Summary

In vitro- metoder for sammenligning av målbinding og CDC-induksjon mellom terapeutiske antistoffer: applikasjoner i biosimilaritetsanalyse

Published: May 04, 2017
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver in vitro-sammenligning av to viktige funksjonelle egenskaper rituximab: målbindingsdomene og komplementavhengig cytotoksisitet (CDC) induksjon. Metodene som ble benyttet for en side-til-side-sammenligning mellom referanse rituximab rituximab og en biosimilar. Disse analyser kan anvendes under biosimilar utvikling eller som en kvalitetskontroll i sin produksjon.

Abstract

Terapeutiske monoklonale antistoffer (mAbs) er relevant ved behandling av forskjellige sykdommer, inkludert kreft. Utviklingen av biosimilar mAbs av farmasøytiske selskaper er en markedsmulighet, men det er også en strategi for å øke narkotika tilgjengelighet og redusere behandlingsrelaterte kostnader. Protokollene som beskrevet her beskriver evalueringen av target-binding og CDC-induksjon med rituximab i Daudi-celler. Disse to funksjonene krever forskjellige strukturelle regioner av antistoff og er relevante for den kliniske virkning indusert av rituximab. Protokollene side-til-side-sammenligning av et referanse rituximab og et markedsført rituximab biosimilar. De evaluerte produktene viste forskjeller både i target-binding og CDC induksjon, noe som antyder at det er underliggende fysikalsk-kjemiske forskjeller, og fremhever behovet for å analysere virkningen av disse forskjeller i klinisk sammenheng. De metoder beskrevet her utgjør enkel og billig in vitro </ Em> modeller for evaluering av aktiviteten til rituximabbiosimilarer. Dermed kan de være nyttige under biosimilar utvikling, så vel som for kvalitetskontroll i biosimilar produksjon. Videre kan de fremstilte metoder ekstrapoleres til andre terapeutiske mAbs.

Introduction

Terapeutiske antistoffer rives rekombinante monoklonale antistoffer (mAbs) som er utviklet for behandling av forskjellige sykdommer, inkludert kreft, autoimmune og kroniske sykdommer, nevrologiske lidelser, og andre 1. Foreløpig har FDA gitt godkjenning til mer enn 40 terapeutiske mAbs, og flere er ventet å komme på markedet i de neste årene.

Rituximab er et høy-affinitet kimært monoklonalt IgG1 antistoff godkjent for behandling av CD20 + B-celle-non-Hodgkins lymfom (NHL), CD20 + follikulær NHL, kronisk lymfocytisk leukemi, og reumatoid artritt 2, 3. Erkjennelsen av CD20, som er overuttrykt i B-celler, ved rituximab induserer apoptose; komplement aktivering; og antistoffavhengig cellemediert cytotoksisitet (ADCC) 3. Patentene av dette stoffet utløpt i Europa og i USA i 2013 og 2016, Henholdsvis. Dermed utvikler farmasøytiske selskaper over hele verden rituximabbiosimilarer. Som i ethvert annet legemiddel til konsum, krever biosimilarer godkjenning fra reguleringsorganer. Internasjonale retningslinjer indikerer at for mAbs bør biosimilaritet påvises ved å sammenligne de fysisk-kjemiske egenskapene, farmakokinetikken, effekten og sikkerheten til de nye og referanseproduktene 4 .

Følgelig må metodene som brukes i slike sammenligninger vurdere de strukturelle og funksjonelle egenskapene til mAbs, spesielt de med klinisk relevans. Til det formål viser in vitro- analyser flere fordeler i forhold til in vivo- eksperimenter (gjennomgått i Chapman et al. ) 5 : i) in vitro- studier er mer sensitive for forskjeller mellom de foreslåtte biosimilar og referanseproduktet; Ii) in vivo studier må utføres i relevante arter, som for mange mAbs erikke-humane primater; og iii) siden virkningsmekanisme, den prekliniske toksikologi, og de kliniske virkningene av referanseproduktet er vel kjent in vivo-studier med biosimilars kan ikke gi ytterligere nyttig informasjon. Følgelig EUs Veiledning for biosimilars gjør kandidatene til å gå inn kliniske studier basert på robust in vitro-data alene seks.

Her presenterer vi to raske, økonomiske og enkle analyser som evaluerer den biologiske aktiviteten til rituximab ved hjelp av CD20 + dyrkede celler. Disse analysene kan inngå som en del av sammenlignbarhet øvelsen for rituximab biosimilar kandidater.

