Summary

Noninvasiv prøveudtagning af slimhindebelægning væske til kvantificering af In Vivo øvre luftveje immun-mægler niveauer

Published: August 07, 2017
doi:

Summary

Denne protokol beskriver en noninvasiv teknik til prøveudtagning af uforstyrret slimhindebelægning væske fra de øvre luftveje. Det kan bruges til at udføre kvantificering af in vivo -niveauer af protein mæglere, såsom cytokiner og kemokiner, i emnerne i alle aldre.

Abstract

Denne protokol beskriver noninvasive prøveudtagning af uforstyrret øvre luftveje slimhindebelægning væske. Det beskriver også den ekstraktionsmetode, der anvendes før analysen af immun mæglere i væske eluater for studiet af luftvejene aktuel immun signatur, uden behov for stimulation procedurer (ofte bruges af andre teknikker). Slimhindebelægning væske er udtaget på en strimmel papir, filter placeret på den forreste del af ringere turbinate og venstre for 2 min af absorption. Analysander er elueret fra filter papirer, og de udpakkede proteinbaseret eluater analyseres af en electrochemiluminescence-baseret immunassay, giver mulighed for en høj følsomhed kvantificering af lav og høj niveau analysander i samme prøve. Vi målte in vivo -niveauer af 20 forudvalgt immun mæglere relateret til specifikke immun signalering veje i de øvre luftveje slimhinde, men teknikken er ikke begrænset til at bestemt panel eller prøvetagningsstedet. Teknikken blev først gennemført i 7-årige børn fra København Fremtidsstudier på astma i barndommen2000 (COPSAC2000) kohorte med allergisk rhinitis. Det blev derefter brugt i den langsgående COPSAC2010 fødsel kohorte, stikprøven på 1 måned, 2 år og 6 år, og i tilfælde af akut luftvejssymptomer. Vi med held fremstillet og analyseret prøver fra 620 (89%) af 700 1 måned gamle børn, et par prøver blev under analysen detektionsgrænse (rapporteret som median (inter kvartilen vifte (IQR)). Antallet af prøver under detektionsgrænsen (dvs. fra 0 til sætpunktet for den nedre grænse for opdagelse) for hver mægler blev 29 (7,25-119,5). Denne teknik giver mulighed for kvantificering af in vivo luftvejene slimhinde immun profil fra fødslen, kan anvendes på langs, og kan anvendes til undersøgelser af virkningen af genetik og opvækst miljømæssige eksponeringer, Patofysiologi, endotyping og overvågning af luftvejssygdomme, og udvikling og evaluering af roman therapeutics.

Introduction

Slimhindebelægning væske af næsen udgør den flydende del af øvre luftveje system. Det består af en kompleks matrix af mæglerne stammer fra samspillet mellem epitel og immunceller, der udgør den første linje i forsvaret mod invaderende mikroorganismer. Næseslimhinden er let tilgængeligt, og der er en stærk funktionel og immunologiske forhold mellem næsen og bronkier1. Dette rum er af særlig interesse i forhold til luftvejs-sygdomme, der er almindelige i barndommen, som astma og allergisk rhinitis, men også en række andre luftvejslidelser mere udbredt senere i livet.

Her, beskriver vi gennemførelsen af en metode til at prøve uforstyrret slimhinderne foring væske fra næsehulen ved hjælp af et filter papirbaserede, noninvasiv teknik, samt en efterfølgende ekstraktionsmetode, bruges til at eluere proteinbaseret analysander fra papirfiltre forud for deres kvantificering. Denne teknik kan eksempelvis bruges til at få i vivo immun underskrifter fra både raske personer og personer med forskellige luftvejssygdomme. Derudover er det muligt at undersøge engagementer af betydning for en bestemt immun signatur og at vurdere, om det er en prædiktor eller mægler for senere udvikling af sygdom.

Slimhindebelægning væske har tidligere opnået ved nasal lavage2, som ofte indledes med en nasal udfordring test, hvor et allergen er indført i høj grad til at stimulere en inflammatorisk respons3,4. Men nasal lavage teknik er ikke muligt i småbørn og introducerer en ukendt fortyndingsfaktoren, som tilintetgør resultaterne, som den fortyndede mægler niveauer kan falde til under detektionsgraensen for assay5. Desuden, på grund af ukendte fortyndingsfaktoren, målte analysand svar fra nasal udfordring test er ikke sammenlignelige mellem individer, dermed begrænse nytten af nasal lavage teknik i en kohorte indstilling. Endelig allergen udfordring er kun gældende i overfølsomme over fag, og andre udfordringer, såsom histamin udfordring, er ikke fysiologisk relevante, hvilket potentielt medfører en loft virkning på mediator release. Disse problemer er omgået i præsenteres filtrerpapir-baseret teknik for slimhindebelægning væske samling, hvor den enkelte sekretion af væsker og analysanden niveauer er de eneste faktorer, der påvirker mellem individuelle afvigelse.

