Summary

무선 표지 된 GTP 결합을 통한 G- 단백질 결합 수용체 신호 측정

Published: June 09, 2017
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Summary

Guanosine triphosphate (GTP) 결합은 G-Protein-Coupled Receptor (GPCR) 활성화에서 가장 초기의 사건 중 하나이다. 이 프로토콜은 방사성 표지 된 GTP 유사체 [ 35 S] 구아노 신 -5'-O- (3- 티오) 트리 포스페이트 ([ 35 S] GTPγS)의 결합을 모니터링함으로써 특정 GPCR- 리간드 상호 작용을 약리학 적으로 특성화하는 방법을 설명합니다. 관심있는 리간드에 대한 반응.

Abstract

G- 단백질 결합 수용체 ( G-Protein-Coupled Receptor , GPCRs)는 정상적인 세포 생리학에서 중요한 역할을하는 막 투석 수용체의 큰 계열이며 진통, 혈압 조절 및 정신병 치료와 같은 여러 적응증의 주요 약리학 적 표적을 구성합니다. 리간드 결합시, GPCR은 구아 노신 트리 포스페이트 (GTP)의 혼입을 자극하여 세포 내 G- 단백질의 활성화를 촉매한다. 활성화 된 G- 단백질은 세포 반응을 유도하는 신호 전달 경로를 자극합니다. GPCR 시그널링은 G- 단백질로 [ 35 S] 구아노 신 -5'-O- (3- 티오) 트리 포스페이트 ([ 35 S] GTPγS)의 방사성 표지 및 비 가수 분해성 형태의 결합을 측정함으로써 모니터 할 수있다. 더 많은 하류 신호 전달 과정을 평가하는 다른 방법과 달리, [ 35 S] GTPγS binding은 GPCR 신호 전달에서 근위 사건을 측정하며, 중요하게는,ts, 길항제 및 역작용 제를 포함한다. 현재의 프로토콜은 원형 GPCR, μ-opioid 수용체 (MOR1)의 조질 막 준비를 사용하여 GPCR 신호를 연구하기위한 민감하고 구체적인 방법을 개략적으로 설명합니다. 세포와 조직을 분별하는 대안적인 방법이 있지만, 비용이 많이 들고, 지루하고, 비표준 실험 장비가 필요합니다. 본 방법은 기능성 조 (crude) 막을 풍부하게하는 간단한 절차를 제공한다. MOR1을 분리 한 후, 그 작용제 인 [D-Ala, N-MePhe, Gly-ol] – 엔케팔린 (DAMGO) 및 길항제 인 나록 손의 다양한 약리학 적 성질을 결정 하였다.

Introduction

G- 단백질 결합 수용체 (G-Protein-Coupled Receptor, GPCRs)는 진통, 후각 및 행동을 포함하여 현저한 일련의 생리 학적 과정을 담당하는 세포 표면 수용체의 큰 계열입니다. GPCR은 특정 외부 신호를 감지하고이어서 세포 내 신호를 자극함으로써 작동합니다. 따라서 그들은 세포의 외부 환경과 내부 환경 사이의 주요 연결점을 표시합니다. GPCR이 생물학에서 중요한 역할을하기 때문에, 그들은 기초 연구와 약물 발견 둘 다에 대한 주요 표적이되었다.

이산 리간드에 결합하는 다른 수용체 계열과 달리 GPCR은 매우 다른 유형의 분자에 결합 할 수 있습니다. 하나의 GPCR은 펩타이드와 상호 작용할 수 있지만, 다른 GPCR은 펩티드와 상호 작용할 수 있지만, 다른 GPCR은 펩티드와 상호 작용할 수 있습니다. 그들의 리간드가 다양하지만, GPCR은 전체 건축가에게 통일되어 있습니다.기능 및 기능. 개별 GPCR은 세포 외 아미노 말단과 세포 내 카르 복실 말단을 갖는 7 개의 α 헬리컬 막 횡단 단백질로 이루어져있다. GPCR은 α, β 및 γ 서브 유닛으로 구성된 세포 내 G- 단백질 – 헤테로 트리 메릭 단백질 복합체와 결합되어 다양한 신호 전달 경로를 매개한다. G α 서브 유닛은 구아노 염기 결합 단백질로 guanosine diphosphate (GDP)에 결합 할 때 불활성이고 guanosine triphosphate (GTP) 8,9에 결합 될 때 활성화된다. GPCR이 리간드에 결합 할 때 Gα가 Gβγ로부터 해리되어 Gα가 GTP와 GTP를 교환 할 수 있도록하는 구조 변화가 일어난다. 수용체 그 자체는 다양한 세린 / 트레온에 의해 그의 카르 복실 말단에서 인산화된다ine 키나아제 10 , 11 및 내재화되어 수용체 신호 전달을 약화시킨다 12 , 13 , 14 . 한편 활성화 된 G α 모노머와 G βγ 이합체는 별개의 신호 전달 경로를 활성화시킵니다. 각 G 단백질 subunit에는 여러 가지 isoform이 있으며 각 isoform은 특정 하류 경로와 2 차 메신저 시스템을 대상으로합니다. 주요 G α isoforms에는 G s , G q , G i / o 및 G 12-13이 포함 됩니다. 전형적으로, 개별 GPCR은 특정 G α 이소 형과 결합하여, 외부 자극을 특정 세포 반응 1에 연결 시킨다.