Protocol

1. Evaluering av målbinding ved hjelp av flytcytometri Fremstilling av biologiske materialer og reagenser Lag 500 ml RPMI-dyrkningsmedium tilsatt 10% varmeinaktivert føtalt bovint serum (H-IFBS). Kultur Daudi Burkitts lymfom (Daudi) celler og Daudi GFP + celler ved bruk av RPMI og 75 cm 2 kulturflasker. Opprettholde kulturer ved 37 ° C i en 5% CO 2 fuktig atmosfære til de når 6 – 9 x 10 5 celler / ml. Lag 50 ml farg…

Representative Results

Ved hjelp av de protokoller som er beskrevet ovenfor, mål-binding og CDC induksjon av referanse rituximab ble sammenlignet i parallell med de til en biosimilar rituximab produsert og kommersielt tilgjengelig i Asia. I Daudi-celler, både mAbs bundet CD20 på en konsentrasjonsavhengig måte (figur 1D). Ikke-lineære regresjoner av bindingsdataene viste en r 2 på 0,978 og 0,848 for referanse og bios…

Discussion

Patentutløpet av et terapeutisk mAb er å fremme utviklingen av biosimilarer. Dermed er det behov for enkle metoder som kan identifisere forskjeller i klinisk relevante aktiviteter av disse produktene. CD20 + dyrkede celler ble benyttet for evaluering av to sentrale funksjonelle karakteristika ved rituximab: målbinding og CDC-induksjon. Den tidligere aktiviteten krever anerkjennelse av CD20 av Fab-regionen av mAb, mens sistnevnte hovedsakelig avhenger av samspillet mellom Fc-regionen og dets komplement <sup…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne har ingen bekreftelser.

Materials

RPMI-1640 medium ATCC 30-2001 Modify the culture depending on the cell line
Trypan Blue solution Sigma T8154 0.4%, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture
Daudi Burkitt's Lymphoma Cells ATCC CCL-213 You can modify the cell line depending on the antibody of interest
Fetal bovine serum(FBS) GIBCO 16000-044 You can modify the source of serum depending of requirements of the cell line
Normal Human Serum Complement Quidel A113 It is therefore appropriate for use in biocompatibility experiments including drug development, biomaterials testing and other applications
7AA-D BDPharmigen 559925 You can use broad range of color options, compatible with most instrument configurations for to analyze viability.
PECy5 Mouse Anti-human IgG BDPharmigen 551497 Change fluorochrome depending on the filter and laser of your flow cytometer.
Human IgG Isotype Control ThermoFisher Scientific 07-7102 Change depending to mAb
BDCytofix BDPharmigen 554655 Flow Cytometry Fixation Buffer (1-4% formaldehyde or paraformaldehyde )
PBS pH 7.4 10X (Phosphate buffer saline) GIBCO 70011-044 Phosphatebuffer without Ca2+/Mg2+ [137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 8 mM Na2HPO4, 1.46 mM KH2PO4] and endotoxin free.
Cell culture plates 96 well, V-bottom Corning 29442-068 12 x 75 mm round bottom test tubes or 96-well V- or U- bottom microtiter plates
MabThera (Rituximab) Roche Reference product
Rituximab Indian Biosimilar product
15- or 50-mL conical centrifuge tubes Corning 430290 or 430052
Pipette Tips Eppendorf Multiple volume configurations are necessary
Pipettes Eppendorf Adjustable-volume pipettes are necessary
Centrifuge 5430/ 5430R model Eppendorf Refrigerated variable-speed centrifuge (4 to 25 ° C) with speeds ranging from 10 to 30,130 × g
Flow cytometer BD Dickinson BD FACSAria III or other flow cytometer
Olympus optical and light microscope Olympus To quantify and evaluate cell growth
Incubator SANYO Incubatorfor temperature andCO2 control to culture cells
Biological Safety Cabinet CHC BIOLUS Biological safety cabinet that is used to protect the researcher, product and environment.

