Summary

Utilisation de Scaffold Liposomes à Reconstituer interactions protéine-protéine Lipid-proximal<em> In vitro</em

Published: January 11, 2017
doi:

Summary

This paper describes a method for assessing the interactions and assemblies of integral membrane proteins in vitro with various partner factors in a lipid-proximal environment.

Abstract

Des études sur les protéines membranaires intégrales in vitro sont souvent compliquées par la présence d'un domaine transmembranaire hydrophobe. Pour compliquer encore ces études, réincorporation des protéines membranaires détergent solubilisé dans des liposomes est un processus stochastique où la protéine topologie est impossible à appliquer. Cet article propose une méthode alternative à ces techniques difficiles qui utilise un échafaudage à base de liposomes. La solubilité des protéines est améliorée par deletion du domaine transmembranaire et les acides aminés sont remplacés par un fragment d'attache, telle qu'une étiquette His. Cette attache coopérant avec un groupe d' ancrage (Ni 2+ coordonné par l' acide nitrilotriacétique (NTA (Ni 2+)) pour les protéines à marquage His), qui applique une topologie de protéine homogène à la surface du liposome. Un exemple est présenté dans lequel l'interaction entre la protéine apparentée à Dynamin-1 (DRP1) avec une protéine membranaire intégrale, le facteur mitochondrial Fission (MFF) est investigated utilisant cette méthode échafaudage liposome. Dans ce travail, nous avons démontré la capacité de MFF de recruter efficacement DRP1 soluble à la surface des liposomes, ce qui a stimulé son activité GTPase. En outre, DRP1 a pu tubulé le modèle lipidique MFF-décoré en présence de lipides spécifiques. Cet exemple démontre l'efficacité des liposomes d'échafaudage en utilisant des analyses structurales et fonctionnelles et met en évidence le rôle de la CFP dans la régulation de l'activité DRP1.

Introduction

L' étude des interactions protéine-protéine membrane proximal est une entreprise difficile en raison de la difficulté à récapitulant l'environnement natif des protéines membranaires intégrales impliquées 1. Ceci est dû à la nécessité de solubilisation avec un détergent et de l'orientation non uniforme des protéines dans des protéoliposomes. Afin d'éviter ces problèmes, nous avons utilisé une stratégie selon laquelle les domaines solubles de protéines membranaires intégrales sont exprimés sous forme de protéines de fusion His-tag, et ces fragments solubles sont ancrés à des liposomes de l' échafaudage par des interactions avec le NTA (Ni 2+) , les groupes de tête au lipide surface. L'utilisation de ces échafauds, les interactions entre protéines lipides proximal peuvent être étudiés sur une gamme de compositions de lipides et de protéines.

Nous avons effectivement appliqué cette méthode pour étudier les interactions protéine-protéine critiques qui régissent l'assemblage du complexe de fission mitochondriale et examiner les interactions lipidiques qui modulent cette processus 2. Lors de la fission mitochondriale, une protéine de remodelage de la membrane conservée, appelée protéine apparentée Dynamin-1 (DRP1) 3, est recruté à la surface de la mitochondriale externe membrane (OMM) en réponse à des signaux cellulaires qui régulent l' homéostasie énergétique, la signalisation apoptotique, et plusieurs autres processus mitochondriales intégrés. Cette grande GTPase cytosolique est recruté à la surface des mitochondries par des interactions avec les protéines intégrales OMM 4 8. Le rôle d'une telle protéine, mitochondriale Fission Factor (MFF), a été difficile à élucider en raison d'une faible interaction apparente avec DRP1 in vitro. Néanmoins, les études génétiques ont clairement démontré que MFF est essentiel pour le succès de mitochondrial fission 7,8. La méthode décrite dans ce manuscrit a été en mesure de remédier aux lacunes précédentes en introduisant des interactions lipidiques simultanées qui favorisent les interactions DRP1-MFF. Dans l'ensemble, ce nouveau test REVEAconduit les interactions fondamentales guidant l'assemblage du complexe de fission mitochondriale et a fourni une nouvelle étape pour les études structurales et fonctionnelles en cours de cette machine moléculaire essentielle.

À ce jour, l' examen des interactions entre DRP1 et MFF ont été compliquées par la flexibilité inhérente du MFF 9, l'hétérogénéité des DRP1 Polymères 2,10, et la difficulté de la purification et la reconstitution pleine longueur MFF avec un domaine transmembranaire intact 11. Nous avons abordé ces défis en utilisant des liposomes NTA (Ni 2+) d'échafaudage pour reconstituer His-tagged MFF dépourvu de son domaine transmembranaire (MffΔTM-His 6). Cette stratégie a été avantageuse car MffΔTM était extrêmement soluble lorsque surexprimé dans E. coli, et cette protéine isolée a été facilement reconstituées sur des liposomes d'échafaudage. Quand attaché à ces modèles de lipides, MFF suppose un traitement identique, l'orientation tournée vers l'extérieur sur la surface de la membrane.En plus de ces avantages, les lipides mitochondriales, tels que la cardiolipine, ont été ajoutés pour stabiliser MFF pliage et son association avec la membrane 11. Cardiolipine interagit également avec le domaine variable de 2,12 DRP1 qui peut stabiliser cette région désordonnée et faciliter l' assemblage du mécanisme de fission.

