Summary

에 의해 쥐 림프구 라벨링<sup> (64)</sup> CU-항체 수용체는 대한 타겟팅<em> 생체</em> PET / CT에 의한 세포 트래 피킹

Published: April 29, 2017
doi:

Summary

형질 전환 쥐 T 세포 수용체에 결합하는 64의 Cu 변성 모노클로 날 항체의 제조에 이어 T 세포 생존, 기능, 표시 안정성과 세포 사멸 분석, 생체 내에서 방사성 표지하고, 적응 적기도 지연 형 과민 쥐에 옮기고 양전자 방출 단층 촬영 / 컴퓨터 단층 촬영 (PET / CT)에 의해 비 침습성 영상화 대한 반응.

Abstract

이 프로토콜은 구리 (64)의 제조 및 뮤린 림프구 세포 배양 및 세포 타겟팅 CU-64 수용체 항체에 따르는 단일 클론 항체 (항체)의 킬레이트 결합 / 방사성 표지를 나타낸다. PET / CT에 의한기도 지연 형 과민 반응 (DTHR)의 동물 모델에서 생체 세포와 방사성 추적 침습적 설명되는 시험 관내 평가.

구체적으로는, 킬레이트 1,4,7,10-1,4,7,10 테트라 아자 – 테트라 아세트산 (DOTA)와 항체의 결합을 나타낸다. 방사선 (64)의 Cu의 DOTA 공역의 방사성 표지 된 단클론 항체의 생산을하는 것은 다음을 설명한다. 다음에, 닭 오브 알부민 (코바) 특이 적 CD4 + 인터페론의 확장 (IFN)의 생산 -γ-T 헬퍼 세포 (COVA-TH1)과 코바-TH1 세포의 후속의 방사선은 도시된다. 다양한 체외 기술은 EF을 평가하기 위해 제시이러한 트리 판 블루 배제에 의한 세포 생존의 판정, 유동 세포 계측법 넥신 V와 아폽토시스에 대한 염색 및 IFN-γ 효소 면역 분석법에 의해 기능의 평가와 셀 64의 Cu-방사성 표지의 fects (ELISA) . 또한, 세포 내로 흡수하고 방사성 표지 안정성의 판정을 상세히 설명한다. 이 프로토콜은 상기 따라서, BALB / c 마우스에서 코바 유발 급성기도 DHTR의 유도가 포함되어기도 DTHR에 대한 동물 모델에서 세포 추적 연구를 수행하는 방법을 설명한다. 마지막으로, 이미지 획득, 재구성, 및 분석을 포함하는 강력 PET / CT 흐름이 제공된다.

후속 수용체 내재화와 CU-64 수용체 항체 타겟팅 방법은 셀 공통 표지 용 PET-트레이서에 비해 높은 안정성 및 특이성 감소 세포 독성, 낮은 유출 속도를 제공 64의 Cu-pyruvaldehyde 비스 (N4-methylthiosemicarbazone) (64 CU-PTSM). 마지막으로, 우리의 방법은 48 시간을위한 최적의 신호 대 백그라운드 비율 PET / CT 생체 내 세포 추적 침습적 수있다. 이러한 실험 방법은 내재화되는 막 결합 수용체와 동물 모델과 다른 종류의 세포에 전달 될 수있다.

Introduction

비 침습적 셀 추적은 생체 내에서 세포 기능, 이동과 원점을 모니터링하는 다용도 공구이다. 최근 세포 추적 연구는 재생 의학, 암 3, 4에 대한 입양 세포 치료에 염증이나 T 림프구에서자가 말초 백혈구의 맥락에서 중간 엽 1, 2 또는 골수 유래 줄기 세포 3에 초점을 맞추고있다. 행동의 사이트 및 세포 기반 치료의 기본 생물학적 원리의 해명은 엄청난 중요하다. CD8 + 세포 독성 T 림프구는 유전자 널리 금 표준으로 간주 하였다 키메라 항원 수용체 (CAR) T 세포 또는 종양 침윤 림프구 (TILS)를 설계. 그러나, 종양 관련 항원 특이 TH1 세포는 <효과적인 대안 치료 옵션 4, 입증했다/ SUP> 5, 6, 7.

