Summary

In Vivo Identifiering och analys av Rb proteinet SUMOylation i mänskliga celler

Published: November 02, 2017
doi:

Summary

Liten ubiquitin-relaterade modifierare (SUMO) familj proteiner konjugeras till lysin resthalter av målproteiner att reglera olika cellulära processer. Detta dokument beskriver ett protokoll för detektion av retinoblastom (Rb) protein SUMOylation under endogena och exogena förhållanden i mänskliga celler.

Abstract

De post-translationella modifieringar av proteiner är avgörande för korrekt reglering av intracellulära signaltransduktion. Bland dessa ändringar är små ubiquitin-relaterade modifierare (SUMO) en ubiquitin-liknande protein som är kovalent kopplad till lysin resthalter av en mängd målproteiner att reglera cellulära processer, såsom transkription av gener, DNA-reparation, protein interaktion och nedbrytning, subcellulär transport och signaltransduktion. Den vanligaste metoden att upptäcka protein SUMOylation baseras på uttryck och rening av rekombinanta märkta proteiner i bakterier, vilket möjliggör en in vitro- biokemisk reaktion som är enkla och lämpar sig för adressering mekanistiska frågor. Det är dock på grund av komplexiteten i processen för SUMOylation i vivo, svårare att upptäcka och analysera protein SUMOylation i celler, särskilt när villkor endogena. En färsk studie av författarna till detta dokument visade att endogena retinoblastom (Rb) protein, en tumörsuppressor som är avgörande för negativ reglering av Cellcykelprogression, specifikt SUMOylated på den tidiga G1-fasen. Detta dokument beskriver ett protokoll för detektering och analys av Rb SUMOylation under både endogena och exogena förhållanden i mänskliga celler. Detta protokoll är lämpliga för fenotypiska och funktionell undersökning av SUMO-ändring av Rb, liksom många andra SUMO-riktade proteiner, i mänskliga celler.

Introduction

Noggrann kontroll av cellcykelns förlopp i eukaryota celler är baserad på ett tight regulatoriska nätverk, vilket säkerställer att särskilda händelser äga rum i en ordnad sätt1,2. En av de viktigaste aktörerna i detta nätverk är proteinet retinoblastom (Rb), det första klonade tumör suppressor1,3. Rb proteinet tros vara en negativ regulator av cellcykelns förlopp, särskilt för G0/G1 S fasövergång, och tumör tillväxt4,5. Misslyckande av Rb funktion leder antingen direkt till de vanligaste intraokulära malignitet hos barn, retinoblastom, eller bidrar till utvecklingen av många andra typer av cancer5. Rb är dessutom involverad i många cellulära vägar, inklusive celldifferentiering, kromatin remodeling och mitokondrier-medierad apoptos3,6,7.

Post-translationella modifieringar spelar en central roll i regleringen av RB funktion8,9. Fosforylering är en sådan ändring, och det leder vanligtvis till Rb inaktivering. I quiescent G0 celler är Rb aktiv med en låg fosforylering nivå. Som cellerna framsteg genom G0/G1-fasen, är Rb sekventiellt hyper-fosforyleras av en serie av cyklin-beroende proteinkinaser (CDKs) och cyclins, till exempel cyklin E/CDK2 och cyklin D/CDK4/6, som inaktivera Rb och eliminera dess förmåga att undertrycka cellcykeln relaterade gen uttryck4,10. RB kan också ändras genom små ubiquitin-relaterade modifierare (SUMO)11,12,13.

SUMO är en ubiquitin-liknande protein som är kovalent kopplad till en mängd målproteiner. Det är avgörande för olika cellulära processer, inbegripet cellcykelns reglering, transkription, protein cellulär lokalisering och nedbrytning, transport och DNA reparation14,15,16, 17 , 18. the SUMO konjugation pathway består av dimeriskt SUMO E1 aktiverande enzymet SAE1/UBA2, enda E2 konjugera enzymet Ubc9, flera E3 ligases och SUMO-specifika proteaser. Allmänhet, begynnande SUMO proteiner måste bearbetas proteolytically för att generera mogen form. Den mogna SUMO aktiveras av den E1 heterodimer och överförs sedan till E2 enzymet Ubc9. Slutligen, den C-terminal glycin av SUMO är kovalent konjugerad med den mål lysin av substrat, och denna process underlättas vanligtvis av E3 ligases. SUMO proteinet kan tas bort från den modifierade substraten av specifika proteaser. En tidigare studie av författarna till detta dokument visade att SUMOylation av Rb ökar dess bindning till CDK2, leder till hyper-fosforylering på den tidiga G1-fasen, en process som är nödvändig för cellcykeln progression13. Vi har också visat att förlusten av Rb SUMOylation orsakar en minskad cellproliferation. Det var dessutom nyligen visat att SUMOylation av Rb skyddar Rb proteinet från proteasomen omsättning, vilket ökar nivån av Rb protein i cellerna19. Därför spelar SUMOylation en viktig roll i Rb-funktionen i olika cellulära processer. Fortsätta att undersöka de funktionella konsekvens och fysiologiska relevansen av Rb SUMOylation, det är viktigt att utveckla en effektiv metod för att analysera SUMO status för Rb i mänskliga celler eller vävnader som patienten.

