Summary

Glycoengineering מטבולית של חומצה Sialic באמצעות N-acyl השומן-שונה Mannosamines

Published: November 25, 2017
doi:

Summary

חומצה sialic היא אופיינית חד-סוכר-יחידה נמצאו ב- glycoconjugates. זה מעורב שפע של אינטראקציות מולקולרית, תאית. כאן אנו מציגים שיטה כדי לשנות את תא השטח חומצה sialic הביטוי תוך שימוש glycoengineering מטבולית עם N– acetylmannosamine נגזרים.

Abstract

חומצה sialic (Sia) הוא נתין מאוד חשוב glycoconjugates, כגון N-, O– glycans או glycolipids. בשל מיקומו בתחנת טרמיני ללא צמצום של oligo – סוכרים, וכן כימי מאפייניו הייחודיים, חומצה sialic מעורב שפע של קולטן שונים-ליגנד אינטראקציות. על-ידי שינוי הביטוי של חומצה sialic על פני התא, כתוצאה מכך מימוש אינטראקציות תלויי-חומצה sialic. זה יכול להיות מועיל לחקור אינטראקציות תלויי-חומצה sialic, יש פוטנציאל להשפיע על מחלות מסוימות בצורה מועילה. Via glycoengineering מטבולית (MGE), הביטוי של חומצה sialic על פני התא יכול להיות מאופנן. במסמך זה, תאים, רקמות או אפילו כל בעלי החיים מטופלים עם C2-השתנה נגזרות של N– acetylmannosamine (ManNAc). אלה סוכרים אמינו לשמש sialic חומצה קודמן מולקולות, ולכן מטבוליזם המינים חומצה sialic המתאימים, הביע על glycoconjugates. יישום שיטה זו יוצרת אפקטים מסקרן על תהליכים ביולוגיים שונים. לדוגמה, הוא יכול להפחית באופן דרסטי את הביטוי של חומצה polysialic (polySia) התייחס תאים עצביים, ובכך משפיע על גדילה עצביים ובידול. . הנה, אנחנו מראים את הסינתזה של שני נגזרות – acylmannosamine הנפוץ ביותר C2-השתנה N, N– propionylmannosamine (ManNProp) כמו גם N– butanoylmannosamine (ManNBut), בהמשך להראות כיצד אלה הלא טבעי ניתן להחיל אמינו סוכרים בניסויים התרבות תאים. הביטוי של חומצה sialic ששונה מינים לכמת באמצעות כרומטוגרפיה נוזלית ביצועים גבוהים (HPLC), בהמשך נותחו באמצעות ספקטרומטר מסה. ההשפעות על הביטוי חומצה polysialic הם הובהר באמצעות תספיג באמצעות נוגדן חומצה polysialic זמינים מסחרית.

Introduction

חומצה sialic היא חד-סוכר כי בדרך כלל ניתן למצוא בתחנת טרמיני ללא הפחתת של glycoconjugates, כגון N-, O– glycans או glycolipids. בין כל monosaccharides, חומצה sialic יש כמה מאפיינים כימיים ייחודיים. יש שדרה 9 C-אטום, קבוצה קרבוקסילית במיקום C-1, deprotonated, טעונים שלילית ובכך תחת התנאים הפיזיולוגיים, ותפקוד אמינו במצב C-5. למרות מעל 50 באופן טבעי וריאציות של חומצה sialic מאפינים תאריך1, הצורה הדומיננטית של חומצה sialic נמצאו אצל בני אדם הוא N– acetylneuraminic חומצה (Neu5Ac). יונקים אחרים מבטאים גם את כמויות גבוהות יותר של N– glycolylneuraminic חומצה (Neu5Gc)2,3.