키 염증 플레이어, 기관 고유의자가 면역 질환 (예를 들어, 류마티스 관절염 또는 기관지 천식), 암 면역 요법에 높은 관심의 세포, TH1 세포의 시간적 분포와 유도 패턴을 특성화하는 것이 중요하다. PET에 의한 비 침습적 생체 이미징 생체 원위치에서 세포의 이동 패턴을 조사하는 계량 고도로 민감한 방법 (8)을 제공하고, 염증, 알레르기, 감염 또는 종양 거부 9, 10, 11 중 T 세포의 작용과 반응 사이트.

임상 적으로, 인 옥신 (111)는 2- 데 옥시 -2- (18 동안, 염증 및 감염 (12)의 판정에 대한 백혈구 신티에 사용F) 플루오로 -D- 글루코스 (FDG-18 F)는 일반적으로 PET (3),(13)에 의해 추적 연구에 사용된다. 이 PET 추적자 하나의 큰 단점은, 그러나, 109.7 분의 핵종 18 F 이후 시점에서 촬상이 대체 세포 이동을 저해 게시 낮은 세포 내 안정성의 짧은 반감기이다. 세포 불안정하지만, 64의 Cu-PTSM 빈번하게하는 데 사용되는 PET 생체 내 세포 추적 연구에서 장기에 대해 비특이적 전지 (14), T 세포 생존에 최소화 해로운 효과 (15)에 라벨 (16) 기능을한다.

이 프로토콜은 또한 T 세포 수용체 (TCR) 특이 방사성 표지 된 항체를 이용하여 세포 생존 및 기능에 대한 불리한 영향을 줄이는 방법을 설명한다. 우선, 방사성 동위 원소 64의 Cu, 제 KJ1-26와 단클론 항체의 결합의 제조E DOTA 킬레이트 및 후속 CU-64 방사성 표지를 나타낸다. 제 2 단계에서, 상기 절연 및 DO11.10 공여 마우스의 코바-TH1 세포의 확장 및 64의 Cu-DOTA로드 공역 단클론 KJ1-26 (64 CU-DOTA-KJ1-26)와 방사성 표지를 상세히 설명한다. 흡수 값 및 도즈 교정과 방사능 유출과 각각 감마 계수에 의해 평가뿐만 아니라, IFN-γ ELISA가 제시와 트립 판 블루 배제 및 기능에 의한 세포 생존율의 64 CU-방사성 표지의 효과의 평가 . 생체 세포의 추적 비 침습적 들어, 대체 세포 전사 후에 PET / CT 의해 COVA 유발 급성기도 DTHR 및 이미지 획득의 마우스 모델의 도출을 설명한다.

또한,이 라벨 접근 방식은 다른 질병 모델, 다른 TCR도 또는 막 결합 수용체 또는 식 마르와 관심의 일반 세포와 쥐의 T 세포로 전송할 수 있습니다KERS 연속 막 (17)을 왕복 밑에.

Protocol

안전주의 사항 : 방사능을 처리 할 때, 2 인치 두께의 납 벽돌 뒤에 (64) 구리를 저장하고 활동을 운반하는 모든 선박에 대한 각각의 차폐를 사용합니다. 간접적으로 직접 손 접촉을 방지하고 방사성 물질에 대한 노출을 최소화하기 위해 차폐 소스를 처리하기 위해 적절한 도구를 사용하십시오. 항상 방사선 선량 모니터링 배지 및 개인 보호 장비를 착용하고 자신을 확인하고 오염의 작업 ?…

Representative Results

도 1은 64의 Cu-DOTA-KJ1-26 단클론 및 시험 관내 및이 프로토콜에 덮여 생체 내 연구에서의 실험 디자인 COVA-TH1 세포의 표지를 요약 한 것이다. 그림 1 : 64 CU-DOTA-KJ1-26 – 단클론 항체 라벨링 공정 및 실험 설계. 64 CU-…

Discussion

이 프로토콜은 안정적으로 PET에 의해 생체 내 추적 세포를 방사성 표지하는 신뢰할 수있는 쉬운 방법을 제시한다. 64 CU-DOTA-KJ1-26 – 단클론 항체 및 그 유도와 방사성 표지 수, 코바-TH1 세포, 절연 및 기증자 마우스의 체외에서 확장이 방법을 수 활용하는 A의 코바 프레젠테이션의 사이트로 폐와 perithymic 림프절을 추적했다 급성기도 DTHR을 COVA 유도.