SUMOylation är en reversibel, högdynamiska process. Det är således vanligtvis svårt att upptäcka de SUMO-modifierade proteinerna helt endogena villkor. Detta dokument presenterar en metod för att upptäcka endogena Rb SUMOylation. Dessutom visar den hur man upptäcker exogena Rb SUMOylation av både vildtyps-Rb och dess SUMO-brist mutation11. I synnerhet beskrivs Jacobs et al. en metod för att öka SUMO modifiering av ett visst substrat specifikt av Ubc9 fusion-riktade SUMOylation (UFDS)20. Baserat på denna metod, beskriver det här protokollet hur du analyserar Tvingad SUMOylation av Rb och dess funktionella konsekvenser. Med tanke på att hundratals SUMO substrat har beskrivits tidigare och mer förmodad SUMO substrat har identifierats från många proteomiska-baserade analyser, kan detta protokoll användas för att analysera SUMO-modifiering av dessa proteiner i mänskliga celler.

Protocol

1. identifiering av endogena Rb SUMOylation på den tidiga G1-fasen Cell kultur och cellcykeln synkronisering. Hålla HEK293 celler i odlingsmedium som innehåller Dulbecco ' s ändrad Eagle Medium (DMEM) kompletteras med 1% penna-Strep och 10% fetalt bovint serum (FBS) vid 37 ° C och 5% CO 2 i en inkubator. Synkronisera HEK293 cellerna fasen G0. Count HEK293 cellerna med hjälp av en hemocytometer och utsäde ~1.5 x 10 7 celler i en 15 …

Representative Results

För att upptäcka endogena Rb SUMOylation under Cellcykelprogression, synkroniseras denna studie först HEK293 celler vid fem olika faser av cellcykeln (G0, tidig G1, G1, S och G2/M) som beskrivs i avsnittet protokollet i denna uppsats. Kvaliteten på synkronisering bekräftades med hjälp av nukleinsyra fläcken med propidium jodid följt av flödescytometri Flödesanalys (figur 1). Nästa, cellerna samlades in och lyserat av denaturering RIPA bufferten. De…

Discussion

Detta dokument beskriver ett protokoll för att identifiera och analysera den endogena SUMOylation av Rb i mänskliga celler. Eftersom denna metod är särskilt inriktad på endogena Rb proteinet utan någon alternationen av globala SUMO-relaterade signal, är det ett viktigt verktyg för att undersöka Rb-SUMO ändring under helt naturliga fysiologiska förhållanden.

För att uppnå detta mål är det viktigt att komma ihåg att: 1) även om SUMO består av fyra isoformer (SUMO1-4, varje kod…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av bidrag från vetenskap och teknik kommissionen av Shanghai (Grant nr 14411961800) och National Natural Science Foundation Kina (Grant nr 81300805).

Materials

Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Thermo Fisher Scientific 11995065
Opti-MEM  Thermo Fisher Scientific 31985070
Fetal Bovine Serum (FBS) Thermo Fisher Scientific 26140079
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
Phosphate-buffered Saline (PBS) Thermo Fisher Scientific 10010023
Trypsin-EDTA Thermo Fisher Scientific 25200056
Thymidine Sigma T9250
Nocodazole Sigma M1404
propidium iodide Thermo Fisher Scientific P3566
Triton X-100  AMRESCO 694
RNase A  Thermo Fisher Scientific EN0531
N-Ethylmaleimide Sigma E3876 
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) AMRESCO M107
Nonidet P-40 Substitute (NP-40) AMRESCO M158
protease inhibitor Roche 5892970001
Mouse Immunoglobulin G (IgG) Santa Cruz Biotechnology sc-2025
Rb antibody Cell Signaling Technology #9309
Protein A/G-Sepharose Beads Santa Cruz Biotechnology sc-2003
Lipofectamine-2000  Thermo Fisher Scientific 11668019
Nickel Nitrilotriacetic Acid (Ni-NTA) Agarose Beads Qiagen 30230
Imidazole Sigma I0250
4%-20% Gradient SDS-PAGE Gel BIO-RAD 4561096
Polyvinylidene Difluoride (PVDF) Membrane Millipore IPVH00010
Tween-20 AMRESCO M147
Tubulin antibody Abmart M30109
SUMO1 antibody Thermo Fisher Scientific 33-2044
GFP antibody Abmart M20004
Horseradish Peroxidase (HRP) secondary antibody Jackson ImmunoResearch Laboratories 715-035-150
enhanced chemiluminescence (ECL) Kit Thermo Fisher Scientific 32106