בשל מעמדה חשוף glycoconjugates, חומצה sialic מעורב שפע של אינטראקציות קולטן-ליגנד, למשל, הכריכה תלויים hemagglutinin של נגיף שפעת מארח תאים4. Epitope sialic חומצה עם תפקודים ביולוגיים חשובים, במיוחד במהלך מופרה, במערכת העצבים, היא חומצה polysialic. חומצה Polysialic הוא פולימר של עד 200 חומצות sialic אלפא מקושרים-2,8. החלבון העיקרי המוביל של חומצה polysialic היא מולקולת אדהזיה תא עצבי (NCAM). הביטוי חומצה Polysialic שמחליש את המאפיין דבק של NCAM בכך ביטוי חומצה polysialic מקטין את הידבקות ומגביר את הפלסטיות עם מערכת העצבים5.

שינויים בביטוי של חומצה sialic (פולי) בסופו של דבר משפיעים שפע של אינטראקציות ביולוגיים שונים. זה יכול לשמש כדי לחקור תהליכים התלויים חומצה sialic ידועים ברמה המולקולרית, לחשוף את הרומן glycoconjugate אינטראקציות, או לחקור גישות טיפוליות אפשריות. ישנן שיטות שונות זמינים שלפיו הביטוי של חומצה sialic על פני התא יכול להיות מאופנן, למשל טיפול עם חומצה sialic glycosidases ספציפיים (sialidases), עיכוב של אנזימים המעורבים ביוסינטזה חומצה sialic6 7, ,8, או הורסים או שינוי הביטוי של האנזים מפתח של חומצה sialic ביוסינטזה9.

שיטה נוספת תכליתי כדי לווסת את הביטוי חומצה sialic היא MGE (הנדסה מטבולית הידוע גם פחמימה # מיון הפחמימות, מו). במסמך זה, תאים, רקמות או אפילו חיות מטופלים עם נגזרות הלא טבעי של ManNAc אשר C2-אמינו שינויים. להיות קודמן מולקולות של חומצה sialic, לאחר ספיגת תאית, תחליפי ManNAc אלה הן חומצות חד כיווני sialic אל הלא טבעי מטבוליזם, יכול לבוא לידי ביטוי sialylated glycoconjugates. תאים שטופלו ManNAc נגזרים נושאת אליפטיות C2-שינויים, כגון ManNProp או ManNBut, לשלב N– propionylneuraminic חומצה (Neu5Prop) או חומצה – butanoylneuraminic N(Neu5But) שלהם glycoconjugates10 , 11. באמצעות קבוצות פונקציונליות הציג C2-העמדה של ManNAc, חומצות sialic המתרחשים את הלא טבעי יכול להיות יחד, למשל, דרך מצדו Staudinger או את cycloaddition alkine של אזיד, עם צבעי פלורסנט, ולכן דמיינו על פני שטח התא12.

הביטוי של חומצות אלה sialic הלא טבעי יש השפעות מסקרן על תהליכים ביולוגיים רבים, כולל זיהומים הפתוגן, אדהזיה נדידה של תאים סרטניים, אדהזיה תא הכללית, כמו גם vascularization, בידול (לסקירה ראה:. Wratil et al. 13). מעניין, MGE עם N-acyl השומן שונה mannosamines יכול לשמש גם כדי להפריע הביטוי של חומצה polysialic. חומצה Polysialic נוצר על ידי שני polysialyltransferases שונים (ST8SiaII, ST8SiaIV). זה הוכח, כי polysialyltransferase ST8SiaII מעוכבת על ידי סימנים מקדימים חומצה sialic לא טבעי, כגון ManNProp או ManNBut14,15. בנוסף, זה הוכח בתאים אנושיים נוירובלסטומה ManNProp או ManNBut יישום גם מפחית sialylation הכולל15.

MGE עם N-acyl השומן שונה mannosamines הוא קל ליישם את השיטה כבר בהצלחה בשימוש, לא רק מידע יונקים והתרבות תאי חיידקים אלא גם אצל בעלי חיים שלם של מינים שונים, כגון Caenorhabditis elegans16, דג זברה17, או עכברים18,19,20,21. במיוחד ManNAc נגזרים הנושאת שינויים אליפטיות, כולל ManNProp ו- ManNBut, הם החזרה ציטוטוקסיות, אפילו בריכוזים millimolar תא תרבות בינוני או פלזמה. יתר על כן, הם יחסית קל לסנתז.

