulation in human tissue transcriptomes. Nature. 456 (7221), 470-476 (2008).
  2. Pan, Q., Shai, O., Lee, L. J., Frey, B. J., Blencowe, B. J. Deep surveying of alternative splicing complexity in the human transcriptome by high-throughput sequencing. Nat Genet. 40 (12), 1413-1415 (2008).
  3. Wang, Z., Burge, C. B. Splicing regulation: from a parts list of regulatory elements to an integrated splicing code. Rna. 14 (5), 802-813 (2008).
  4. Matera, A. G., Wang, Z. A day in the life of the spliceosome. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (2), 108-121 (2014).
  5. Singh, R. K., Cooper, T. A. Pre-mRNA splicing in disease and therapeutics. Trends Mol Med. 18 (8), 472-482 (2012).
  6. Wang, G. -. S., Cooper, T. A. Splicing in disease: disruption of the splicing code and the decoding machinery. Nat Rev Genet. 8 (10), 749-761 (2007).
  7. Li, Y. I., et al. RNA splicing is a primary link between genetic variation and disease. Science. 352 (6285), 600-604 (2016).
  8. Scotti, M. M., Swanson, M. S. RNA mis-splicing in disease. Nat Rev Genet. 17 (1), 19-32 (2016).
  9. Black, D. L. Mechanisms of alternative pre-messenger RNA splicing. Annu Rev Biochem. 72 (1), 291-336 (2003).
  10. Graveley, B. R., Maniatis, T. Arginine/serine-rich domains of SR proteins can function as activators of pre-mRNA splicing. Mol cell. 1 (5), 765-771 (1998).
  11. Del Gatto-Konczak, F., Olive, M., Gesnel, M. -. C., Breathnach, R. hnRNP A1 recruited to an exon in vivo can function as an exon splicing silencer. Mol Cell Biol. 19 (1), 251-260 (1999).
  12. Auweter, S. D., Oberstrass, F. C., Allain, F. H. Sequence-specific binding of single-stranded RNA: is there a code for recognition. Nucleic Acids Res. 34 (17), 4943-4959 (2006).
  13. Dong, S., et al. Specific and modular binding code for cytosine recognition in Pumilio/FBF (PUF) RNA-binding domains. J Biol Chem. 286 (30), 26732-26742 (2011).
  14. Filipovska, A., Razif, M. F., Nygård, K. K., Rackham, O. A universal code for RNA recognition by PUF proteins. Nat Chem Biol. 7 (7), 425-427 (2011).
  15. Wei, H., Wang, Z. Engineering RNA-binding proteins with diverse activities. Wiley Interdiscip Rev RNA. 6 (6), 597-613 (2015).
  16. Wang, Y., Cheong, C. -. G., Hall, T. M. T., Wang, Z. Engineering splicing factors with designed specificities. Nat Methods. 6 (11), 825-830 (2009).
  17. Choudhury, R., Tsai, Y. S., Dominguez, D., Wang, Y., Wang, Z. Engineering RNA endonucleases with customized sequence specificities. Nat Commun. 3, 1147 (2012).
  18. Wang, Y., et al. A complex network of factors with overlapping affinities represses splicing through intronic elements. Nat Struct Mol Biol. 20 (1), 36-45 (2013).
  19. McCabe, B. C., Gollnick, P. Cellular levels of trp RNA-binding attenuation protein in Bacillus subtilis. J Bacteriol. 186 (15), 5157-5159 (2004).
  20. Wang, Y., Ma, M., Xiao, X., Wang, Z. Intronic splicing enhancers, cognate splicing factors and context-dependent regulation rules. Nat Struct Mol Biol. 19 (10), 1044-1052 (2012).
  21. Choudhury, R., et al. The splicing activator DAZAP1 integrates splicing control into MEK/Erk-regulated cell proliferation and migration. Nat Commun. 5, (2014).
  22. Xiao, X., Wang, Z., Jang, M., Burge, C. B. Coevolutionary networks of splicing cis-regulatory elements. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (47), 18583-18588 (2007).
  23. Wang, Z., Xiao, X., Van Nostrand, E., Burge, C. B. General and specific functions of exonic splicing silencers in splicing control. Mol Cell. 23 (1), 61-70 (2006).
  24. Li, M., Husic, N., Lin, Y., Snider, B. J. Production of lentiviral vectors for transducing cells from the central nervous system. J Vis Exp. (63), e4031 (2012).
  25. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat Protoc. 1 (1), 241-245 (2006).
  26. Venables, J. P. Aberrant and alternative splicing in cancer. Cancer Res. 64 (21), 7647-7654 (2004).
  27. Cooke, A., Prigge, A., Opperman, L., Wickens, M. Targeted translational regulation using the PUF protein family scaffold. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (38), 15870-15875 (2011).
  28. He, C., Zhou, F., Zuo, Z., Cheng, H., Zhou, R. A global view of cancer-specific transcript variants by subtractive transcriptome-wide analysis. PloS one. 4 (3), 4732 (2009).
  29. Venables, J. P., et al. Identification of alternative splicing markers for breast cancer. Cancer Res. 68 (22), 9525-9531 (2008).
  30. Shapiro, I., et al. An EMT-Driven Alternative Splicing Program Occurs in Human Breast Cancer. PLoS Genet. 7 (8), 1002218 (2011).
  31. David, C. J., Manley, J. L. Alternative pre-mRNA splicing regulation in cancer: pathways and programs unhinged. Genes Dev. 24 (21), 2343-2364 (2010).
  32. Ladomery, M. Aberrant alternative splicing is another hallmark of cancer. Int J Cell biol. 2013, (2013).
  33. Karni, R., et al. The gene encoding the splicing factor SF2/ASF is a proto-oncogene. Nat Struct Mol Biol. 14 (3), 185-193 (2007).
  34. Anczukòw, O., et al. SRSF1-regulated alternative splicing in breast cancer. Mol cell. 60 (1), 105-117 (2015).

Play Video

Citar este artigo
Wei, H., Liu, Y., Wang, Y., Lu, Q., Yang, X., Li, J., Wang, Z. Engineering Artificial Factors to Specifically Manipulate Alternative Splicing in Human Cells. J. Vis. Exp. (122), e54967, doi:10.3791/54967 (2017).

View Video