GPCR- 리간드 상호 작용을 특성화하는 것은 수용체의 생물학적 특성을 이해하는 데 중요합니다. GDP / GTP 교환은 초기 이브 중 하나입니다.GTF 결합을 모니터링하는 것은 GPCR 활성화 또는 저해를 측정 할 수있다. GPCR 신호 전달에서 더 많은 하류 현상을 정량하는 것은 정량적 또는 화학량 론적이지 않은 경우가 많으며 전체 작용제를 부분적으로 구별하지 못할 수 있으며 값 비싼 시약이 필요할 수 있습니다. 또한, G α 단백질에 대한 증가 된 GTP 결합은 GPCR 활성화 후 거의 보편적 인 사건이며, 이는 GTP 결합을 측정하는 것이 대부분의 GPCR의 활성을 모니터링하기위한 널리 적용 가능한 분석임을 의미한다. GTP 결합 측정은 관심있는 수용체 또는 토착 조직을 과발현하는 세포에서 GPCR 신호 전달을 모니터링하는 간단하고 신속한 접근법입니다. 본 프로토콜은 GPCR 신호 전달 물질에 작용제와 길항제의 활성을 정량적으로 결정하기 위해 μ-opioid 수용체 (MOR1) 인 archetypal GPCR을 사용하여 기능적 GTP 결합 분석을 상세히 설명합니다.

이 프로토콜은 먼저 MOR1을 과발현하는 세포로부터 조막 세포를 분리하는 방법을 설명합니다. 주의 그쪽으로이 프로토콜은 과발현 시스템에 국한되지 않으며, 다중 수용체 및 G 단백질을 발현하는 천연 조직 또는 제제를 비롯한 많은 막 원천에 적용될 수있다. 프로토콜은 다양한 농도의 [D-Ala, N-MePhe, Gly-ol] – 엔케팔린 (DAMGO) 또는 날 록손 (MOR1 작동 제 및 길항제)에 반응하여 방사성 GTP 유사체의 이들 막에 대한 결합을 측정하는 방법을 상술하고, 각기. GTP 유사체 인 [ 35 S] guanosine-5'-O- (3- thio) triphosphate ([ 35 S] GTPγS)는 가수 분해되지 않는다. G α 서브 유닛은 내재적 인 GTPase 활성을 나타내며 가수 분해 가능한 GTP 방사성 화학 물질에서 표지 된 감마 인산염을 제거하기 때문에이 특성은 중요합니다. 멤브레인을 유리 섬유 필터에 트랩하고 세척 한 후, 방사성 표지 된 GTP를 액체 섬광 계수로 정량화합니다. 여러 약리학 적 매개 변수를 특성에 맞게 유도 할 수 있습니다.길항제 16, 17에 대한 작용제에 대한 절반 최대 반응 (EC 50 ) 및 Hill 계수 (n H ) 및 반감기 최대 억제 농도 (IC 50 ) 및 평형 해리 상수 (K b )를 포함하는 수용체 – , 18 .

Protocol

1. 배양 된 세포에서의 재조합 HA-MOR1의 발현 참고 : 멸균 층류 후드의 모든 세포 배양 프로토콜을 따르십시오. 70 % 에탄올로 세포 배양 층류 후드를 소독하고 세포 배양을 통해 무균 기술을 유지합니다. 2mM L – 글루타민, 1 % 페니실린 / 스트렙토 마이신, 10 % 태아 소 혈청 (FBS (1 %))을 보충 한 인간 배아 신장 세포 293 (HEK293) 세포 배양 배지, Dulbecco 's modified Eagle Me…

Representative Results

세포 분획 화는 세포질 및 핵 단백질로부터 막 관련 단백질을 분리하고 풍부하게하는데 사용될 수 있습니다. 그림 1 은 subcellular 분별 과정에서 수집 할 수있는 세 가지 기본 분량의 내용을 보여주는 서양 얼룩입니다. 구체적으로 그림 1 은 히스톤 H2B와 글리세롤 알데히드 3 인산 탈수소 효소 (GAPDH), 핵 단백질 및 세포질 단백질?…

Discussion

현재의 프로토콜은 세포와 조직을 넓고 구별되는 구획으로 나누는 간단한 접근법과 [ 35 S] GTPγS 결합을 측정하여 GPCR 신호 전달을 조사하는 수단 인 두 가지 분리 된 그러나 보완적인 방법을 기술한다.

