Summary

Live-cellbildning av blodplättdiplanering och utsöndring under flöde

Published: July 10, 2017
doi:

Summary

Detta arbete beskriver en fluorescensmikroskopibaserad metod för studier av trombocytadhesion, spridning och utsöndring under flöde. Denna mångsidiga plattform möjliggör undersökning av trombocytfunktion för mekanisk forskning om trombos och hemostas.

Abstract

Blodplättar är viktiga aktörer i hemostas, bildandet av trombi för att försegla vaskulära brott. De är också involverade i trombos, bildandet av trombi som ockluderar kärlsystemet och skadade organ, med livshotande konsekvenser. Detta motiverar vetenskaplig forskning om trombocytfunktion och utveckling av metoder för att spåra cellbiologiska processer som de uppträder under flödesförhållanden.

En mängd olika flödesmodeller finns tillgängliga för studier av trombocytadhesion och aggregering, två nyckelfenomen i blodplättsbiologi. I det här arbetet beskrivs en metod för att studera realtid i blodplättens degranulering under flöde under aktivering. Metoden använder sig av en flödeskammare kopplad till en sprutpumpuppsättning som placeras under ett brettfält, inverterat, LED-baserat fluorescensmikroskop. Inställningen som beskrivs här möjliggör samtidig excitering av flera fluoroforer som levereras av fluorescensmärkta antikroppar eller fluorescensEntfärger. Efter experiment med levande celler kan täckglasen bearbetas vidare och analyseras med statisk mikroskopi ( dvs. konfokal mikroskopi eller scanningelektronmikroskopi).

Introduction

Blodplättar är anukleatceller som cirkulerar i blodflödet. Deras huvudsakliga funktion är att försegla vaskulära brott mot skadedjur och förhindra blodförlust. Vid dessa skadeställor blir subendoteliala kollagenfibrer exponerade och täcks därefter av det multimera proteinet, von Willebrand-faktorn (VWF). VWF interagerar med blodplättarna i omlopp i en mekanism som beror på glykoprotein Iba-IX-V-komplexet på cellytan 1 , vilket sänker hastigheten hos blodplättarna. Detta är särskilt viktigt vid höga skjuvhastigheter. Plättarna genomgår därefter morfologiska förändringar under mottagning av aktiveringsimpulser från kollagen. Detta leder till irreversibel spridning och så småningom till trombocytaggregation. Båda förfarandena beror på utsöndringen av granulainnehåll för att underlätta trombocyt-trombocytkroppsstörning. Bland annat innehåller blodplätts-a-granuler fibrinogen och VWF för att hjälpa trombocytadhesion och att överbryggaBlodplättar tillsammans på ett integrationsberoende sätt. De trombocyt-täta granulerna innehåller oorganiska föreningar 2 , innefattande kalcium och adenosindifosfat (ADP), vilket bidrar till att förstärka trombocytaktivering. Vidare innehåller trombocyter mediatorer av (allergisk) inflammation 3 , komplementskontrollande proteiner 4 och angiogenesfaktorer 5 , 6 , som lyfter frågan om huruvida och hur dessa innehåll är differentiellt frisläppta under varierande förhållanden.

Sedan 1980-talet har studien av trombocytfunktion i flödesmodeller varit värdefull för undersökningen av trombotiska mekanismer 7 . Sedan dess har mycket tekniska framsteg gjorts och flödesmodeller som innefattar fibrinbildning utvecklas för närvarande för att analysera den hemostatiska potentialen av terapeutiska blodplättskoncentrat ex vivo 8 eller tillUndersöka påverkan av störningar i skjuvhastigheter på trombusmorfologi 9 . Skillnaderna i molekylära och cellbiologiska mekanismer som driver stabil vidhäftning och fysiologisk trombbildning (hemostas) mot patologisk trombbildning (trombos) kan vara mycket subtila och motivera utvecklingen av flödesmodeller som möjliggör realtidsvisualisering av dessa subcellulära processer.

Ett exempel på ett förfarande för vilket en sådan inställning skulle vara värdefull är (åter) fördelningen av intracellulärt polyfosfat och rekryteringen av koagulationsfaktorer för att avslöja den tidsberoende påverkan som detta har på fibrin-ultrastruktur 10 . Studier är ofta begränsade till slutpunktsanalyser. Huvudsyftet med den beskrivna metoden är att möjliggöra realtidsvisuell undersökning av dynamiska subcellulära processer som äger rum under blodplättsaktivering under flöde.

