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Artigo de método

Monitorização da libertação de cálcio ER / SR com o Ca

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DOI:

10.3791/55822

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19 de maio de 2017

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Neste artigo

Resumo

Apresentamos protocolos para a aplicação de nosso indicador de cálcio codificado geneticamente codificado (GECI) CatchER + para monitorar transientes rápidos de cálcio no retículo endoplasmático / sarcoplasmático (ER / SR) de HEK293 e células C2C12 de músculo esquelético usando microscopia de fluorescência em tempo real. Um protocolo para a medição e calibração in situ K d também é discutido.

Resumo

Os transientes intracelulares de cálcio (Ca2 + ) evocados por estímulos extracelulares iniciam uma multiplicidade de processos biológicos em organismos vivos. No centro da libertação de cálcio intracelular estão as principais organelas de armazenamento de cálcio intracelular, o retículo endoplasmático (RE) eo retículo sarcoplasmático (SR) mais especializado nas células musculares. A liberação dinâmica de cálcio a partir destas organelas é mediada pelo receptor de rianodina (RyR) e pelo receptor de inositol 1,4,5-trifosfato (IP3R) com reenchimento ocorrendo através da bomba sarco / retina de cálcio reticular ATPase (SERCA). Um sensor de cálcio geneticamente codificado (GECI) chamado CatchER foi criado para monitorar a rápida liberação de cálcio do ER / SR. Aqui, os protocolos detalhados para a transfecção e expressão do GECI CatchER + melhorado em células HEK293 e C2C12 direccionadas para ER / SR e a sua aplicação na monitorização de transiente de cálcio mediado por bomba IP3R, RyR e SERCAS em células HEK293 utilizando microscopia de fluorescência é delineada. O agonista ou inibidor de receptor de escolha está disperso na solução de câmara e as alterações de intensidade são registadas em tempo real. Com este método, observa-se uma diminuição do cálcio ER com a activação de RyR com 4-cloro-m-cresol (4 cmc), a activação indirecta de IP3R com adenosina trifosfato (ATP) ea inibição da bomba SERCA com ciclopiazónico Ácido (CPA). Também discutimos protocolos para determinar o in situ K d e quantificação basal [Ca 2 + ] em C2C12 células. Em resumo, estes protocolos, utilizados em conjunto com CatchER + , podem desencadear a libertação de cálcio mediada pelo receptor a partir da ER com aplicação futura no estudo de ER / SR relacionadas com cálcio patologias.

Introdução

Os atributos espaço-temporais dos transientes de cálcio intracelular (Ca 2+ ) ativam várias funções biológicas 1 . Estes eventos de sinalização de Ca2 + são desencadeados extracelularmente através de diferentes estímulos e controlados intracelularmente pela maior organela de armazenamento de Ca2 + e por numerosas bombas de Ca2 + , canais e proteínas de ligação de Ca2 + . Os transientes de Ca 2+ podem ser significativamente alterados como resultado de defeitos com modulação do sinal, levando a diferentes doenças 2 . Devido à velocidade e complexidade do si....

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Protocolo

1. Preparação do Slide

  1. Coloque as lâminas de microscópio de vidro de 22 mm x 40 mm em placas de cultura celular de 6 cm, 1 lâmina por prato.
  2. Exponha cada lado de cada lâmina, bem como o prato de 6 cm à luz ultravioleta (UV) por 15-20 min para esterilizar em uma capa estéril.
  3. Cubra os pratos com lâminas dentro com parafilme e armazene a 4 ° C até pronto para usar.

2. Preparação de meios, tampões, soluções e reagentes

  1. Preparar 1 L de solução salina equilibrada de Hank (HBSS) em água desionizada e adicionar HEPES 10 mM, NaHCO3 5 mM e EGTA 1 mM. Ajustar para pH 7,2-7,3 com NaOH. Filtrar o tampão....