킬레이?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 실험 및 데이터 분석시 지원을 위해 박사 줄리아 만하임, 월터 에를리치만, 라모나 스텀, Funda 케이, 다니엘 부칼라, 마렌 하란트뿐만 아니라 나탈리 Altmeyer 감사합니다. 이 작품은 베르너 지멘스-재단, SFB685 통해 DFG (프로젝트 B6)과 재산 (2309-0-0)에 의해 지원되었다.

Materials

HCl, Suprapur Merck, Darmstadt, Germany 1.00318 64Cu production
Methanol, Suprapur Merck, Darmstadt, Germany 1.06007 64Cu production
Isopropanol, Suprapur Merck, Darmstadt, Germany 1.0104 64Cu production
Pt/Ir (90/10) plate Ögussa Custom made 64Cu production
PEEK chamber Ögussa Custom made 64Cu production
64Ni Chemotrade 64Cu production
Polygram SIL G/UV 254 plate Macherey-Nagel 805021 64Cu production
Ion exchange column BioRad AG1-X8 64Cu production
Solid state target system for PETtrace WKL costum made 64Cu production
64Cu work-up module WKL costum made 64Cu production
Dose calibrator Capintec CRC-25R
PETtrace cyclotron General Electric Medical Systems
DOTA-NHS Macrocyclics B-280 DOTA-conjugation
Anti-cOVA-TCR antibody (KJ1-26) Isolated from hybridoma cell culture DOTA-conjugation
Na2HPO4 Sigma-Aldrich 71633 DOTA-conjugation
H+ Chelex 100 Sigma-Aldrich C7901 DOTA-conjugation
Amicon Ultra-15 filter unit Merck Millipore UFC910008 DOTA-conjugation
Rotipuran ultrapure water Carl Roth HN68.3 DOTA-conjugation
Ammonium acetate Sigma-Aldrich 32301 DOTA-conjugation
PBS University Tuebingen DOTA-conjugation
Micro Bio-spin P-6 column Bio-Rad Laboratories 7326221 DOTA-conjugation
Sodium citrate Sigma-Aldrich 71497 DOTA-conjugation
Cyclone Plus PhosphorImager  Perkin-Elmer L2250116 DOTA-conjugation
DMEM Merck Millipore 102568 ingredient for T cell medium 
FCS Merck Millipore S0115/1004B ingredient for T cell medium 
Sodium pyruvate Merck Millipore L0473 ingredient for T cell medium 
MEM-amino acids Merck Millipore K0293 ingredient for T cell medium 
HEPES  Merck Millipore L 1613 ingredient for T cell medium 
 Penicillin/Streptomycin Merck Millipore A2212 ingredient for T cell medium 
0.05 mM 2-β-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148 ingredient for T cell medium 
DO11.10 mice in-house breeding TH1 cell culture
DPBS Gibco 14190144 TH1 cell culture
Cell strainer 40 µm  Corning 352340 TH1 cell culture
ACK Lysing Buffer Lonza 10-548E TH1 cell culture
CD4 MicroBeads, mouse Miltenyi Biotech 130-097-145 TH1 cell culture
QuadroMACS separator Miltenyi Biotech 130-090-976 TH1 cell culture
LS column Miltenyi Biotech 130-042-401 TH1 cell culture
anti-CD4 antibody (Gk1.5) Isolated from hybridoma cell culture TH1 cell culture
anti-CD8 antibody (5367.2) Isolated from hybridoma cell culture TH1 cell culture
Anti-rat antibody (MAR18.5) Isolated from hybridoma cell culture TH1 cell culture
Rabbit complement MA tebu-Bio CL3221 TH1 cell culture
Anti-IL-4 antibody (11B11) Isolated from hybridoma cell culture TH1 cell culture
cOVA 323-339-peptide  EMC-micro-collections Custom order TH1 cell culture
CPG1668-oligonucleotides Eurofins MWG Operon Custom order TH1 cell culture
IL-2 Novartis 65483-116-07 TH1 cell culture
96-well plates Greiner  655180 TH1 cell culture
24-well plates Greiner  662160 TH1 cell culture
cell culture flask Greiner  660175 TH1 cell culture
48-well plates Greiner  677 180 cell labeling
Gammacell 1000 Best Theratronics via inquiry 
Gulmay RT225 Gulmay via inquiry 
Trypan blue Merck Millipore L6323 in vitro evaluation
Mouse IFN-γ ELISA BD Biosciences 558258 in vitro evaluation
PE Annexin V Apoptosis Detection Kit  BD Biosciences 559763 in vitro evaluation
Tube 5 ml Sarstedt 55.476 in vitro evaluation
Round-bottom tubes  BD Biosciences 352008 in vitro evaluation
Wizard γ-counter Perkin-Elmer 2480-0010 in vitro evaluation
ELISA Reader MultiscanEX Thermo Fisher Scientific 51118177 in vitro evaluation
Microscope Leica via inquiry  in vitro evaluation
BD LSRII  BD Biosciences via inquiry  in vitro evaluation
BALB/c mice Charles River 028 in vivo cell trafficking
Aluminum gel Serva Electrophoresis 12261.01 in vivo cell trafficking
Xylazine Bayer HealthCare Ordered via University hospital in vivo cell trafficking
Ketamine Ratiopharm Ordered via University hospital in vivo cell trafficking
Isoflurane CP-Pharma Ordered via University hospital in vivo cell trafficking
30G needle BD Biosciences 304000 in vivo cell trafficking
Syringe BD Biosciences 11612491 in vivo cell trafficking
Capillaries 10 µl VWR 612-2439
Inveon PET scanner Siemens Healthineers no longer available in vivo cell trafficking, alternative companies: Bruker, Mediso 
Inveon SPECT/CT scanner Siemens Healthineers no longer available in vivo cell trafficking
Inveon Research Workplace Siemens Healthineers image analysis, alternative software: Pmod