Under ekstraktionsmetode, er analysander elueret fra papirfiltre efter tilsætning af identiske diskenheder buffer til alle prøver. Det favoriserer lignende ex vivo fortynding af alle prøver. En ekstraktionsbuffer af albumin-baserede isotonisk saltopløsning bruges til ekstraktionstrinet; Det gør det muligt for udvinding af protein-baserede mæglere og stabiliserer proteiner for at begrænse denaturering under den efterfølgende nedfrysning af elueret proteiner inden kvantificering. For at undgå protein nedbrydning under ekstraktionen fase, er en cocktail for proteasehæmmere tilføjes ekstraktionsbuffer.

Gennemførelsen af teknikker, der giver mulighed for kvantificering af uforstyrret, i vivo-genererede immun mæglere på slimhinden steder er af allerstørste betydning. Først, den slimhinde site gør op den største immunologiske organ i kroppen. For det andet den nasale placering er den primære lokalitet af luftbårne eksponering og er tæt forbundet med den respiratoriske immunologiske rum i lungerne1. For det tredje åbner muligheden for landmåling dette vigtige organ med en noninvasiv teknik mulighed for at give et væld af oplysninger om den vigtige mikrobe-immune interaktion akse i forhold til sundhed og sygdom i luftvejene. For det fjerde er der mange andre mulige anvendelser af denne teknik, som studerer lokale immunologiske forandringer i randomiserede, kontrollerede forsøg hos narkotika og mikronæringsstoffer.

Vi gennemført i første omgang teknikken i København Fremtidsstudier på astma i barndommen2000 (COPSAC2000) kohorte, hvor vi bestemt immun profilen af slimhindebelægning væske i 7-årige børn med allergisk rhinitis versus raske kontrolpersoner13. Efterfølgende, anvendt vi med succes denne teknik til langsgående COPSAC2010 kohorte og vurderet luftvejene immun profiler på 1 måned, 2 år og 6 år, og i tilfælde af akut luftvejssymptomer. Resultater fra 1-måned-forhenværende nyfødte har vist vigtige tilknytninger mellem immun signatur og opvækst miljøeksponering7,8,9,10,11,12.

Protocol

Undersøgelserne blev gennemført i overensstemmelse med hovedprincipperne i Helsinki-erklæringen. Godkendelser fra den etiske komité for København (KF 01-289/96 til COPSAC2000 ) og H-B-2008-093 for COPSAC2010og Dansk Data Protection Agency blev indhentet, og skriftligt informeret samtykke blev opnået fra begge forældre for hvert emne før tilmelding. 1. eksperimentel opsætning Brug ark filtrerpapir (fibrøst hydroxyleret-polyester ark, se Tabel af materialer</strong…

Representative Results

Baseline Characteristics of the Airway Immune Profiles: Complete data on upper airway mucosal immune mediator levels at 1 month of age was obtained in 620 (89%) of the 700 children enrolled in the COPSAC2010 cohort. Ten neonates were enrolled before the technique was established, and 19 did not attend the 1-month visit. Additionally, 47 samples were excluded because they were extracted and measured in another laboratory used in a pilot study, and 4 sample…

Discussion

Med den teknik, der præsenteres her, var vi i stand til at bestemme den i vivo øvre luftvejs slimhinde immun profil hos børn fra så tidligt som 1 måned af alder, som ikke er blevet gjort tidligere. Vi observeret, at tilstedeværelsen af specifikke luftvejs bakterier og picornaviruses7,11, samt andre præ- og perinatal engagementer, var spejlet i luftvejene immun profil af nyfødte. Desuden, vi brugte disse luftvejene immun profildata til undersøgel…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi udtrykker vores taknemmelighed over for børn og familier af COPSAC2010 kohorteundersøgelse for al deres støtte og engagement. Vi anerkender og værdsætter COPSAC forskning team og den tekniske hjælp fra tekniker Lisbeth Buus Rosholm, Danmarks Tekniske Universitet, til måling af cytokiner og kemokiner unikke indsats.