Referências

  1. Bertoli, C., Skotheim, J. M., de Bruin, R. A. Control of cell cycle transcription during G1 and S phases. Nat Rev Mol Cell Biol. 14 (8), 518-528 (2013).
  2. Massague, J. G1 cell-cycle control and cancer. Nature. 432 (7015), 298-306 (2004).
  3. Weinberg, R. A. The retinoblastoma protein and cell cycle control. Cell. 81 (3), 323-330 (1995).
  4. Giacinti, C., Giordano, A. RB and cell cycle progression. Oncogene. 25 (38), 5220-5227 (2006).
  5. Burkhart, D. L., Sage, J. Cellular mechanisms of tumour suppression by the retinoblastoma gene. Nat Rev Cancer. 8 (9), 671-682 (2008).
  6. Ferreira, R., Naguibneva, I., Pritchard, L. L., Ait-Si-Ali, S., Harel-Bellan, A. The Rb/chromatin connection and epigenetic control: opinion. Oncogene. 20 (24), 3128-3133 (2001).
  7. Hilgendorf, K. I., et al. The retinoblastoma protein induces apoptosis directly at the mitochondria. Genes Dev. 27 (9), 1003-1015 (2013).
  8. Munro, S., Carr, S. M., La Thangue, N. B. Diversity within the pRb pathway: is there a code of conduct. Oncogene. 31 (40), 4343-4352 (2012).
  9. Macdonald, J. I., Dick, F. A. Posttranslational modifications of the retinoblastoma tumor suppressor protein as determinants of function. Genes Cancer. 3 (11-12), 619-633 (2012).
  10. Ezhevsky, S. A., et al. Hypo-phosphorylation of the retinoblastoma protein (pRb) by cyclin D:Cdk4/6 complexes results in active pRb. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (20), 10699-10704 (1997).
  11. Ledl, A., Schmidt, D., Muller, S. Viral oncoproteins E1A and E7 and cellular LxCxE proteins repress SUMO modification of the retinoblastoma tumor suppressor. Oncogene. 24 (23), 3810-3818 (2005).
  12. Li, T., et al. Expression of SUMO-2/3 induced senescence through p53- and pRB-mediated pathways. J Biol Chem. 281 (47), 36221-36227 (2006).
  13. Meng, F., Qian, J., Yue, H., Li, X., Xue, K. SUMOylation of Rb enhances its binding with CDK2 and phosphorylation at early G1 phase. Cell Cycle. 15 (13), 1724-1732 (2016).
  14. Geiss-Friedlander, R., Melchior, F. Concepts in sumoylation: a decade on. Nat Rev Mol Cell Biol. 8 (12), 947-956 (2007).
  15. Flotho, A., Melchior, F. Sumoylation: a regulatory protein modification in health and disease. Annu Rev Biochem. 82, 357-385 (2013).
  16. Eifler, K., Vertegaal, A. C. SUMOylation-Mediated Regulation of Cell Cycle Progression and Cancer. Trends Biochem Sci. 40 (12), 779-793 (2015).
  17. Wilkinson, K. A., Henley, J. M. Mechanisms, regulation and consequences of protein SUMOylation. Biochem J. 428 (2), 133-145 (2010).
  18. Gill, G. SUMO and ubiquitin in the nucleus: different functions, similar mechanisms. Genes Dev. 18 (17), 2046-2059 (2004).
  19. Sharma, P., Kuehn, M. R. SENP1-modulated sumoylation regulates retinoblastoma protein (RB) and Lamin A/C interaction and stabilization. Oncogene. 35 (50), 6429-6438 (2016).
  20. Jakobs, A., et al. Ubc9 fusion-directed SUMOylation (UFDS): a method to analyze function of protein SUMOylation. Nat Methods. 4 (3), 245-250 (2007).
  21. Gareau, J. R., Lima, C. D. The SUMO pathway: emerging mechanisms that shape specificity, conjugation and recognition. Nat Rev Mol Cell Biol. 11 (12), 861-871 (2010).
  22. Bernier-Villamor, V., Sampson, D. A., Matunis, M. J., Lima, C. D. Structural basis for E2-mediated SUMO conjugation revealed by a complex between ubiquitin-conjugating enzyme Ubc9 and RanGAP1. Cell. 108 (3), 345-356 (2002).
  23. Saitoh, H., Hinchey, J. Functional heterogeneity of small ubiquitin-related protein modifiers SUMO-1 versus SUMO-2/3. J Biol Chem. 275 (9), 6252-6258 (2000).
  24. Ayaydin, F., Dasso, M. Distinct in vivo dynamics of vertebrate SUMO paralogues. Mol Biol Cell. 15 (12), 5208-5218 (2004).
check_url/pt/56096?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Meng, F., Li, X., Ren, H., Qian, J. In Vivo Detection and Analysis of Rb Protein SUMOylation in Human Cells. J. Vis. Exp. (129), e56096, doi:10.3791/56096 (2017).

View Video