כאן, אנו מספקים פרטים על אופן השימוש MGE עם N-acetyl שונה mannosamines. קודם כל, הסינתזה של שני נגזרות ManNAc הנפוצה ביותר בתחום זה, ManNProp, ManNBut, הוא הסביר. בשלב הבא, אנו מראים כיצד ניתן ליישם MGE ניסוי ויוו . כדוגמה, שורת התאים נוירובלסטומה קלי נבחר כדי להדגים ירידה בביטוי של epitope polysialic על ידי המערבי כתם לאחר הטיפול עם נגזרות ManNAc. חומצות sialic את הלא טבעי על פני התא לכמת על ידי HPLC, בהמשך נותחו באמצעות ספקטרומטר מסה.

Protocol

1. הכנת Buffers וראגנטים הכנה של 3 מ מ נתרן methoxide פתרון להמיס 8.1 מ ג נתרן methoxide ב 50 מ ל מתנול (3 מ”מ) בבקבוק זכוכית 100 מ עם בר מערבבים. לאחסן בטמפרטורת החדר (RT) למשך מספר שבועות. הכנת מאגר טריס-HCl לשלב 8.766 g NaCl, 157 מ ג טריס-HCl ו- 146 מ ג EDTA בבקבוק זכוכית 100 מ עם בר s…

Representative Results

Chromatograms HPLC של פלורסנט תווית Neu5Ac ואת הסטנדרטים Neu5Gc מתוארת באיור2. באמצעות השיטה המתוארת במסמך זה, התווית על-ידי בנק דיסקונט למשכנתאות Neu5Gc בדרך כלל elutes בין 7-9 דקות • תנאי הזמן, בנק דיסקונט למשכנתאות-Neu5Ac בין 10-12 דקות. מספר פסגות ההרים קטנים יותר chromatogram מופיעים …

Discussion

אם נגזרות מסונתז כימית ManNAc, ManNProp ו- ManNBut הם ניתחו באמצעות ספקטרומטר מסה, צריך להיות מזוהה רק הפסגה המוני הנכון עבור שתי דגימות. לכן, ניתן להניח את המוצרים יש טוהר של מעל 99%. כמויות קטנות של Neu5Gc, אשר בדרך כלל לא נמצא תאים אנושיים29, מזוהים בחלקים הממברנה של התאים lysed. זה קרוב לוודאי מ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים ל’ ד נגוין להגהת כתב היד ועל דיונים פוריים. יתר על כן, אנו מודים Dernedde ג’ וה’ ג’ נגוין שעזרת לנו להכין את. הצילומים. רוב סצנות של הווידאו נורו במעבדות ר טאובר. אנו מודים גם מכון מקס פלנק קולואידים ואמולסיות, ממשקים, ואשר נתן לנו גישה חופשית למתקן ספקטרומטר מסה שלהם. RH נתמכה על ידי DFG (ProMoAge).