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Resultados

Esta secção irá ilustrar os resultados que foram alcançados utilizando os métodos descritos anteriormente utilizando o optimizado ER / SR-alvo GECI CatchER + para monitorar mudanças em ER / SR Ca 2 + através de diferentes vias mediadas pelo receptor.

A Figura 1 ilustra o esvaziamento de ER através do RyR estimulado com 200 μM de 4 cmc. 4-cmc é um agonista do RyR. A adição do .......

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Discussão

A imagiologia com células vivas de sondas fluorescentes, tal como CatchER + , é uma técnica eficaz para analisar processos de sinalização intrínsecos de ER / SR Ca2 + em cada célula em resposta a agonistas ou antagonistas de receptores. Esta técnica também é útil para imagens usando múltiplos comprimentos de onda simultaneamente, como necessário para Fura-2 ou para a imagem CatchER + e Rhod-2 em conjunto para monitorar ER e citosólicas alterações de cálcio, respectivamente. Existem vária.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado pelo NIH GM62999, NIH EB007268, NIH AG15820, B & B Seed Grant, e um NIH Suplementar Grant para FR, BB bolsa para CM, CDT bolsa para RG.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
4-Cloro-3-metilfenol (4-CmC)Sigma-AldrichC55402
515DCXR espelho dicróicoChroma Technology Corp.
Adenosina 5′-trifosfato dissódico sal hidratadoSigma-AldrichA26209
Cloreto de cálcio di-hidratadoEMD Millipore102382
Placas de cultura tratadas com cultura de tecidos Corning (100 mm)Placas de cultura tratadas com cultura de tecidos Sigma-AldrichCLS430167
Corning (60 mm)Sigma-AldrichCLS430166
Ácido ciclopiazônico (CPA)EMD Millipore239805
D (+) -glicoseACROS Organics41095-0010
Dow Corning 111 Lubrificante de válvula e SelanteWarner Instruments64-0275
Dulbecco' s Águia Modificada' s Medium (DMEM)Sigma-AldrichD7777
Ácido Etilenobis(oxietilenoenitrilo)
tetracético (EGTA)
ACROS Organics409911000 
Soro Fetal Bovino (FBS)ThermoFisher26140087
Fisherbrand Óculos de Cobertura 22x40 mmFisher Scientific  12-544B
Hanks ' Sais Balanceados (HBSS)Sigma-AldrichH4891
HEPES, Ácido Livre, Grau de Biologia MolecularEMD Millipore391340
Óleo de Imersão sem autofluorescênciaLeica11513859
Ionomicina, Ácido LivreFisher Scientific50-230-5804
Leica DM6100B microscópio invertido com uma câmera EM-CCD resfriadaHamamatsuC9100-13
Reagente de Transfecção de Lipofectamina 2000ThermoFisher11668019
Reagente de Transfecção de Lipofectamina 3000ThermoFisherL3000015
Banho de Diamante Aberto de Perfil Baixo WarnerInstrumentsRC-26GLP
Cloreto de Magnésio HexahidratadoFisher ScientificM33-500
Opti-MEMThermoFisher51985034
Cloreto de PotássioEMD MilliporePX1405
Fosfato de Potássio, DibásicoEMD MilliporePX1570
Fosfato de Potássio, MonobásicoEMD MilliporePX1565
SaponinaSigma-Aldrich47036
SimplePCI Software de Análise de ImagemHamamatsuN/A
Bicarbonato de SódioFisher ScientificS233-3
Cloreto de SódioFisher ScientificS271-500
Sterivex-GV 0.22 µ Filtro EMDMilliporeSVGVB1010
Till Policromado V Lâmpada de xenônioTill PhotonicsN/A
Tripsina (2,5%), sem vermelho de fenol (10x)ThermoFisher15090046
NC338059 Câmara de Imagem de

Referências

  1. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. D. The versatility and universality of calcium signalling. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 1 (1), 11-21 (2000).
  2. Berridge, M. J. Calcium signalling remodelling and disease. Biochem. Soc. Trans. 40, 297-309 (2012).
  3. Tang, S., Reddish....

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Reimpressões e permissões

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