Referências

  1. Cerri, S., et al. Intracarotid Infusion of Mesenchymal Stem Cells in an Animal Model of Parkinson’s Disease, Focusing on Cell Distribution and Neuroprotective and Behavioral Effects. Stem Cells Trans Med. 4 (9), 1073-1085 (2015).
  2. Hasenbach, K., et al. Monitoring the glioma tropism of bone marrow-derived progenitor cells by 2-photon laser scanning microscopy and positron emission tomography. Neuro Oncol. 14 (4), 471-481 (2012).
  3. Sood, V., et al. Biodistribution of 18F-FDG-Labeled Autologous Bone Marrow – Derived Stem Cells in Patients With Type 2 Diabetes Mellitus. Clin Nucl Med. 40 (9), 697-700 (2015).
  4. Perez-Diez, A., et al. CD4 cells can be more efficient at tumor rejection than CD8 cells. Blood. 109 (12), 5346-5354 (2007).
  5. Muranski, P., Restifo, N. P. Adoptive immunotherapy of cancer using CD4+ T cells. Curr. Opin. Immunol. 21 (2), 200-208 (2009).
  6. Braumuller, H., et al. T-helper-1-cell cytokines drive cancer into senescence. Nature. 494 (7437), 361-365 (2013).
  7. Kochenderfer, J. N., et al. Eradication of B-lineage cells and regression of lymphoma in a patient treated with autologous T cells genetically engineered to recognize CD19. Blood. 116 (20), 4099-4102 (2010).
  8. Cherry, S. R. Fundamentals of Positron Emission Tomography and Applications in Preclinical Drug Development. J. Clin. Pharmacol. 41 (5), 482-491 (2001).
  9. Tavaré, R., et al. An Effective Immuno-PET Imaging Method to Monitor CD8-Dependent Responses to Immunotherapy. Cancer Res. 76 (1), 73-82 (2016).
  10. Tavaré, R., et al. Engineered antibody fragments for immuno-PET imaging of endogenous CD8+ T cells in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 111 (3), 1108-1113 (2014).
  11. Dobrenkov, K., et al. Monitoring the Efficacy of Adoptively Transferred Prostate Cancer-Targeted Human T Lymphocytes with PET and Bioluminescence Imaging. J Nucl Med. 49 (7), 1162-1170 (2008).
  12. Rini, J. N., et al. PET with FDG-labeled Leukocytes versus Scintigraphy with 111In-Oxine-labeled Leukocytes for Detection of Infection. Radiology. 238 (3), 978-987 (2006).
  13. Ritchie, D., et al. In vivo tracking of macrophage activated killer cells to sites of metastatic ovarian carcinoma. Cancer Immunol. Immunother. 56 (2), 155-163 (2006).
  14. Adonai, N., et al. Ex vivo cell labeling with 64Cu-pyruvaldehyde-bis(N4-methylthiosemicarbazone) for imaging cell trafficking in mice with positron-emission tomography. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99 (5), 3030-3035 (2002).