Materials

Cells Sigma-Aldrich 92110411
RPMI medium Sigma-Aldrich R8758
75 ml tissue culture flasks Greiner 690175
48-well plates Corning 3548
FCS PAA A15-102
Pen/Strep Gibco 15140-122
Trypsine Gibco 15400-054
EDTA Roth X986.1
Tris Serva 37190.03
SDS Roth 2326.2
SDS-PAGE equipment (tanks, glassware etc., machine VWR SDS Gel/Blot
Acrylamide Roth 3019.1
Protein ladder Fisher Scientific 267620
Nitrocellulose GE Healthcare 10600002
Ponceau red Roth 5938.2
Milk powder Roth T145.3
ECL Millipore WBLUF 0500
0.5 ml Centrifugal Filter Unit with 3 kDa membrane Merck-Millipore UFC500324
15 mL centrifuge tubes Sigma-Aldrich (Corning) CLS430791-500EA
2-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M6250-10ML
2-Propanol Sigma-Aldrich 34965-1L HPLC gradient grade
4,5-Methylenedioxy-1,2-phenylenediamine dihydrochloride Sigma-Aldrich D4784-50MG
48 well, flat bottom tissue culture plate Sigma-Aldrich (Corning) CLS3548-100EA
50 mL centrifuge tubes Sigma-Aldrich (Corning) CLS430829-500EA
Acetonitrile Sigma-Aldrich 34967-1L HPLC gradient grade
Aprotinin from bovine lung Sigma-Aldrich A1153-10MG lyophilized powder, 3-8 TIU/mg solid
Butyryl chloride Sigma-Aldrich 109614-250G
C18 RP column Phenomenex 00F-4435-E0 110 Å, 3 µm particle size, 4.6 x 150 mm
D-Mannosamine hydrochloride Sigma-Aldrich M4670-1G
Dulbecco`s Phosphate Buffered Salt Solution PAN Biotech P04-36500
Ethylenediaminetetraacetic acid Sigma-Aldrich E9884-100G
Formic acid Sigma-Aldrich 56302-50ML-GL
Hydrochloric acid solution Sigma-Aldrich H1758-100ML 36.5-38.0%, in water
Leupeptin Sigma-Aldrich L2884-10MG
Methanol Carl-Roth T169.2 HPLC gradient grade
N-Acetyl-D-mannosamine Sigma-Aldrich A8176-250MG
N-Acetylneuraminic acid Sigma-Aldrich A0812-25MG
N-Glycolylneuraminic acid Sigma-Aldrich G9793-10MG
Phenylmethanesulfonyl fluoride Sigma-Aldrich P7626-250MG
Propionyl chloride Sigma-Aldrich P51559-500G
Safe-Lock Tubes, 1.5 mL, amber (light protection) Eppendorf 30120191
Safe-Lock Tubes, 1.5 mL, colorless Eppendorf 30120086
Sodium bisulfite solution Sigma-Aldrich 13438-1L-R-D 40%, in water
Sodium chloride Sigma-Aldrich 746398-500G-D
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 795429-500G-D
Sodium hydroxide solution Sigma-Aldrich 319511-500ML 1.0 M, in water
Sodium methoxide Sigma-Aldrich 164992-5G
Trifluoroacetic acid Sigma-Aldrich T6508-100ML-D
Tris hydrochloride Sigma-Aldrich T5941-100G
Trypsin 0.25 %/EDTA 0.02 % in PBS PAN Biotech P10-019100
Water Carl-Roth T905.1 HPLC gradient grade
Silica Gel 60 Carl-Roth 9779.1
HPLC Shimadzu