효율적인 세포 분획 화는 단백질의 추출 및 농축에서 단백질의 세포 내 지방화 평가, 수용체 약리학 연구에 이르기까지 광범위한 응용 분야를 가지고 있습니다. 세포?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 National Institutes of Health 보조금 DA-000266 및 Medical Scientist Training Program T32 보조금 (CV, NWZ 및 PCS)에 의해 지원되었습니다. 저자는 또한 과학 및 의료 삽화의 도서관에 대한 somersault1824 (somersault1824.com)을 인정하고자합니다.

Materials

DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine Thermo Fisher Scientific 10313021 Warm in 37°C water bath before use
L-glutamine Thermo Fisher Scientific 25030081 Warm in 37°C water bath before use
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122 Warm in 37°C water bath before use
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher Scientific 31985070 Warm in 37°C water bath before use
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 16000044 Warm in 37°C water bath before use
Cell culture 10-cm plate Sigma-Aldrich CLS430167
Lipofectamine 3000 reagent Thermo Fisher Scientific L3000-008
1.6 mL microcentrifuge tubes USA Scientific 1615-5500
4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES) Sigma-Aldrich H3375
Tris(hydroxymethyl)aminomethane (Trizma base) Thermo Fisher Scientific BP152-1
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) Sigma-Aldrich E3889
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E9884
Sucrose Sigma-Aldrich S5016
cOmplete ULTRA Tablets, Mini, EASYpack Protease Inhibitor Cocktail Sigma-Aldrich 2900
DL-Dithiothreitol (DTT) Sigma-Aldrich DO632
Sodium chloride (NaCl) Thermo Fisher Scientific BP358-1
Magnesium chloride (MgCl2) Sigma-Aldrich M1028-1
Pellet pestles motor Sigma-Aldrich Z359971
Pestles Bel Art F19923-0001
Bovine serum albumin (BSA) Affymetrix 10857
[35S]guanosine-5’-O-(3-thio)triphosphate ([35S]GTPγS)  Perkin Elmer NEG030H
non-radiolabeled guanosine-5’-O-(3-thio)triphosphate (GTPγS)  Sigma-Aldrich 89378
guanosine diphosphate (GDP) Sigma-Aldrich 51060
Bradford reagent Bio-Rad 5000006
UV/VIS spectrophotometer Beckman Coulter DU640
spectrophotometer cuvettes USA Scientific 9090-0460
orbital shaker Thermo Fisher Scientific 2314
thermomixer Eppendorf 535027903
glass fiber filters  GE Healthcare Life Sciences 1821-021
vacuum filtration apparatus Millipore Corporation XX2702550
desktop microcentrifuge Eppendorf 65717
Scintillation counter Beckman Coulter LS6500
scintillation fluid  Ecoscint A LS-273
scintillation counter vials Beckman Coulter 592690
scintillation vial lids Beckman Coulter 592928
Prism 6 GraphPad Software PRISM 6
ATP1A1 antibody Developmental Studies Hybridoma a6F 1:1000 in 3% BSA
GAPDH antibody EMD Millipore CB1001 1:5000 in 3% BSA
H2B antibody Cell Signaling 2934S 1:2500 in 3% BSA
PDI antibody Cell Signaling 3501S 1:1000 in 3% BSA
HA antibody Roche 11867423001 1:2000 in 3% BSA