Cette méthode robuste est largement applicable pour les futures études visant à évaluer les interactions entre protéines membranaires-proximal. Grâce à l'utilisation des interactions tethering / d'affinité supplémentaires, la sophistication de ces études de reconstitution de la membrane peut être améliorée pour imiter la complexité supplémentaire trouvée à la surface des membranes dans les cellules. Dans le même temps, les compositions lipidiques peuvent être modifiées pour mimer plus précisément les environnements d'origine de ces complexes macromoléculaires. En résumé, cette méthode fournit un moyen d'examiner les contributions relatives des protéines et des lipides dans la formation de morphologies membranaires au cours de proc cellulaire critiqueesses.

Protocol

1. Préparation de liposomes Échafaudage NOTE: Idéalement, les premières expériences devraient utiliser un échafaudage relativement simple et monotone (composé de DOPC (1,2-dioleoyl- sn – glycéro-3-phosphocholine ou PC) et DGS-NTA (Ni 2+) (1,2-dioléoyl – sn – glycéro-3 – [(N – (5-amino-1-carboxypentyl) iminodiacétique) succinyl]. (sel de nickel)) Construction hors de ces expériences, la charge des lipides, la flexibilité et la courbure peut êt…

Representative Results

Alors que l'interaction entre DRP1 et MFF a été démontrée comme étant important pour la fission mitochondriale, cette interaction a été difficile à récapituler in vitro. Notre objectif était de mieux émuler l'environnement cellulaire dans lequel DRP1 et MFF interagissent. A cet effet, des liposomes contenant des concentrations de limitation de NTA (Ni 2+) , les groupes de tête ont été préparées en réhydratant un film lipidique tel que décrit …

Discussion

Ce protocole offre une méthode pour l'étude des interactions protéine-protéine impliquant des protéines membranaires intégrales. En utilisant un liposome échafaudage modulaire, les chercheurs sont capables d'évaluer l'activité d'une ou plusieurs protéines dans un environnement lipidique proximale. Des études antérieures ont démontré un procédé similaire pour les enzymes des récepteurs de la membrane plasmatique 24-26. Nous avons élargi cette méthode pou…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to acknowledge the funding received from the American Heart Association (SDG12SDG9130039).

Materials

Phosphatidylcholine (DOPC) Avanti Polar Lipids 850375
Phosphatidylethanolamine (DOPE) Avanti Polar Lipids 850725
DGS-NTA(Ni2+) Avanti Polar Lipids 790404
Bovine Heart Cardiolipin (CL) Avanti Polar Lipids 840012
Chloroform Acros Organics 268320010
Liposome Extruder Avanti Polar Lipids 610023
Cu/Rh Negative Stain Grids Ted Pella 79712
Microfuge Tube Beckman 357448
GTP Jena Biosciences NU-1012
GMP-PCP Sigma Aldrich M3509
Microtiter Plate strips Thermo Scientific 469949
EDTA Acros Organics 40993-0010
Instant Blue Coomassie Dye Expedeon ISB1L
HEPES Fisher Scientific BP310
BME Sigma Aldrich M6250
KCL Fisher Scientific P330
KOH Fisher Scientific P250
Magnesium Chloride Acros Organics 223211000
4-20% SDS-PAGE Gel Bio Rad 456-1096
4x Laemmli Loading Dye Bio Rad 161-0747
HCL Fisher Scientific A144S
Malachite Green Carbinol Sigma Aldrich 229105
Ammonium Molybdate Tetrahydrate Sigma Aldrich A7302
Laboratory Film Parafilm PM-996
Uranyl Acetate Polysciences 21447
Tecnai T12 100 keV Microscope FEI
Optima MAX Beckman
TLA-55 Rotor Beckman
Refrigerated CentriVap Concentrator Labconico
Mastercycler Pro Thermocycler Eppendorf
VersaMax Microplate reader Molecular Devices

Referências

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Citar este artigo
Clinton, R. W., Mears, J. A. Using Scaffold Liposomes to Reconstitute Lipid-proximal Protein-protein Interactions In Vitro. J. Vis. Exp. (119), e54971, doi:10.3791/54971 (2017).

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