Materials

Fibrous hydroxylatedpolyester sheets Accuwik Ultra  SPR0730 Filter paper
Milliplex Assay Buffer  Millipore L-AB Buffer
low-protein binding storage plates  Thermo Scientific CLS8161 Plates
Protease Inhibitor Roche 11873580001 complete EDTA-free Protease Inhibitor Cocktail
Reader of multi-spot plates Mesoscale NA Sector imager 6000
Assays  Mesoscale Human 10-plex TH1/TH2 cytokine assay and 9-plex chemokine assay, and singleplex IL-17A, TGF-β1and TSLP. A description can be found online on www.mesoscale.com

Referências

  1. Bousquet, J., van Cauwenberge, P., Khaltaev, N. Allergic Rhinitis and Its Impact on Asthma. J Allergy Clin Immunol. 108 (5), 147-334 (2001).
  2. Howarth, P. H., Persson, C. G. A., Meltzer, E. O., Jacobson, M. R., Durham, S. R., Silkoff, P. E. Objective monitoring of nasal airway inflammation in rhinitis. J Allergy Clin Immunol. 115 (3), 414-441 (2005).
  3. Bensch, G. W., Nelson, H. S., Borish, L. C. Evaluation of cytokines in nasal secretions after nasal antigen challenge: lack of influence of antihistamines. Ann Allergy Asthma Immunol. 88 (5), 457-462 (2002).
  4. Sussman, G. L., Mason, J., Compton, D., Stewart, J., Ricard, N. The efficacy and safety of fexofenadine HCl and pseudoephedrine, alone and in combination, in seasonal allergic rhinitis. J Allergy Clin Immunol. 104 (1), 100-106 (1999).
  5. Bisgaard, H., Robinson, C., Rømeling, F., Mygind, N., Church, M., Holgate, S. T. Leukotriene C4 and histamine in early allergic reaction in the nose. Allergy. 43 (3), 219-227 (1988).
  6. Chawes, B. L. K., et al. A novel method for assessing unchallenged levels of mediators in nasal epithelial lining fluid. J Allergy Clin Immunol. 125 (6), 1387-1389 (2010).
  7. Følsgaard, N. V., et al. Pathogenic bacteria colonizing the airways in asymptomatic neonates stimulates topical inflammatory mediator release. Am J Respir Crit Care Med. 187 (6), 589-595 (2013).
  8. Følsgaard, N. V., et al. Neonatal Cytokine Profile in the Airway Mucosal Lining Fluid Is Skewed by Maternal Atopy. Am J Respir Crit Care Med. 185 (3), 275-280 (2012).
  9. Chawes, B. L., et al. Effect of Vitamin D3 Supplementation During Pregnancy on Risk of Persistent Wheeze in the Offspring: A Randomized Clinical Trial. JAMA. 315 (4), 353-361 (2016).
  10. Bischoff, A. L., et al. Altered Response to A(H1N1)pnd09 Vaccination in Pregnant Women: A Single Blinded Randomized Controlled Trial. PloS One. 8 (4), 56700 (2013).
  11. Wolsk, H. M., et al. Picornavirus-Induced Airway Mucosa Immune Profile in Asymptomatic Neonates. J Infect Dis. 213 (8), 1262-1270 (2016).
  12. Wolsk, H. M., Chawes, B. L., Følsgaard, N. V., Rasmussen, M. A., Brix, S., Bisgaard, H. Siblings Promote a Type 1/Type 17-oriented immune response in the airways of asymptomatic neonates. Allergy. 71 (6), 820-828 (2016).
  13. Alam, R., Sim, T. C., Hilsmeier, K., Grant, J. A. Development of a new technique for recovery of cytokines from inflammatory sites in situ. J Immunol Methods. 155 (1), 25-29 (1992).
  14. Ishizaka, A., et al. New bronchoscopic microsample probe to measure the biochemical constituents in epithelial lining fluid of patients with acute respiratory distress syndrome. Crit Care Med. 29 (4), 896-898 (2001).
  15. Ishizaka, A., et al. Elevation of KL-6, a lung epithelial cell marker, in plasma and epithelial lining fluid in acute respiratory distress syndrome. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 286 (6), 1088-1094 (2004).
  16. Nakano, Y., et al. Endothelin-1 level in epithelial lining fluid of patients with acute respiratory distress syndrome. Respirology. 12 (5), 740-743 (2007).
  17. Komaki, Y., et al. Cytokine-mediated xanthine oxidase upregulation in chronic obstructive pulmonary disease’s airways. Pulm Pharmacol Ther. 18 (4), 297-302 (2005).
  18. Moeller, A., Franklin, P., Hall, G. L., Horak, F., Wildhaber, J. H., Stick, S. M. Measuring exhaled breath condensates in infants. Pediatr Pulmonol. 41 (2), 184-187 (2006).
check_url/pt/55800?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Wolsk, H. M., Chawes, B. L., Thorsen, J., Stokholm, J., Bønnelykke, K., Brix, S., Bisgaard, H. Noninvasive Sampling of Mucosal Lining Fluid for the Quantification of In Vivo Upper Airway Immune-mediator Levels. J. Vis. Exp. (126), e55800, doi:10.3791/55800 (2017).

View Video