Summary

Måle og endre Mating Drive i Male<em> Drosophila melanogaster</em

Published: February 15, 2017
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver en atferdsanalyse som bruker mannlige parring stasjonen i Drosophila melanogaste r å studere motivasjon. Ved hjelp av denne metoden, kan forskerne utnytte avansert flue neurogenetic teknikker for å avdekke genetiske, molekylære og cellulære mekanismer som ligger til grunn for denne motivasjonen.

Abstract

Til tross for flere tiår med etterforskning, de nevronale og molekylære grunnlaget for motiverende stater forblir mystisk. Vi har nylig utviklet en ny, reduksjonistisk, og skalerbart system for grundig undersøkelse av motivasjonen med parring stasjonen på mannlig bananflue (Drosophila), metodene som vi detalj her. Den atferds paradigmet sentre på funn at mannlige parring kjøretur synker sammen fruktbarhet i løpet av gjentatte copulations og gjen løpet ~ 3 d. I dette systemet, de kraftige neurogenetic verktøy tilgjengelig i flue konvergere med den genetiske tilgjengelighet og antatte koblingsskjema tilgjengelig for seksuell atferd. Dette konvergens tillater rask isolasjon og avhør av små nevronale populasjoner med spesifikke motiverende funksjoner. Her har vi detalj utforming og gjennomføring av metthet analyse som brukes til å måle og endre frieri motivasjon i den mannlige fly. Ved hjelp av denneanalysen, viser vi også at lav mannlige parring stasjonen kan overvinnes ved å stimulere dopaminerge nevroner. Satiety analysen er enkel, rimelig og robust til påvirkninger av genetisk bakgrunn. Vi forventer at satiety analyse for å generere mange nye innsikt i nevrobiologi motiverende stater.

Introduction

Arbeid i Drosophila har gitt dype og banebrytende innsikt i mange biologiske fenomener, herunder arten av genet 1, prinsipper for embryoutvikling 2, døgnrytme 3, og utvikling og kabling av nervesystemet 4, 5, 6. Motivasjon er fortsatt langt mindre forstått enn disse fenomenene, kanskje på grunn av begrensninger på de systemene som har blitt studert så langt. Motivasjon i fly er primært studert i sammenheng med sult, som presenterer mange utfordringer på grunn av deres forsvinnende liten matinntak per fôring bout og exoskeleton som utelukker klare tegn på fett deponering. Følgelig er det et behov for å utvide de systemer som benyttes for å studere motivasjon i fly.

Vi beskriver en atferds rammeverk for studiet av parring stasjonen iDrosophila. Dette systemet utnytter de neurogenetic verktøyene i fly så vel som tilgjengeligheten 7, 8, 9, 10, 11, 12 og den antatte connectome av dens seksuelt dimorf kretsen 8, 13. I tillegg er mye av det medfødte 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21 og lært 22, 23, 24 sensoriske-motor kretser kontrollerende frieri er utarbeidet i detalj, og gir en sjelden mulighetå finne den eksakte kretsen node hvorpå motivasjon treffer. Vi har nylig rapportert at, i fly, som hos mennesker, dopamin-nivåene er sentrale for mating stasjon 25, 26, 27. Vi har fått genetisk tilgang til relevant dopamin-produserende og motta nevroner i fly, tilrettelegging detaljert molekylær- og krets-nivå analyser av dette bevart fenomenet ved hjelp av analysene vi beskriver her 25.

Vi legger til atferdsanalyser i Zhang et al. 25 en ny flat atferds arena som gjør at video å score, som vi kaller en to-dimensjonale (2D) satiety analyse, en viktig forbedring i forhold til tidligere metoder. Følgelig er den nye analysen mer skalerbar og kvantifiserbar, og derfor mer egnet for genetiske skjermer av gener og neuroner som er involvert i motivasjon. Vi bruker denne nye analysen, sammen med frieri analyser og neurogemagnetiske manipulasjoner, for å demonstrere hvordan man kan måle og endre parring stasjonen i fly.

Protocol

MERK: Denne protokollen beskriver forberedelsene (§§ 1 – 3), gjennomføring (kapittel 4), og analyse (§ 4) 2-D satiety analyser. Deretter bruker dopaminerg stimulering som eksempel § 5 viser hvordan du kan kombinere thermogenetic stimulering med 2-D satiety analyser for å indusere hyperseksualitet. § 6 beskriver 3 måter å bekrefte resultatene av 2-D satiety analyser. Til slutt, § 7 viser hvordan man kan måle utvinning av parring stasjonen i mannlige fluer. 1. Fabricating 8- og 32-kam…

Representative Results

For å karakterisere Drosophila parring stasjon, tre dager gamle, WT Canton-S-hanner ble testet i en to-D metthetsfølelse analysen. I løpet av analysen (4,5 timer), hanner parer et gjennomsnitt på 4,8 ± 0,3 (middelverdi ± standardavvik av middel, SEM) ganger. Parr initiere for det meste i de første 2 timer (78%) (Figur 6A, 6B) og blir mindre hyppig som analysen utvikler seg (figur 6A, 6B). Denne reduksjonen er ikke på grunn av mangel på …

Discussion

Motiverende stater kan bli mett, vedlikeholdt, og gjenvunnet 34. Vi presenterer en 2-D satiety analysen som raskt og robust måler alle disse aspektene ved parring stasjonen i fly. Denne analysen åpner opp muligheten for å bruke avanserte flue genetiske manipulasjoner for å studere de molekylære og krets komponenter av en motivert atferd.

