Summary

方法来研究上皮转运蛋白功能和表达在纯肠和Caco-2细胞生长在3D

Published: March 16, 2017
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Summary

我们描述了简单的方法来研究肠血清素转运蛋白(SERT)的功能和表达的使用体外细胞培养的Caco-2细胞在三维生长模型和小鼠肠的离体模型的调节。这些方法适用于其他上皮转运的研究。

Abstract

肠上皮具有重要的运输和屏障功能,在身体的正常生理功能中起关键作用,同时提供一个障碍异物。受损的上皮细胞的转运(离子,营养物,或药物)已经与许多疾病相关联,并且可以具有通过影响上皮完整性和肠道微生物以外的转运,如正常生理功能延伸的后果。了解功能和转运蛋白的调控是改进治疗干预的发展至关重要。在上皮运输研究的最大挑战是开发概括了原生肠上皮细胞的重要特征一个合适的模型系统。几个体外细胞培养模型,如的Caco-2,T-84,和HT-29-Cl.19A细胞在上皮转运研究通常使用。这些细胞系代表了还原的方法来电子建模pithelium并已在许多机理研究,包括其上皮 – 微生物相互作用的检查中使用。然而,细胞单层没有准确地反映细胞-细胞相互作用和体内微环境。在三维生长的细胞都显示出有希望用于药物渗透性的研究模型。我们表明,Caco-2细胞在3D可用于研究上皮转运。同样重要的是,在Caco-2细胞的研究与其它型号的补充,以排除细胞特异性的影响,并考虑到天然肠的复杂性。几种方法先前已被用来评估转运,例如在分离的上皮细胞或分离的质膜囊泡外翻囊和吸收的功能。考虑到相对于模型和转运功能的测量在该领域的挑战,我们在这里展示一个协议到生长在3D Caco-2细胞并描述了使用Ussing室中的作为一个有效的方法来测量血清素转运,如在完整偏振光肠上皮。

Introduction

肠上皮配有各种转运蛋白执行许多功能,从营养物质,电解质的吸收(频道,ATP酶,共转运和交换器),和药物的流体分泌和离子在管腔。转运蛋白产生电化学梯度允许在矢量方式的离子或分子的运动。这是通过在极化上皮细胞的顶和底外侧膜的运输系统的非对称分布来实现的。此外,紧密连接,该系绳相邻上皮细胞,通过作为一个屏障心尖和基底外侧膜结构域之间的组件的膜内扩散在这一过程中起重要作用。模拟天然肠的这些特征合适的模型系统( 极性,分化和紧密连接的完整性)都为函数的的研究临界上皮运输系统nality。

对于模型,在肠上皮运输研究目前使用的典型细胞系的Caco-2,完全分化的模式,吸收小肠上皮细胞;和T84细胞或HT-29亚克隆,隐窝衍生大肠上皮细胞1的模型。传统上,这些细胞系生长在塑料表面的单层或在涂覆的transwell插入物。反孔细胞培养插入到一定程度,允许偏振细胞基底外侧喂类似于体内环境。然而,在传统的二维培养系统中的限制在于将细胞被迫适应的人工,平坦,刚性表面。因此,天然上皮的生理复杂不准确地反映在二维系统。这一限制已经克服的方法在一个特定的微环境生长的细胞在3D,如胶状蛋白质mixtur即,含有多种细胞外基质成分2,3。尽管如此, 在体外培养物不能模拟的肠上皮细胞,其具有多种细胞类型和在肠道内的特定区域的体系结构的复杂性。因此,使用细胞培养模型的研究需要在本机肠道进一步验证。使用体外三维细胞培养和小鼠肠道黏膜,我们在这里描述的简单方法来研究肠道羟色胺转运(SLC6A4,SERT)的监管。

的SERT转运调节的重要激素和神经递质5-羟色胺(5-HT)的胞外情况,通过经由 Na + /氯迅速运送它依赖性过程。 SERT是抗抑郁的已知靶,并在最近成为胃肠道疾病,如腹泻和肠道炎症的一种新的治疗靶标。方法来调查在肠上皮细胞的5-HT摄取之前已经描述了。例如,生长在塑料支撑物或可渗透插入Caco-2细胞已经显示在两个顶端和基底外侧结构域4呈现氟西汀敏感的3 H-5-HT的摄取。 SERT功能的分离的刷状缘膜囊(BBMVs)从人体器官捐献者小肠中制得的测量也得到了我们5描述。 3人BBVMs H-5-HT的摄取显示出是氟西汀敏感和Na + / Cl 的依赖性,并且呈现出饱和动力学具有300 K m值纳米5。利用类似的方法,我们也预先测定SERT功能如在小鼠肠BBMVs 6 的3 H-5-HT的摄取。然而,纯质膜囊泡的制备需要大量的组织黏膜。其它方法,如radiog的3 H-5-HT的摄取部位raphic可视化,也已预先在豚鼠和大鼠小肠7所示。

在尤斯灌流室提供了一个更生理系统来测量离子,营养物,和在各种上皮组织的药物的输送。在尤斯灌流室技术的主要优点是,它使完整的,偏振肠上皮的电气和运输参数的精确测量。另外,为了尽量减少固有神经肌肉系统的影响,可以进行肠粘膜浆肌剥离调查转运的调节中的上皮8。

我们表明,在三维上生长凝胶状蛋白Caco-2细胞形成中空内腔表达不同心尖和基底外侧标记。这些细胞显示的SERT比2D Caco-2细胞的高表达。方法来种植3D细胞和PErform免疫染色或RNA和蛋白质的提取进行说明。此外,我们描述的方法由TGF-β1,一种多效性细胞因子,利用Ussing室中的技术,研究SERT功能和调节小肠粘膜。