Referências

  1. Angata, T., Varki, A. Chemical diversity in the sialic acids and related alpha-keto acids: An evolutionary perspective. Chem Rev. 102, 439-469 (2002).
  2. Schauer, R., Schoop, H. J., Faillard, H. On biosynthesis of glycolyl group of N-glycolylneuraminic acid. oxidation of N-acetyl group to glycolyl group. Hoppe-Seylers Zeitschrift Fur Physiologische Chemie. 349, (1968).
  3. Irie, A., Koyama, S., Kozutsumi, Y., Kawasaki, T., Suzuki, A. The molecular basis for the absence of N-glycolylneuraminic acid in humans. J Biol Chem. 273, 15866-15871 (1998).
  4. Kelm, S., et al. Use of sialic acid analogues to define functional groups involved in binding to the influenza virus hemagglutinin. Eur J Biochem. 205, 147-153 (1992).
  5. Colley, K. J., Kitajima, K., Sato, C. Polysialic acid: Biosynthesis, novel functions and applications. Crit Rev Biochem Mol Biol. 49, 498-532 (2014).
  6. Rillahan, C. D., et al. Global metabolic inhibitors of sialyl- and fucosyltransferases remodel the glycome. Nat Chem Biol. 8, 661-668 (2012).
  7. Wratil, P. R., et al. A Novel Approach to Decrease Sialic Acid Expression in Cells by a C-3-modified N-Acetylmannosamine. J Biol Chem. 289, 32056-32063 (2014).
  8. Nieto-Garcia, O., et al. Inhibition of the key enzyme of sialic acid biosynthesis by C6-Se modified N-acetylmannosamine analogs. Chem Sci. 7, 3928-3933 (2016).
  9. Keppler, O. T., et al. UDP-GlcNAc 2-epimerase: A regulator of cell surface sialylation. Science. 284, 1372-1376 (1999).
  10. Kayser, H., et al. Biosynthesis of a nonphysiological sialic acid in different rat organs, using N-propanoyl-D-hexosamines as precursors. J Biol Chem. 267, 16934-16938 (1992).
  11. Keppler, O. T., et al. Biosynthetic modulation of sialic acid-dependent virus-receptor interactions of two primate polyoma viruses. J Biol Chem. 270, 1308-1314 (1995).
  12. Laughlin, S. T., Bertozzi, C. R. Imaging the glycome. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 12-17 (2009).
  13. Wratil, P. R., Horstkorte, R., Reutter, W. Metabolic Glycoengineering with N-Acyl Side Chain Modified Mannosamines. Angewandte Chemie International Edition. 55, 9482-9512 (2016).
  14. Horstkorte, R., et al. Selective inhibition of polysialyltransferase ST8Siall by unnatural sialic acids. Exp Cell Res. 298, 268-274 (2004).
  15. Gnanapragassam, V. S., et al. Sialic Acid Metabolic Engineering: A Potential Strategy for the Neuroblastoma Therapy. PLOS ONE. 9, 10 (2014).
  16. Agard, N. J., Prescher, J. A., Bertozzi, C. R. A strain-promoted 3+2 azide-alkyne cycloaddition for covalent modification of blomolecules in living systems. J Am Chem Soc. 126, 15046-15047 (2004).
  17. Dehnert, K. W., et al. Imaging the Sialome during Zebrafish Development with Copper-Free Click Chemistry. ChemBioChem. 13, 353-357 (2012).
  18. Prescher, J. A., Dube, D. H., Bertozzi, C. R. Chemical remodelling of cell surfaces in living animals. Nature. 430, 873-877 (2004).
  19. Neves, A. A., et al. Imaging sialylated tumor cell glycans in vivo. Faseb Journal. 25, 2528-2537 (2011).
  20. Vogt, J., et al. Homeostatic regulation of NCAM polysialylation is critical for correct synaptic targeting. Cell Mol Life Sci. 69, 1179-1191 (2012).
  21. Qiu, L., et al. A novel cancer immunotherapy based on the combination of a synthetic carbohydrate-pulsed dendritic cell vaccine and glycoengineered cancer cells. Oncotarget. 6, 5195-5203 (2015).
  22. Erikson, E., et al. Mouse Siglec-1 Mediates trans-Infection of Surface-bound Murine Leukemia Virus in a Sialic Acid N-Acyl Side Chain-dependent Manner. J Biol Chem. 290, 27345-27359 (2015).