Satiety analysen er avhengig av mannens evne til å retten og parre seg, og å avslutte copulations på riktig tidspunkt. Selv …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Mike Crickmore, Dragana Rogulja, and Michelle Frank for comments on the manuscript. Pavel Gorelik provided technical support for manufacturing the behavioral arenas. This work was conducted in Mike Crickmore’s lab and is also supported by the Whitehall Foundation (Principal Investigator: Dragana Rogulja). S.X.Z. is a Stuart H.Q. and Victoria Quan Fellow at Harvard Medical School.

Materials

1/16 inch clear acrylic McMaster-Carr 8589K12 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
1/8 inch clear acrylic McMaster-Carr 8589K42 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
3/16 inch clear acrylic McMaster-Carr 8560K219 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
1/32 inch black delrin McMaster-Carr 8575K132 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
Hex screws, 1 inch long (50x) McMaster-Carr 92314A115  Used to make arenas. Can be replaced by 3/4 inch screws (92314A113, McMaster-Carr) for 32-chamber arenas.
Thumb nuts (25x) McMaster-Carr 92741A100 Used to make arenas. Can be replaced by regular hex nuts (90480A005, McMaster-Carr).
Camcorder Canon Vixia HF R700 Can be replaced by any consumer comcorder.

Referências

  1. Sturtevant, A. H., Bridges, C. B., Morgan, T. H. The spatial relations of genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 5 (5), 168-173 (1919).
  2. Campos-Ortega, J. A., Hartenstein, V. . The Embryonic Development of Drosophila melanogaster. , (1985).
  3. Hall, J. C. Systems Approaches to Biological Rhythms in Drosophila. Methods in Enzymology. 393, 61-185 (2005).
  4. Luo, L. Rho GTPases in neuronal morphogenesis. Nature reviews. Neuroscience. 1 (3), 173-180 (2000).
  5. Schmucker, D., Clemens, J. C., et al. Drosophila Dscam Is an Axon Guidance Receptor Exhibiting Extraordinary Molecular Diversity. Cell. 101 (6), 671-684 (2000).
  6. Jan, Y. N., Jan, L. Y. HLH proteins, fly neurogenesis, and vertebrate myogenesis. Cell. 75 (5), 827-830 (1993).
  7. Stockinger, P., Kvitsiani, D., et al. Neural circuitry that governs Drosophila male courtship behavior. Cell. 121 (5), 795-807 (2005).
  8. Yu, J. Y., Kanai, M. I., Demir, E., Jefferis, G. S. X. E., Dickson, B. J. Cellular Organization of the Neural Circuit that Drives Drosophila Courtship Behavior. Current biology. 20 (18), 1602-1614 (2010).
  9. Zhou, C., Pan, Y., Robinett, C. C., Meissner, G. W., Baker, B. S. Central Brain Neurons Expressing doublesex Regulate Female Receptivity in Drosophila. Neuron. 83 (1), 149-163 (2014).
  10. Rideout, E. J., Dornan, A. J., Neville, M. C., Eadie, S., Goodwin, S. F. Control of sexual differentiation and behavior by the doublesex gene in Drosophila melanogaster. Nature neuroscience. 13 (4), 458-466 (2010).
  11. Manoli, D. S., Foss, M., Villella, A., Taylor, B. J., Hall, J. C., Baker, B. S. Male-specific fruitless specifies the neural substrates of Drosophila courtship behaviour. Nature. 436 (7049), 395-400 (2005).
  12. Kimura, K. I., Ote, M., Tazawa, T., Yamamoto, D. Fruitless specifies sexually dimorphic neural circuitry in the Drosophila brain. Nature. 438 (7065), 229-233 (2005).
  13. Cachero, S., Ostrovsky, A. D., Yu, J. Y., Dickson, B. J., Jefferis, G. S. X. E. Sexual dimorphism in the fly brain. Current biology. 20 (18), 1589-1601 (2010).
  14. Clowney, E. J., Iguchi, S., Bussell, J. J., Scheer, E., Ruta, V. Multimodal Chemosensory Circuits Controlling Male Courtship in Drosophila. Neuron. 87 (5), 1036-1049 (2015).
  15. Kallman, B. R., Kim, H., Scott, K. Excitation and inhibition onto central courtship neurons biases Drosophila mate choice. eLife. 4, e11188 (2015).
  16. von Philipsborn, A. C., Liu, T., Yu, J. Y., Masser, C., Bidaye, S. S., Dickson, B. J. Neuronal control of Drosophila courtship song. Neuron. 69 (3), 509-522 (2011).
  17. Zhou, C., Franconville, R., Vaughan, A. G., Robinett, C. C., Jayaraman, V., Baker, B. S. Central neural circuitry mediating courtship song perception in male Drosophila. eLife. 4, e08477 (2015).
  18. Kohatsu, S., Koganezawa, M., Yamamoto, D. Female contact activates male-specific interneurons that trigger stereotypic courtship behavior in Drosophila. Neuron. 69 (3), 498-508 (2011).
