Summary

Uso de un método inmunohistoquímico de montaje completo para estudiar la inervación del tracto biliar en<em> Suncus murinus</em

Published: June 15, 2017
doi:

Summary

Un enfoque inmunohistoquímico de montaje completo, para visualizar la expresión de la proteína neurofilamento en el tracto biliar extrahepático en Suncus murinus. Se presenta aquí. Este protocolo se puede utilizar para analizar la inervación de todos los órganos viscerales en S. murinus u otras especies.

Abstract

Este trabajo describe el método de tinción inmunohistoquímica de montaje completo en detalle, usando anticuerpos de proteína de neurofilamento para marcar la inervación del tracto biliar en Suncus murinus ( S. murinus   ). En primer lugar, se disecó el espécimen de S. murinus y se fijó en paraformaldehído al 4% (PFA). En segundo lugar, se realizó un tratamiento enzimático y la inactivación potencial de la peroxidasa endógena. La muestra se expuso entonces al anticuerpo primario, anticuerpo de proteína anti-neurofilamento, durante 3-6 días. A continuación se incubó con el anticuerpo secundario conjugado con peroxidasa de rábano picante. La reacción de color se reveló haciendo reaccionar la muestra con un sustrato de 3,3'-diaminobencidina (DAB). Este método se puede aplicar para analizar la inervación de todos los órganos viscerales. Además, este protocolo también puede adaptarse para probar otros anticuerpos neuronales, pero la optimización de los anticuerposDebe hacerse primero. Este método fue introducido originalmente por Kuratani y Tanaka 1 , 2 , 3 .

Introduction

La musaraña almizcle, Suncus murinus , pertenece a la orden Insectivora y la familia Soricidae. Este diminuto mamífero se distribuye por todo el sudeste asiático y habita en casas y zonas de césped situadas cerca de viviendas humanas o corrales de ganado 4 . Esta especie presenta características morfológicas generales más similares a las humanas que otros animales de laboratorio, como el ratón, la rata y el conejo 5 . Anteriormente, se utilizó inmunotinción de montaje completo con un marcador de neurona periférica para la proteína del neurofilamento de S. murinus (NFP) para marcar los nervios periféricos en el páncreas 6 , la papila duodenal principal 7 , el píloro 8 , la vesícula biliar 5 y el tracto biliar extrahepático 9 .

NFP es un complejo macromolecular que forma parte del citoesqueleto neuronal maduro. Proteína relacionada con los neurofilamentosS median las interacciones entre NFP y el zygosome. Tanto la función enzimática como la estructura de las proteínas de unión están reguladas por el NFP 10 . El complejo NFP está compuesto por tres polipéptidos: NF-L (70 kDa), NF-M (150-160 kDa) y NF-H (200 kDa). NFP se puede encontrar en axones neuronales en el sistema nervioso central y periférico. Se ha demostrado que el anticuerpo anti-NFP humano marca los axones del sistema nervioso central y periférico. Las investigaciones anatómicas y electrofisiológicas han demostrado que el esfínter, la vesícula biliar y el tracto gastrointestinal proximal están conectados 11 , 12 , 13 , 14 . Sin embargo, las características morfológicas de sus conexiones neuronales aún no se han definido.

Este trabajo demuestra el uso de un método de tinción inmunohistoquímica de montaje completo para etiquetar la inervación de S. murinus bilCon un anticuerpo NFP.

Protocol

Todos los procedimientos experimentales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Metropolitana de Tokio (IACUC). Los animales fueron alojados y manejados de acuerdo con la Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio y la Guía para el Cuidado y Uso de Animales Experimentales del Consejo Canadiense de Cuidado de Animales. Utilizamos animales criados y mantenidos en el Laboratorio de Morfología Funcional, Departamento de Ciencias de…

Representative Results

Las Figuras 1 – 4 muestran resultados típicos para fibras nerviosas NFP-positivas en el tracto biliar extrahepático en S. murinus . El anticuerpo contra la NFP identificó de forma reproducible la inervación en toda la imagen del tracto biliar extrahepático ( Figura 1 ), la vesícula biliar ( Figura 2 ), el conducto biliar superior ( Figura 3 ) y el ár…

Discussion

Este trabajo describe el procedimiento experimental para la visualización de la inervación del tracto biliar extrahepático utilizando un anticuerpo contra la proteína neurofilamento. Este protocolo fue adaptado a partir del protocolo descrito por Kuratani y Tanaka 1 , 2 , 3 .