Referências

  1. Kobilka, B. K. G protein coupled receptor structure and activation. Biochim. Biophys. Acta. 1768 (4), 794-807 (2007).
  2. Neubig, R. R., Siderovski, D. P. Regulators of G-protein signalling as new central nervous system drug targets. Nat. Rev. Drug Discov 1. (3), 187-197 (2002).
  3. Overington, J. P., Al-Lazikani, B., Hopkins, A. L. How many drug targets are there?. Nat. Rev. Drug Discov. 5 (12), 993-996 (2006).
  4. Buck, L., Axel, R. A novel multigene family may encode odorant receptors: a molecular basis for odor recognition. Cell. 65 (1), 175-187 (1991).
  5. Kobilka, B. K., et al. Cloning, sequencing, and expression of the gene coding for the human platelet alpha 2-adrenergic receptor. Science. 238 (4827), 650-656 (1987).
  6. Palczewski, K., et al. Crystal structure of rhodopsin: A G protein-coupled receptor. Science. 289 (5480), 739-745 (2000).
  7. Neer, E. J. Heterotrimeric c proteins: organizers of transmembrane signals. Cell. 80 (2), 249-257 (1995).
  8. Londos, C., Salomon, Y. 5′-Guanylylimidodiphosphate, a Potent Activator of Adenylate Cyclase Systems in Eukaryotic Cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 71 (8), 3087-3090 (1974).
  9. Ross, E. M., Gilman, A. G. Resolution of Some Components of Adenylate-Cyclase Necessary for Catalytic Activity. J. Biol. Chem. 252 (20), 6966-6969 (1977).
  10. Stadel, J. M., Nambi, P., Shorr, R., Sawyer, D. F., Caron, M. G., Lefkowitz, R. J. Catecholamine-Induced Desensitization of Turkey Erythrocyte Adenylate-Cyclase Is Associated with Phosphorylation of the Beta-Adrenergic-Receptor. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 80 (11), 3173-3177 (1983).
  11. Wilden, U., Kuhn, H. Light-Dependent Phosphorylation of Rhodopsin – Number of Phosphorylation Sites. Bioquímica. 21 (12), 3014-3022 (1982).
  12. Lohse, M., Benovic, J., Codina, J., Caron, M., Lefkowitz, R. beta-Arrestin: a protein that regulates beta-adrenergic receptor function. Science. 248 (4962), 1547-1550 (1990).
  13. Leftowitz, R. J., Shenoy, S. K. Transduction of receptor signals by beta-arrestins. Science. 308 (5721), 512-517 (2005).
  14. Lefkowitz, R. J. Historical review: a brief history and personal retrospective of seven-transmembrane receptors. Trends Pharmacol. Sci. 25 (8), 413-422 (2004).
  15. Salah-Uddin, H., Thomas, D. R., et al. Pharmacological assessment of m1 muscarinic acetylcholine receptor-gq/11 protein coupling in membranes prepared from postmortem human brain tissue. J. Pharm. Exp. Ther. 325 (3), 869-874 (2008).
  16. Yung-Chi, C., Prusoff, W. H. Relationship between the inhibition constant (K1) and the concentration of inhibitor which causes 50 per cent inhibition (I50) of an enzymatic reaction. Biochem. Pharmacol. 22 (23), 3099-3108 (1973).
  17. Lazareno, S., Birdsall, N. Estimation of competitive antagonist affinity from functional inhibition curves using the Gaddum, Schild and Cheng-Prusoíf equations. Br. J. Pharmacol. 109 (4), 1110-1119 (1993).
  18. Maréchal, E. Chapter 5, Measuring Bioactivity: KI, IC50 and EC50. Chemogenomics and Chemical Genetics. , 55-65 (2011).
  19. Salah-Uddin, H., Thomas, D. R., et al. Pharmacological Assessment of M1 Muscarinic Acetylcholine Receptor-Gq/11 Protein Coupling in Membranes Prepared from Postmortem Human Brain Tissue. J. Pharm. Exp. Ther. 325 (3), 869-874 (2008).
  20. Milligan, G. Principles: extending the utility of [35S]GTP gamma S binding assays. Trends. Pharmacol. Sci. 24 (2), 87-90 (2003).
  21. Harrison, C., Traynor, J. R. The [35S]GTPgammaS binding assay: approaches and applications in pharmacology. Life Sci. 74 (4), 489-508 (2003).
  22. Traynor, J. R., Nahorski, S. R. Modulation by mu-opioid agonists of guanosine-5′-O-(3-[35S]thio)triphosphate binding to membranes from human neuroblastoma SH-SY5Y cells. Mol. Pharmacol. 47 (4), 848-854 (1995).
  23. Sittampalam, G. S., et al. GTPγS Binding Assays. Assay Guidance Manual. , (2004).
  24. Strange, P. G. Use of the GTPγS ([35S]GTPγS and Eu-GTPγS) binding assay for analysis of ligand potency and efficacy at G protein-coupled receptors. Br. J. Pharmacol. 161 (6), 1238-1249 (2010).

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Vasavda, C., Zaccor, N. W., Scherer, P. C., Sumner, C. J., Snyder, S. H. Measuring G-protein-coupled Receptor Signaling via Radio-labeled GTP Binding. J. Vis. Exp. (124), e55561, doi:10.3791/55561 (2017).

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