  19. Kohatsu, S., Yamamoto, D. Visually induced initiation of Drosophila innate courtship-like following pursuit is mediated by central excitatory state. Nature Communications. 6, 6457 (2015).
  20. Fan, P., Manoli, D. S., et al. Genetic and neural mechanisms that inhibit Drosophila from mating with other species. Cell. 154 (1), 89-102 (2013).
  21. Kurtovic, A., Widmer, A., Dickson, B. J. A single class of olfactory neurons mediates behavioural responses to a Drosophila sex pheromone. Nature. 446 (7135), 542-546 (2007).
  22. Ejima, A., Smith, B. P. C., et al. Generalization of Courtship Learning in Drosophila Is Mediated by cis-Vaccenyl Acetate. Current Biology. 17, 599-605 (2007).
  23. Keleman, K., Vrontou, E., Krüttner, S., Yu, J. Y., Kurtovic-Kozaric, A., Dickson, B. J. Dopamine neurons modulate pheromone responses in Drosophila courtship learning. Nature. 489 (7414), 145-149 (2012).
  24. Pan, Y., Baker, B. S. Genetic Identification and Separation of Innate and Experience-Dependent Courtship Behaviors in Drosophila. Cell. 156 (1-2), 236-248 (2014).
  25. Zhang, S. X., Rogulja, D., Crickmore, M. A. Dopaminergic Circuitry Underlying Mating Drive. Neuron. 91 (1), 168-181 (2016).
  26. Bowers, M. B., Van Woert, M., Davis, L. Sexual behavior during L-dopa treatment for Parkinsonism. The American journal of psychiatry. 127 (12), 1691-1693 (1971).
  27. Sacks, O. W. . Awakenings. , (1999).
  28. Dietzl, G., Chen, D., et al. A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila. Nature. 448 (7150), 151-156 (2007).
  29. Crickmore, M. A., Vosshall, L. B. Opposing dopaminergic and GABAergic neurons control the duration and persistence of copulation in Drosophila. Cell. 155 (4), 881-893 (2013).
  30. Peng, J., Chen, S., Busser, S., Liu, H., Honegger, T., Kubli, E. Gradual Release of Sperm Bound Sex-Peptide Controls Female Postmating Behavior in Drosophila. Current biology. 15 (3), 207-213 (2005).
  31. Yapici, N., Kim, Y. J., Ribeiro, C., Dickson, B. J. A receptor that mediates the post-mating switch in Drosophila reproductive behaviour. Nature. 451 (7174), 33-37 (2008).
  32. Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. Journal of Visualized Experiments. 36 (36), 1-5 (2010).
  33. Cook, R., Cook, A. The Attractiveness to males of female Drosophila melanogaster: effects of mating, age and diet. Animal behaviour. 23, 521-526 (1975).
  34. Toates, F. M. . Motivational Systems (Problems in the Behavioural Sciences). , (1986).
  35. Hall, J. C. The mating of a fly. Science. 264 (5166), 1702-1714 (1994).
  36. Simpson, J. H. Mapping and manipulating neural circuits in the fly brain. Advances in genetics. 65 (9), 79-143 (2009).
  37. Venken, K. J. T., Simpson, J. H., Bellen, H. J. Genetic Manipulation of Genes and Cells in the Nervous System of the Fruit. Neuron. 72 (2), 202-230 (2011).
  38. Klapoetke, N. C., Murata, Y., et al. Independent optical excitation of distinct neural populations. Nature methods. 11 (3), 338-346 (2014).
  39. Bellen, H. J., Levis, R. W., et al. The BDGP gene disruption project: single transposon insertions associated with 40% of Drosophila genes. Genética. 167 (2), 761-781 (2004).
  40. Spradling, A. C., Stern, D., et al. The Berkeley Drosophila Genome Project gene disruption project: Single P-element insertions mutating 25% of vital Drosophila genes. Genética. 153 (1), 135-177 (1999).
  41. Parks, A. L., Cook, K. R., et al. Systematic generation of high-resolution deletion coverage of the Drosophila melanogaster genome. Nature genetics. 36 (3), 288-292 (2004).
  42. Matthews, K. A., Kaufman, T. C., Gelbart, W. M. Research resources for Drosophila: the expanding universe. Nature reviews. Genetics. 6 (3), 179-193 (2005).
  43. Ni, J. Q., Liu, L. P., et al. A Drosophila resource of transgenic RNAi lines for neurogenetics. Genética. 182 (4), 1089-1100 (2009).
  44. Ni, J. Q., Zhou, R., et al. A genome-scale shRNA resource for transgenic RNAi in Drosophila. Nature. 8 (5), 405-407 (2011).
check_url/pt/55291?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Boutros, C. L., Miner, L. E., Mazor, O., Zhang, S. X. Measuring and Altering Mating Drive in Male Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (120), e55291, doi:10.3791/55291 (2017).

View Video