Tubos multicelulares, unidades fundamentais de todos os órgãos, são compostos de células endoteliais ou epiteliais polarizadas, com membranas apicais forro as membranas lúmen e basolateral, entrar em contato com os outros e/ou a matriz extracelular. Como esta assimetria da membrana distinta é estabelecida e mantida durante a morfogênese do órgão é ainda uma questão não resolvida de biologia celular. Este protocolo descreve o intestino c. elegans como modelo de análise de biogênese de membrana polarizada durante a morfogênese de tubo, com ênfase na biogênese apical da membrana e lúmen. Epitélio intestinal de camada única de células vinte e o c. elegans é organizado em um simples tubo bilateralmente simétrico, permitindo a análise em um nível de célula única. Polarização de membrana ocorre concomitantemente com polarizada divisão celular e migração durante a embriogênese precoce, mas de novo polarizada biogênese de membrana continua durante todo o crescimento larval, quando as células já não se proliferam e se mover. A última configuração permite separar alterações subcelulares que medeiam simultaneamente estes processos de polarização diferentes, difícil distinguir na maioria dos modelos de polaridade. Apical-, basolateral da membrana-, juncional-, do citoesqueleto- e endomembranoso componentes podem ser rotulados e rastreadas durante todo o desenvolvimento por proteínas da fusão de GFP ou avaliadas por em situ mancha do anticorpo. Juntamente com versatilidade genética do organismo, o intestino de c. elegans , portanto, fornece um modelo exclusivo na vivo para o visual, no desenvolvimento e a análise genética molecular da membrana polarizada e biogênese de tubo. Incluem os métodos específicos (padrão) descritos aqui como: rotular componentes subcelulares intestinais pela mancha do anticorpo; analisar genes envolvidos na biogênese de membrana polarizada por estudos de perda-de-função adaptados para os genes tubulogenesis normalmente essencial; avaliar a polaridade defeitos durante diferentes estágios do desenvolvimento; interpretar os fenótipos de epifluorescência, contraste de interferência diferencial (DIC) e microscopia confocal; quantificar os defeitos visuais. Este protocolo pode ser adaptado para analisar qualquer das moléculas envolvidas muitas vezes altamente conservadas em polaridade epitelial, biogênese de membrana, tubo e lúmen morfogênese.