Protocol

Den lokala medicinska etiska kommittén vid Universitetssjukhuset Utrecht godkände teckning av blod för ex vivo forskningsändamål, inklusive studierna. 1. Lösningsberedning Förbered en 4- (2-hydroxietyl) -1-piperazinetansulfonsyra (HEPES) Tyrodes buffert genom att lösa 10 mM HEPES, 0,5 mM Na2 HPO4, 145 mM NaCl, 5 mM KCl, 1 mM MgSO4 och 5,55 mM D- Glukos i destillerat vatten. Gör två varianter av bufferten: sätt pH-nivåerna vid 6,5 resp…

Representative Results

Figur 1 visar bilder av flödeskammaren och experimentell inställning; Positionen och dimensionerna för kiselplåten; Och slanganslutningar. Figur 2 ger detaljer om flödeskammarens dimensioner. Figur 3 och Film 1 visar en tidsserie av bilder av trombocytadhesion och spridning på immobiliserad VWF. CD63 är ett transmembranprotein som införs i membranet av intracellulära täta …

Discussion

Globalt är trombos en ledande orsak till dödsfall och sjuklighet, och blodplättar spelar en central roll i utvecklingen. I det här arbetet beskrivs en metod för levande celler avbildning av blodplätt degranulering under flöde. Det antas generellt att när alla blodplättar aktiveras frigörs alla granulära innehåll direkt i lösning. De medföljande resultaten tyder på att detta inte nödvändigtvis är fallet. Under vidhäftning och degranulering behåller blodplättar en signifikant mängd polyfosfat ( <stro…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

CM erkänner ekonomiskt stöd från International Patient Organization for C1-Inhibitor Deficiencies (HAEi), Stichting Vrienden van Het UMC Utrecht och Landsteiner Foundation for Blood Transfusion Research (LSBR).

Materials

4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES)  VWR 441476L
Na2HPO4 Sigma S-0876
NaCl Sigma 31434
KCl Sigma 31248
MgSO4 Merck KGaA 1.05886
D-glucose Merck KGaA 1.04074
Prostacyclin  Cayman Chemical 18220
Tri-sodium citrate Merck KGaA 1.06448
Citric acid  Merck KGaA 1.00244
Cover glasses Menzel-Gläser BBAD02400500#A 24x50mm, No. 1 = 0.13-0.16 mm thickness.
Chromosulfuric acid (2% CrO3) Riedel de Haen 07404 CAS [65272-70-0].
Von Willebrand factor (VWF) in-house purified
Fibrinogen Enzyme Research Laboratories FIB3L
4 well dish, non-treated Thermo Scientific 267061
Human Serum Albumin Fraction V Haem Technologies Inc. 823022
Blood collection tubes, 9 ml, 9NC Coagulation Sodium Citrate 3.2% Greiner Bio-One 455322
Cell analyser  Abbott Diagnostics CELL-DYN hematology analyzer
Paraformaldehyde Sigma 30525-89-4 
Syringe pump Harvard Apparatus, Holliston, MA Harvard apparatus 22
10 mL syringe with 14.5 mm diameter BD biosciences 305959 Luer-Lok syringe
Anti-CD63-biotin  Abcam  AB134331
Anti-CD62P-biotin  R&D Systems Dy137
4’,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI) Polysciences Inc.  9224
Streptavidin, Alexa Fluor 488 conjugate Thermo Scientific S11223 
Immersion oil Zeiss 444963-0000-000
Detergent solution Unilever, Biotex
Glycine Sigma 56-40-6 
Polyvinyl alcohol Sigma 9002-89-5 Mowiol 40-88.
Tris hydrochloride Sigma 1185-53-1 
1,4-Diazabicyclo[2.2.2]octane (DABCO) Sigma 280-57-9
Sheep Anti-hVWF pAb Abcam  AB9378
Alexa fluor 488-NHS Thermo Scientific A20000
Glycerol Sigma-Aldrich 15523-1L-R
Parafinn film Bemis PM-996 4 in. x 125 ft. Roll.
Silicone sheet non-reinforced Nagor NA 500-1 200mmx150mmx0.125mm.
Customized cut silicone sheet with perfusion and vacuum channels in-house made Made of Silicone sheet non-reinforced (Nagor, NA 500-1)
1.5 mL tubes Eppendorf AG T9661-1000AE
Fluorescent microscope Zeiss Observer Z1  Equiped with LED excitation lights.
Microscope software Zeiss ZEN 2 blue edition
18 G needle (18 G x 1 1/2") BD biosciences 305196
NaCl Riedel de Haen 31248375
Tris Roche 10708976
Plastic pasteur pipet VWR 612-1681  7 ml non sterile, graduated up to 3ml.
Silicone tubing VWR 228-0656 Inner diamete. x Outer diameter x Wall thickness = 1.02 x 2.16 x 0.57 mm.
Microscope slides Thermo Scientific ABAA000001##12E 76 x 26 x 1 mm, ground edges 45°, frosted end.