  23. Klein, A., Diaz, S., Ferreira, I., Lamblin, G., Roussel, P., Manzi, A. E. New sialic acids from biological sources identified by a comprehensive and sensitive approach: liquid chromatography-electrospray ionization-mass spectrometry (LC-ESI-MS) of SIA quinoxalinones. Glycobiology. 7, 421-432 (1997).
  24. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during assembly of head of bacteriophage-T4. Nature. 227, (1970).
  25. Orozco-Solano, M. I., Priego-Capote, F., Luque de Castro, M. D. Ultrasound-assisted hydrolysis and chemical derivatization combined to lab-on-valve solid-phase extraction for the determination of sialic acids in human biofluids by µ-liquid chromatography-laser induced fluorescence. Analytica Chimica Acta. 766, 69-76 (2013).
  26. Hara, S., Takemori, Y., Yamaguchi, M., Nakamura, M., Ohkura, Y. Fluorometric high-performance liquid chromatography of N-acetyl- and N-glycolylneuraminic acids and its application to their microdetermination in human and animal sera, glycoproteins, and glycolipids. Anal Biochem. 164, 138-145 (1987).
  27. İzzetoğlu, S., Şahar, U., Şener, E., Deveci, R. Determination of sialic acids in immune system cells (coelomocytes) of sea urchin, Paracentrotus lividus, using capillary LC-ESI-MS/MS. Fish Shellfish Immunol. 36, 181-186 (2014).
  28. Wolf, S., et al. Chemical Synthesis and Enzymatic Testing of CMP-Sialic Acid Derivatives. ChemBioChem. 13, 2605-2615 (2012).
  29. Sonnenburg, J. L., Altheide, T. K., Varki, A. A uniquely human consequence of domain-specific functional adaptation in a sialic acid-binding receptor. Glycobiology. 14, 339-346 (2004).
  30. Oetke, C., et al. Evidence for efficient uptake and incorporation of sialic acid by eukaryotic cells. Eur J Biochem. 268, 4553-4561 (2001).
  31. Buttner, B., et al. Biochemical engineering of cell surface sialic acids stimulates axonal growth. J Neuro. 22, 8869-8875 (2002).
  32. Kontou, M., Weidemann, W., Bork, K., Horstkorte, R. . Biological Chemistry. 390, 575 (2009).
  33. Tanaka, F., et al. Expression of polysialic acid and STX, a human polysialyltransferase, is correlated with tumor progression in non small cell lung cancer. Cancer Res. 60, 3072-3080 (2000).
  34. Cheng, B., Xie, R., Dong, L., Chen, X. Metabolic Remodeling of Cell-Surface Sialic Acids: Principles, Applications, and Recent Advances. ChemBioChem. 17, 11-27 (2016).
  35. Collins, B. E., Fralich, T. J., Itonori, S., Ichikawa, Y., Schnaar, R. L. Conversion of cellular sialic acid expression from N-acetyl- to N-glycolylneuraminic acid using a synthetic precursor, N-glycolylmannosamine pentaacetate: inhibition of myelin-associated glycoprotein binding to neural cells. Glycobiology. 10, 11-20 (2000).
  36. Schwartz, E. L., Hadfield, A. F., Brown, A. E., Sartorelli, A. C. Modification of sialic acid metabolism of murine erythroleukemia cells by analogs of N-acetylmannosamine. Biochimica Et Biophysica Acta. 762, 489-497 (1983).
  37. Jones, M. B., et al. Characterization of the cellular uptake and metabolic conversion of acetylated N-acetylmannosamine (ManNAc) analogues to sialic acids. Biotechnol Bioeng. 85, 394-405 (2004).
  38. Bayer, N. B., et al. Artificial and Natural Sialic Acid Precursors Influence the Angiogenic Capacity of Human Umbilical Vein Endothelial Cells. Molecules. 18, 2571-2586 (2013).
  39. Schmidt, C., Stehling, P., Schnitzer, J., Reutter, W., Horstkorte, R. Biochemical engineering of neural cell surfaces by the synthetic N-propanoyl-substituted neuraminic acid precursor. J Biol Chem. 273, 19146-19152 (1998).