  15. Huang, J., Lee, C. C. I., Sutcliffe, J. L., Cherry, S. R., Tarantal, A. F. Radiolabeling Rhesus Monkey CD34+ Hematopoietic and Mesenchymal Stem Cells with 64Cu-Pyruvaldehyde-Bis(N4-Methylthiosemicarbazone) for MicroPET Imaging. Mol. Imaging. 7 (1), (2008).
  16. Griessinger, C. M., et al. In Vivo Tracking of Th1 Cells by PET Reveals Quantitative and Temporal Distribution and Specific Homing in Lymphatic Tissue. J Nucl Med. 55 (2), 301-307 (2014).
  17. Griessinger, C. M., et al. 64Cu antibody-targeting of the T-cell receptor and subsequent internalization enables in vivo tracking of lymphocytes by PET. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 112 (4), 1161-1166 (2015).
  18. McCarthy, D. W., et al. Efficient production of high specific activity 64Cu using a biomedical cyclotron. Nucl. Med. Biol. 24 (1), 35-43 (1997).
  19. Kalkhof, S., Sinz, A. Chances and pitfalls of chemical cross-linking with amine-reactive N-hydroxysuccinimide esters. Anal. Bioanal. Chem. 392 (1), 305-312 (2008).
  20. Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin Iii, ., J, Isolation and Th17 Differentiation of Naive CD4 T Lymphocytes. J Vis Exp. (79), e50765 (2013).
  21. Flaherty, S., Reynolds, J. M. Mouse Naive CD4+ T Cell Isolation and In vitro Differentiation into T Cell Subsets. J Vis Exp. (98), e52739 (2015).
  22. Judenhofer, M., Wiehr, S., Kukuk, D., Fischer, K., Pichler, B. Chapter 363. Small Animal Imaging. Basics and Practical Guide. , 363-370 (2011).
  23. Phelps, M. E. . PET. Molecular Imaging and Its Biological Applications. , 93-101 (2004).
  24. Wu, A. M. Antibodies and Antimatter: The Resurgence of Immuno-PET. JNM. 50 (1), 2-5 (2009).
  25. Lewis, M. R., et al. In vivo evaluation of pretargeted 64Cu for tumor imaging and therapy. J Nucl Med. 44 (8), 1284-1292 (2003).
  26. Boswell, C. A., et al. Comparative in vivo stability of copper-64-labeled cross-bridged and conventional tetraazamacrocyclic complexes. J Med Chem. 47 (6), 1465-1474 (2004).
  27. Ghosh, S. C., et al. Comparison of DOTA and NODAGA as chelators for (64)Cu-labeled immunoconjugates. Nucl Med Biol. 42 (2), 177-183 (2015).
  28. Johnson, T. E., Birky, B. K. . Health Physics and Radiological Health. , (2011).
  29. Helmchen, F., Denk, W. Deep tissue two-photon microscopy. Nat Meth. 2 (12), 932-940 (2005).
check_url/pt/55270?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hoffmann, S. H. L., Maurer, A., Reck, D. I., Reischl, G., Pichler, B. J., Kneilling, M., Griessinger, C. M. Murine Lymphocyte Labeling by 64Cu-Antibody Receptor Targeting for In Vivo Cell Trafficking by PET/CT. J. Vis. Exp. (122), e55270, doi:10.3791/55270 (2017).

View Video