Para este experimento, planifique la línea de tiempo para cada uno de los experimentos, ya que el enfoque de tinción de…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores no tienen reconocimientos.

Materials

orthoperiodic acid Wako 162-00732
papain Wako 164-00172
bovine serum albumin (BSA) Wako 010-15131
sodium azide Nacalai Tesque 312-33
neurofilament protein (NFP) antibody Dako M0762, lot 089, clone: 2F11
peroxidase-conjugated affinity-purified sheep anti-mouse IgG-HRP MBL Code 330
3,3'-diaminobenzidine tetrahydrochloride (DAB) Wako 349-00903
imidazole Sigma I-0125

Referências

  1. Kuratani, S., Tanaka, S., Ishikawa, Y., Zukeran, C. Early development of the hypoglossal nerve in the chick embryo as observed by the whole-mount nerve staining method. Am. J. Anat. 182 (2), 155-168 (1988).
  2. Kuratani, S., Tanaka, S. Peripheral development of the avian vagus nerve with special reference to the morphological innervation of heart and lung. Anat. Embryol. (Berl). 182 (5), 435-445 (1990).
  3. Kuratani, S., Tanaka, S. Peripheral development of avian trigeminal nerves. Am. J. Anat. 187 (1), 65-80 (1990).
  4. Yi, S. Q., et al. House musk shrew, Suncus murinus: a novel and natural obesity-resistant animal model. Obes. Metab. 6, 22-28 (2010).
  5. Yi, S. Q., et al. Surgical anatomy of innervation of the gallbladder in humans and Suncus murinus with special reference to morphological understanding of gallstone formation after gastrectomy. World J. Gastroenterol. 13 (14), 2066-2071 (2007).
  6. Yi, S. Q., et al. Anatomical study of the pancreas in the house musk shrew, Suncus murinus, with special reference to the blood supply and innervation. Anat. Rec. A Discov. Mol. Cell Evol. Biol. 273 (1), 630-635 (2003).
  7. Yi, S. Q., et al. Surgical anatomy of the innervation of the major duodenal papilla in humans and Suncus murinus, from the perspective of preserving innervation in organ-saving procedures. Pancreas. 30 (3), 211-217 (2005).
  8. Yi, S. Q., et al. Surgical anatomy of the innervation of the pylorus in humans and Suncus murinus, in relation to the surgical technique for pylorus-preserving pancreatoduodenectomy. World J. Gastroenterol. 12 (14), 2209-2216 (2006).
  9. Yi, S. Q., Ren, K., Kinoshita, M., Takano, N., Itoh, M., Ozaki, N. Innervation of Extrahepatic Biliary Tract, With Special Reference to the Direct Bidirectional Neural Connections of the Gall Bladder, Sphincter of Oddi and Duodenum in Suncus murinus, in Whole-Mount Immunohistochemical Study. Anat. Histol. Embryol. 45 (3), 184-188 (2016).
  10. Wang, H., et al. Neurofilament proteins in axonal regeneration and neurodegenerative diseases. Neural Regen. Res. 7 (8), 620-626 (2012).
  11. Wyatt, A. P. The relationship of the sphincter of Oddi to the stomach, duodenum and gall-bladder. J. Physiol. 193 (2), 225-243 (1967).
  12. Mawe, G. M., Kennedy, A. L. Duodenal neurons provide nicotinic fast synaptic input to sphincter of Oddi neurons in guinea pig. Am. J. Physiol. 277, G226-G234 (1999).
  13. Seo, J. H., Cho, S. S., Lee, I. S., Lee, H. S. Anatomical and neuropeptidergic properties of the duodenal neurons projecting to the gallbladder in the golden hamster. Arch. Histol. Cytol. 65 (4), 317-321 (2002).
  14. Padbury, R. T., Furness, J. B., Baker, R. A., Toouli, J., Messenger, J. P. Projections of nerve cells from the duodenum to the sphincter of Oddi and gallbladder of the Australian possum. Gastroenterology. 104 (1), 130-136 (1993).
  15. White, J. J., Reeber, S. L., Hawkes, R., Sillitoe, R. V. Wholemount immunohistochemistry for revealing complex brain topography. J. Vis. Exp. (62), e4042 (2012).
check_url/pt/55483?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ren, K., Dai, Y., Yi, K., Kinoshita, M., Itoh, M., Sakata, I., Sakai, T., Yi, S. Using a Whole-mount Immunohistochemical Method to Study the Innervation of the Biliary Tract in Suncus murinus. J. Vis. Exp. (124), e55483, doi:10.3791/55483 (2017).

View Video