  40. Laughlin, S. T., Bertozzi, C. R. In Vivo Imaging of Caenorhabditis elegans Glycans. ACS Chem Biol. 4, 1068-1072 (2009).
  41. Laughlin, S. T., Baskin, J. M., Amacher, S. L., Bertozzi, C. R. In vivo imaging of membrane-associated glycans in developing zebrafish. Science. 320, 664-667 (2008).
  42. Chang, P. V., et al. Copper-free click chemistry in living animals. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 1821-1826 (2010).
  43. Gagiannis, D., Gossrau, R., Reutter, W., Zimmermann-Kordmann, M., Horstkorte, R. Engineering the sialic acid in organs of mice using N-propanoylmannosamine. Biochimica Et Biophysica Acta-General Subjects. 1770, 297-306 (2007).
  44. Rong, J., et al. Glycan Imaging in Intact Rat Hearts and Glycoproteomic Analysis Reveal the Upregulation of Sialylation during Cardiac Hypertrophy. J Am Chem Soc. 136, 17468-17476 (2014).
  45. Galuska, S. P., et al. Quantification of Nucleotide-Activated Sialic Acids by a Combination of Reduction and Fluorescent Labeling. Anal Chem. 82, 4591-4598 (2010).
  46. Harms, E., Reutter, W. Half-Life Of N-Acetylneuraminic Acid In Plasma-Membranes Of Rat-Liver And Morris Hepatoma 7777. Cancer Res. 34, 3165-3172 (1974).
  47. Kolarich, D., Lepenies, B., Seeberger, P. H. Glycomics, glycoproteomics and the immune system. Curr Opin Chem Biol. 16, 214-220 (2012).
  48. Preidl, J. J., et al. Fluorescent Mimetics of CMP-Neu5Ac Are Highly Potent, Cell-Permeable Polarization Probes of Eukaryotic and Bacterial Sialyltransferases and Inhibit Cellular Sialylation. Angewandte Chemie-International Edition. 53, 5700 (2014).
  49. Macauley, M. S., et al. Systemic Blockade of Sialylation in Mice with a Global Inhibitor of Sialyltransferases. J Biol Chem. 289, 35149-35158 (2014).
  50. Jorge, P., Abdul-Wajid, A. Sialyl-Tn-KLH, glycoconjugate analysis and stability by high-pH anion-exchange chromatography with pulsed amperometric detection (HPAEC-PAD). Glycobiology. 5, 759-764 (1995).
  51. Lin, S. L., Inoue, Y., Inoue, S. Evaluation of high-performance anion-exchange chromatography with pulsed electrochemical and fluorometric detection for extensive application to the analysisof homologous series of oligo- and polysialic acids in bioactive molecules. Glycobiology. 9, 807-814 (1999).
  52. Pan, Y. B., Chefalo, P., Nagy, N., Harding, C., Guo, Z. W. Synthesis and immunological properties of N-modified GM3 antigens as therapeutic cancer vaccines. J Med Chem. 48, 875-883 (2005).
  53. Chefalo, P., Pan, Y. B., Nagy, N., Guo, Z. W., Harding, C. V. Efficient metabolic engineering, of GM3 on tumor cells by N-phenylacetyl-D-mannosamine. Bioquímica. 45, 3733-3739 (2006).
  54. Lee, S., et al. Chemical Tumor-Targeting of Nanoparticles Based on Metabolic Glycoengineering and Click Chemistry. ACS Nano. 8, 2048-2063 (2014).
  55. Koulaxouzidis, G., Reutter, W., Hildebrandt, H., Stark, G. B., Witzel, C. In vivo stimulation of early peripheral axon regeneration by N-propionylmannosamine in the presence of polysialyltransferase ST8SIA2. J Neural Transm. , 1-9 (2015).
  56. Gnanapragassam, V. S., et al. Correction: Sialic Acid Metabolic Engineering: A Potential Strategy for the Neuroblastoma Therapy. PLOS ONE. 11, e0154289 (2016).
check_url/pt/55746?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Wratil, P. R., Horstkorte, R. Metabolic Glycoengineering of Sialic Acid Using N-acyl-modified Mannosamines. J. Vis. Exp. (129), e55746, doi:10.3791/55746 (2017).

View Video