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Artigo de método

Análise do Gap Junction-dependente Transferência de miARN com 3D-FRAP Microscopia

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DOI:

10.3791/55870

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19 de junho de 2017

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Neste artigo

Resumo

Aqui, descrevemos a aplicação da recuperação de fluorescência tridimensional após o fotobleaching (3D-FRAP) para a análise do deslocamento dependente da junção de miARN. Em contraste com os métodos comumente aplicados, o 3D-FRAP permite a quantificação da transferência intercelular de pequenos RNAs em tempo real, com alta resolução espaço-temporal.

Resumo

Os pequenos ARNs antisentidos, como o miARN e o siRNA, desempenham um papel importante na fisiologia celular e na patologia e, além disso, podem ser utilizados como agentes terapêuticos no tratamento de diversas doenças. O desenvolvimento de novas estratégias inovadoras para a terapia com miARN / siRNA é baseado em um amplo conhecimento dos mecanismos subjacentes. Dados recentes sugerem que os pequenos RNAs são trocados entre as células de uma maneira dependente da junção de lacunas, induzindo os efeitos reguladores de genes na célula receptora. Técnicas biológicas moleculares e análise citométrica de fluxo são comumente usadas para estudar a troca intercelular de miARN. No entanto, esses métodos não fornecem alta resolução temporal, o que é necessário ao estudar o fluxo juncional de gap das moléculas. Portanto, para investigar o impacto do miARN / siRNA como moléculas de sinalização intercelular, são necessárias novas ferramentas que permitirão a análise desses pequenos RNAs no nível celular. O presente protocolo descreve o apPlicação da recuperação de fluorescência tridimensional após microscopia de fotoblanqueamento (3D-FRAP) para elucidar a troca de moléculas de miARN entre as células cardíacas dependentes da junção gap. É importante ressaltar que esta abordagem direta e não invasiva de imagens de células vivas permite a visualização e quantificação do deslocamento de junção de RNA pequenos com marcação fluorescente em tempo real, com alta resolução espaço-temporal. Os dados obtidos por 3D-FRAP confirmam uma nova via de regulação de genes intercelulares, onde os pequenos RNAs atuam como moléculas de sinalização dentro da rede intercelular.

Introdução

Os pequenos RNAs não codificados são jogadores importantes na regulação de genes celulares. Estas moléculas são compostas por 20-25 nucleótidos que se ligam a um mRNA alvo específico, levando ao bloqueio da tradução ou à degradação mRNA 1 , 2 . O processo de regulação de genes realizado por pequenos RNAs, como o miARN e siRNA, é um mecanismo altamente conservado que foi encontrado em muitas espécies diferentes 3 . Em particular, as moléculas de miARN são de importância crucial para uma variedade de processos fisiológicos, incluindo proliferação, diferenciação e regeneração

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Protocolo

Todas as etapas neste protocolo envolvendo ratos neonatais foram realizadas de acordo com as diretrizes éticas para o cuidado de animais do Centro Médico da Universidade Rostock.

1. Preparação de pratos de cultura de células e do meio para cultura de cardiomiócitos

  1. Revestir uma placa de cultura de células com 0,1% de gelatina em PBS e incubar a 37 ° C durante 4 h ou a 4 ° C durante a noite. Remova a gelatina e deixe secar sob fluxo de ar laminar esterilizado.
  2. Prepare o meio de cultura celular composto por 50 mL de DMEM suplementado com 10% de soro fetal bovino (FBS) e 1% de penicilina / estreptomicina (P / S). Pré-aqu....

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Resultados

Aqui, apresentamos a microscopia 3D-FRAP como uma técnica não-invasiva para estudar o deslocamento juncional do miARN fluorescente nos cardiomiócitos neonatais. Os cardiomiócitos isolados revelaram o típico padrão de α-aletina estriada e continham grandes placas de Cx43 ao longo das bordas das células celulares ( Figura 1A , pontas de flecha brancas), o que permitiu o alto fluxo intercelular de moléculas. A pureza dos cardiomiócitos isolados foi avaliada pel.......

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Discussão

Os miRNAs são atores-chave na fisiologia celular e demonstraram que atuam como moléculas de sinalização usando-entre outros - GJs como um caminho para a troca intercelular 11 , 12 , 22 . O protocolo atual apresenta uma técnica de imagem de células vivas in vitro para caracterizar esta rodovia dependente de GJ usando miARNs fluorescentes dentro dos clusters celulares.

O protocolo foi d.......

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Divulgações

Os autores declaram não haver conflito de interesses.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado pelo Ministério Federal da Educação e Pesquisa da Alemanha (FKZ 0312138A e FKZ 316159), o Estado Mecklemburgo-Pomerânia Ocidental com Fundos Estruturais da UE (ESF / IVWM-B34-0030 / 10 e ESF / IVBM-B35-0010 / 12), o DFG (DA1296-1) e a Fundação Alemã do Coração (F / 01/12). Além disso, o RD é suportado pelo Programa FORUN do Centro Médico da Universidade Rostock (889001), a Fundação DAMP e o BMBF (VIP + 00240).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
camundongos NMRI neonataisCharles River
GelatinSigma AldrichG70410,1% solução em PBS, PBS esterilizado
Pan BiotechP04-53500
Dulbecco&agudo; s meio modificadoPan BiotechP04-03550
Penicilina/EstreptomicinaThermo Fisher Scientific15140122100 U/mL, 100µ g/mL
Soro bovino fetalPan BiotechP30-3306
Plástico de cultura celularTPP
Kit de isolamento de cardiomiócitos primáriosThermo Fisher Scientific88281
HBSSThermo Fisher Scientific88281incluído no kit de isolamento de cardiomiócitos primários
Azul de tripanoThermo Fisher Scientific15250061
microRNA marcado com miRIDIAN Dy547 MimicDharmaconCP-004500-01-05dissolve em água livre de RNAse, solução estoque 20µ M
Fosfato de sódio monobásicoSigmaS3139
Fosfato de sódio dibásicoCarl RothT877.2
Cloreto de potássioSigmaP9333
Cloreto de magnésioServa28305.01
Succinato de sódioCarl Roth3195.1
Solução de tripsina / EDTA a 0,05%MerckL2153
4-well- Lâminas de câmara de fundo de vidroIBIDI80827revestidas com solução de gelatina a 0,1%
Amaxa Nucleofector IIO programa Lonza G-009 foi usado para eletroporação 
LSM 780 ELYRA PS.1 sistemaZeiss
Excel softwareMicrosoft
α-actinina anticorpoAbcamab9465diluição 1:200
Connexin43 anticorpoSanta Cruzsc-9059diluição 1:200
cabra anti-camundongo Alexa 594 anticorpoThermo Fisher ScientificA-11005diluição 1:300
anticorpo anti-coelho de cabra Alexa 488Thermo Fisher ScientificA-11034diluição 1:300
Conexina43 siRNAThermo Fisher ScientificAM16708 ID158724concentração final 250 nM
Near-IR Kit de coloração de células vivas/mortasThermo Fisher ScientificL10119
CellTrace Calcein Red-OrangeThermo ScientificC34851
DAPI coloração nuclearThermo ScientificD1306

Referências

  1. Carthew, R. W., Sontheimer, E. J. Origins and Mechanisms of miRNAs and siRNAs. Cell. 136 (4), 642-655 (2009).
  2. Fire, A., Xu, S., Montgomery, M. K., Kostas, S. A., Driver, S. E., Mello, C. C. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature

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Reimpressões e permissões

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