Protocol

1.的Caco-2的三维培养系统肠道转运的研究:成长3D的Caco-2细胞上一种胶状蛋白质混合物解冻生长因子减少胶状蛋白质混合物在冰上8小时(或O / N)在4℃下。一旦解冻,使1毫升或500微升等分试样在-20℃,供以后使用使用或存储。 在培养当天,预冷在冰上培养板(用于RNA和蛋白质的提取)或室载玻片(用于免疫染色)。添加胶状蛋白质混合物的30μL到八孔腔-载玻片(或每一个6孔板的孔…

Representative Results

免疫染色在三维的Caco-2囊肿示于图1。的XY平面内的表示与鬼笔环肽的肌动蛋白染色的三维囊肿以及各别管腔的代表性图像中的图1A中描绘。面向内腔侧表示顶侧。上皮细胞在3D环境中的结果在一个坚固的上皮表型进行培养。在第12天,当肌动蛋白和SERT共染色不同的Caco-2囊肿,示于图1B。在XY平面(从图1A中所示的平面不同)?…

Discussion

作为极化上皮单层以研究肠运输10,11,12,13,14,15的完全分化的Caco-2细胞单层已被广泛使用。然而,以模仿肠上皮细胞的生理组织,出现了在3D一个的Caco-2文化的发展相当大的兴趣。若干三维细胞培养模型为肠上皮细胞的近来已经开发出模拟天然?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Mr. Christopher Manzella, MD/PhD student in the RKG laboratory, for helping to edit and proofread our manuscript.

Materials

10X PBS ATCC ATCC® HTB­37™ Cells
10X PBS Carl Zeiss Microsope for confocal Imaging
3[H]-5-HT  LabtekII 152453 Culturing cells for microscopy
5-HT  Gibco 70013-032 Not a hazardous substance
95%O2- 5%Co2 cylinder KPL 71-00-27 Not a hazardous substance
Agar (for Agar plates) Fischer BP151-100 Acute toxicity, Ora
Agar (for electrode) Sigma G7126-1KG Not a hazardous substance
Alexa FluorPhalloidin Sigma C3867-1VL Not a hazardous substance
BSA Sigma P6148-500G Harmful if swallowed or if inhaled
CaCl2 LifeTechnologies A12380 Not a hazardous substance
CaCo2 Cells Sigma A8806-5G Not a hazardous substance
Cell lysis Buffer  Fischer BP337-100 Not a hazardous substance
Chabered slides Sigma S5886-1KG Not a hazardous substance
Collagen Type-1Solution Sigma S8045-500G
Electrodes Sigma S-0876
EMEM Gibco by Life Technologies 25200-056
 Fetal bovine serum Corning 356234 Used as Extracellular matrix
Fluoxetine Qiagen 74104
 Gentamicin ATCC 30-2003 Cell culture Media
Glycin Cell Signaling, Danvers, MA
Hepes  Roche 11836145001
Indomethacin Gibco by Life Technologies 15070-063
K2HPO4 Gibco by Life Technologies 15710-064
KOH Gibco by Life Technologies 15630-080
L-ascorbic acid  Gibco by Life Technologies 10082147
Liquid scintillation counter  Gibco by Life Technologies 70013–032
LSM710 Meta Physiologic Instruments, San Diego, CA  EM-CSYS-8
Mannitol Physiologic Instruments, San Diego, CA  P2304
Matrigel Physiologic Instruments, San Diego, CA  VCC MC8
MgCl2 Physiologic Instruments, San Diego, CA  DM MC6
Multichannel Voltage/current Clamp Physiologic Instruments, San Diego, CA  P2300
NaCl Physiologic Instruments, San Diego, CA  P2023-100
NaCl Fisher Scientific, Hampton, NH BP1423
NaHCO3 Sigma-Aldrich, St Louis, MO S5886
Normal Goat Serum (10%) Fisher Scientific, Hampton, NH S233
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich, St Louis, MO P288
Pen-Strp Sigma-Aldrich, St Louis, MO C3881
Protein assay reagent Sigma-Aldrich, St Louis, MO 10420
Proteinase Inhibitor Cocktail MEDOX, Chicago, IL  style G- 12300
RNA easy Mini kit Sigma-Aldrich, St Louis, MO M4125
Single Channel Electrode Input Module  Sigma-Aldrich, St Louis, MO A92902
Sliders for snapwell Chambers Sigma-Aldrich, St Louis, MO H9523
Sodium Phosphate (Na2HPO4) Sigma-Aldrich, St Louis, MO F132
Sodium-Hydroxide (NaOH) Sigma-Aldrich, St Louis, MO T7039
TGF-β1 Perkin-Elmer,Waltham, MA NFT1167250UC
TritonX-100 Packard Instruments, Downers Grove, IL B1600
Trypsin EDTA Sigma-Aldrich, St Louis, MO 221473
Tween-20 Bio Rad Laboratories, Hercules, CA 5000006
Ussing Chamber (chamber only) Sigma-Aldrich, St Louis, MO I7378
Ussing Chamber Systems Sigma-Aldrich, St Louis, MO A1296

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Citar este artigo
Anabazhagan, A. N., Chatterjee, I., Priyamvada, S., Kumar, A., Tyagi, S., Saksena, S., Alrefai, W. A., Dudeja, P. K., Gill, R. K. Methods to Study Epithelial Transport Protein Function and Expression in Native Intestine and Caco-2 Cells Grown in 3D. J. Vis. Exp. (121), e55304, doi:10.3791/55304 (2017).

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