Referências

  1. Schimizzi, G. F. Biosimilars from a practicing rheumatologist perspective: An overview. Autoimmun Rev. 15 (9), 911-916 (2016).
  2. Cuello, H. A., et al. Comparability of Antibody-Mediated Cell Killing Activity Between a Proposed Biosimilar RTXM83 and the Originator Rituximab. Bio Drugs. 30 (3), 225-231 (2016).
  3. Iwamoto, N., et al. Validated LC/MS Bioanalysis of Rituximab CDR Peptides Using Nano-surface and Molecular-Orientation Limited (nSMOL) Proteolysis. Biol Pharm Bull. 39 (7), 1187-1194 (2016).
  4. Chapman, K., et al. Waiving in vivo studies for monoclonal antibody biosimilar development: National and global challenges. MAbs. 8 (3), 427-435 (2016).
  5. Zembruski, N. C., et al. 7-Aminoactinomycin D for apoptosis staining in flow cytometry. Anal Biochem. 429 (1), 79-81 (2012).
  6. Salinas-Jazmin, N., Hisaki-Itaya, E., Velasco-Velazquez, M. A. A flow cytometry-based assay for the evaluation of antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity (ADCC) in cancer cells. Methods Mol Biol. 1165, 241-252 (2014).
  7. Teeling, J. L., et al. The Biological Activity of Human CD20 Monoclonal Antibodies Is Linked to Unique Epitopes on CD20. J Immunol. 177 (1), 362-371 (2006).
  8. Miranda-Hernandez, M. P., et al. Assessment of physicochemical properties of rituximab related to its immunomodulatory activity. J Immunol Res. 2015, 910763 (2015).
  9. Visser, J., et al. Physicochemical and functional comparability between the proposed biosimilar rituximab GP2013 and originator rituximab. BioDrugs. 27 (5), 495-507 (2013).
  10. Ylera, F., et al. Off-rate screening for selection of high-affinity anti-drug antibodies. Anal Biochem. 441 (2), 208-213 (2013).
  11. Broyer, L., Goetsch, L., Broussas, M. Evaluation of complement-dependent cytotoxicity using ATP measurement and C1q/C4b binding. Methods Mol Biol. 988, 319-329 (2013).
  12. Herbst, R., et al. B-cell depletion in vitro and in vivo with an afucosylated anti-CD19 antibody. J Pharm Exp Ther. 335 (1), 213-222 (2010).
  13. Lazar, G. A., et al. Engineered antibody Fc variants with enhanced effector function. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (11), 4005-4010 (2006).
  14. Winiarska, M., et al. Statins impair antitumor effects of rituximab by inducing conformational changes of CD20. PLoS medicine. 5 (3), e64 (2008).
  15. Zhou, X., Hu, W., Qin, X. The role of complement in the mechanism of action of rituximab for B-cell lymphoma: implications for therapy. Oncologist. 13 (9), 954-966 (2008).
  16. Hayashi, K., et al. Gemcitabine enhances rituximab-mediated complement-dependent cytotoxicity to B cell lymphoma by CD20 upregulation. Cancer Sci. 107 (5), 682-689 (2016).
  17. Mossner, E., et al. Increasing the efficacy of CD20 antibody therapy through the engineering of a new type II anti-CD20 antibody with enhanced direct and immune effector cell-mediated B-cell cytotoxicity. Blood. 115 (22), 4393-4402 (2010).
  18. Lapalombella, R., et al. A novel Raji-Burkitt’s lymphoma model for preclinical and mechanistic evaluation of CD52-targeted immunotherapeutic agents. Clin Cancer Res. 14 (2), 569-578 (2008).
  19. Mitoma, H., et al. Mechanisms for cytotoxic effects of anti-tumor necrosis factor agents on transmembrane tumor necrosis factor alpha-expressing cells: comparison among infliximab, etanercept, and adalimumab. Arthritis Rheum. 58 (5), 1248-1257 (2008).
  20. Kaymakcalan, Z., et al. Comparisons of affinities, avidities, and complement activation of adalimumab, infliximab, and etanercept in binding to soluble and membrane tumor necrosis factor. Clin Immunol. 131 (2), 308-316 (2009).
  21. Zent, C. S., et al. Direct and complement dependent cytotoxicity in CLL cells from patients with high-risk early-intermediate stage chronic lymphocytic leukemia (CLL) treated with alemtuzumab and rituximab. Leuk Res. 32 (12), 1849-1856 (2008).
  22. Goswami, M. T., et al. Regulation of complement-dependent cytotoxicity by TGF-beta-induced epithelial-mesenchymal transition. Oncogene. 35 (15), 1888-1898 (2016).
  23. Wang, A., et al. Induction of anti-EGFR immune response with mimotopes identified from a phage display peptide library by panitumumab. Oncotarget. , (2016).
  24. Ueda, N., et al. The cytotoxic effects of certolizumab pegol and golimumab mediated by transmembrane tumor necrosis factor alpha. Inflamm Bowel Dis. 19 (6), 1224-1231 (2013).
  25. Nesbitt, A., et al. Mechanism of action of certolizumab pegol (CDP870): in vitro comparison with other anti-tumor necrosis factor alpha agents. Inflamm Bowel Dis. 13 (11), 1323-1332 (2007).
  26. Teeling, J. L., et al. Characterization of new human CD20 monoclonal antibodies with potent cytolytic activity against non-Hodgkin lymphomas. Blood. 104 (6), 1793-1800 (2004).

Play Video

Citar este artigo
Salinas-Jazmín, N., González-González, E., Vásquez-Bochm, L. X., Pérez-Tapia, S. M., Velasco-Velázquez, M. A. In Vitro Methods for Comparing Target Binding and CDC Induction Between Therapeutic Antibodies: Applications in Biosimilarity Analysis. J. Vis. Exp. (123), e55542, doi:10.3791/55542 (2017).

View Video