Referências

  1. Springer, T. A. von Willebrand factor, Jedi knight of the bloodstream. Blood. 124 (9), 1412-1425 (2014).
  2. Fitch-Tewfik, J. L., Flaumenhaft, R. Platelet granule exocytosis: a comparison with chromaffin cells. Front Endocrinol (Lausanne). 4, 11 (2013).
  3. May, B., Menkens, I., Westermann, E. Differential release of serotonin and histamine from blood platelets of the rabbit by aliphatic and aromatic amines. Life Sci. 6 (19), 2079-2085 (1967).
  4. Schmaier, A. H., Smith, P. M., Colman, R. W. Platelet C1- inhibitor. A secreted alpha-granule protein. J. Clin. Invest. 75 (1), 242-250 (1985).
  5. Battinelli, E. M., Markens, B. A., Italiano, J. E., et al. Release of angiogenesis regulatory proteins from platelet alpha granules: modulation of physiologic and pathologic angiogenesis. Blood. 118 (5), 1359-1369 (2011).
  6. Kamykowski, J., Carlton, P., Sehgal, S., Storrie, B. Quantitative immunofluorescence mapping reveals little functional coclustering of proteins within platelet α-granules. Blood. 118 (5), 1370-1373 (2011).
  7. Sakariassen, K. S., Aarts, P. A., de Groot, P. G., Houdijk, W. P., Sixma, J. J. A perfusion chamber developed to investigate platelet interaction in flowing blood with human vessel wall cells, their extracellular matrix, and purified components. J Lab Clin Med. 102 (4), 522-535 (1983).
  8. Van Aelst, B., Feys, H. B., Devloo, R., Vandekerckhove, P., Compernolle, V. Microfluidic Flow Chambers Using Reconstituted Blood to Model Hemostasis and Platelet Transfusion In Vitro. J Vis Exp. (109), (2016).
  9. Nesbitt, W. S., Westein, E., et al. A shear gradient-dependent platelet aggregation mechanism drives thrombus formation. Nat Med. 15 (6), 665-673 (2009).
  10. Mitchell, J. L., Lionikiene, A. S., et al. Polyphosphate colocalizes with factor XII on platelet-bound fibrin and augments its plasminogen activator activity. Blood. 128 (24), 2834-2845 (2016).
  11. Park, Y., Schoene, N., Harris, W. Mean platelet volume as an indicator of platelet activation: methodological issues. Platelets. 13 (5-6), 301-306 (2002).
  12. Sixma, J. J., de Groot, P. G., van Zanten, H., IJsseldijk, M. A new perfusion chamber to detect platelet adhesion using a small volume of blood. Thromb Res. 92, S43-S46 (1998).
  13. Slack, S. M., Turitto, V. T. Flow chambers and their standardization for use in studies of thrombosis. On behalf of the Subcommittee on Rheology of the Scientific and Standardization Committee of the ISTH. Thromb Haemost. 72 (5), 777-781 (1994).
  14. Oreopoulos, J., Berman, R., Browne, M. Spinning-disk confocal microscopy: present technology and future trends. Methods Cell Biol. 123, 153-175 (2014).
  15. Nishibori, M., Cham, B., McNicol, A., Shalev, A., Jain, N., Gerrard, J. M. The protein CD63 is in platelet dense granules, is deficient in a patient with Hermansky-Pudlak syndrome, and appears identical to granulophysin. J. Clin. Invest. 91 (4), 1775-1782 (1993).
  16. Ruiz, F. A., Lea, C. R., Oldfield, E., Docampo, R. Human platelet dense granules contain polyphosphate and are similar to acidocalcisomes of bacteria and unicellular eukaryotes. J. Biol. Chem. 279 (43), 44250-44257 (2004).
  17. Tersteeg, C., Fijnheer, R., et al. Keeping von Willebrand Factor under Control: Alternatives for ADAMTS13. Semin Thromb Hemost. 42 (1), 9-17 (2016).
  18. Tersteeg, C., de Maat, S., et al. Plasmin cleavage of von Willebrand factor as an emergency bypass for ADAMTS13 deficiency in thrombotic microangiopathy. Circulation. 129 (12), 1320-1331 (2014).
  19. Basir, A., de Groot, P., et al. In Vitro Hemocompatibility Testing of Dyneema Purity Fibers in Blood Contact. Innovations (Phila). 10 (3), 195-201 (2015).
check_url/pt/55658?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Barendrecht, A. D., Verhoef, J. J. F., Pignatelli, S., Pasterkamp, G., Heijnen, H. F. G., Maas, C. Live-cell Imaging of Platelet Degranulation and Secretion Under Flow. J. Vis. Exp. (125), e55658, doi:10.3791/55658 (2017).

View Video