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Artigo de método

O Canal de Excretory c. elegans como modelo para intracelular Lumen morfogênese e Vivo na biogênese de membrana polarizada em uma única célula: rotulagem por GFP-fusões, tela de interação de RNAi e Imaging

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DOI:

10.3791/56101

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3 de outubro de 2017

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Neste artigo

Resumo

O canal excretor de c. elegans é um exclusivo modelo de célula única para a análise visual na vivo de biogênese de membrana de novo polarizada. Este protocolo descreve uma combinação de padrão genético/RNAi e abordagens, adaptávelas para a identificação e caracterização de moléculas dirigindo tubulogenesis unicelulares e apical da membrana e lúmen biogênese de imagem.

Resumo

Os quatro canais excretores de c. elegans são tubos estreitos estendidos através do comprimento do animal, de uma única célula, com quase igualmente longe estendido endotubes intracelular que construir e estabilizar o lúmen com uma membrana e submembraneous citoesqueleto de caráter apical. Excretor célula expande seu comprimento aproximadamente 2.000 vezes para gerar esses canais, fazendo com que este modelo exclusivo para a avaliação na vivo de biogênese de membrana de novo polarizada, morfogênese lúmen intracelular e unicelulares tubulogenesis. O protocolo apresentado aqui mostra como combinar o padrão de rotulagem, ganho e perda-de-função genética ou RNA de interferência (RNAi)-e abordagens microscópicas usar este modelo para dissecar visualmente e funcionalmente analisar esses processos em um nível molecular. Como um exemplo de uma abordagem de rotulagem, protocolo descreve a geração de animais transgénicos com proteínas da fusão fluorescente para análise ao vivo de tubulogenesis. Como um exemplo de uma abordagem genética, destaca pontos-chave de uma tela de interação baseada em RNAi visual projetado para modificar um fenótipo de ganho-de-função canal cístico. Os métodos específicos descritos são como: etiqueta e visualizar os canais expressando proteínas fluorescentes; construir uma biblioteca de alvo RNAi e strategize RNAi triagem para a análise molecular da morfogênese de canal; visualmente, avaliar as modificações dos fenótipos de canal; Pontuação deles dissecando a microscopia de fluorescência; caracterizar componentes subcelulares canal com resolução mais alta pela microscopia confocal; e quantificar parâmetros visuais. A abordagem é útil para o investigador que está interessado em aproveitar o canal excretor de c. elegans para identificar e caracterizar os genes envolvidos nos processos filogeneticamente conservados de lúmen intracelular e unicelulares morfogênese de tubo.

Introdução

Todos os órgãos internos são compostos de tubos, cruciais para suas muitas funções diferentes, tais como o transporte e a troca de gases, líquidos e nutrientes e a excreção de resíduos metabólicos. Seu caráter polarizado, com distintas membranas apicais e lumenal, é adaptado para essas funções específicas, e defeitos na biogênese dos seus sistemas de endo - e membrana plasmática são uma causa frequente de doença humana1,2. A maioria dos tubos da vasculatura e dos órgãos internos é pluricelulares e forma um lúmen intercellularly; no entanto, tubos unicelulares, que formam o lúmen intracelular, podem, por exempl....

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Protocolo

1. rotulagem do c. elegans Excretory Canal por proteínas fluorescentes fusão 14

Nota: consulte o documento que acompanha na intestinal tubulogenesis 3 para a rotulagem pelo anticorpo em situ coloração procedimentos adaptáveis ao canal excretor. Consulte a tabela 1 para obter exemplos de moléculas provados útil para a visualização de c. elegans canal excretor endo - e membranas de plasma, a tabela 2 para obter exemplos de promotores dirigindo a expressão para o canal excretor, e Tabela 3 para recursos mais abrange....

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Resultados

Este protocolo descreve como usar os canais excretores de c. elegans visualmente e molecularmente analisar tubulogenesis unicelulares e morfogênese lúmen intracelular em uma única célula. Durante sua extensão da época do meio da embriogênese até a idade adulta, os quatro canais excretores continuam a expandir seus basolateral e apical/lumenal membranas juntamente com seu sistema endomembranoso canalicular e CDDP, fornecendo um modelo exclusivo para a análise na vivo .......

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Discussão

Versatilidade genética dos c. elegans , transparência, plano de corpo simples e linhagem de células invariável fazem um excelente modelo para a análise da morfogênese. Este protocolo descreve como combinar padrão manipulações genéticas e a imagem latente estudos para aproveitar a 2 mícrons fina c. elegans canais excretores para estudar a membrana polarizada e biogênese intracelular lúmen em um tubo de célula única.

Rotulagem
C. elegans excretoras .......

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Divulgações

Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.

Agradecimentos

Agradecemos a M. Buechner (Universidade de Kansas, Kansas, EUA), K. Nehrke (Universidade de Rochester Medical Center, Rochester, Nova Iorque, EUA) e o centro de genética Caenorhabditis , financiado pelo National Institutes of Health, escritório de infra-estruturas de investigação Programas (OD010440 P40). Este trabalho foi apoiado por subsídios GM078653 NIH, MGH é 224570 e 223809 de SAA a V.G.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Cloning
Plasmídeo pPD95.75AddgeneCat. No. 37464
Kit PCRQiagenCat. No. 27106
Kit de ligaduraNew England BiolabsCat. Não. Marcador de DNA E2611L
Thermo ScientificCat. Não. SM1331
Grau de DNA de agaroseFisher ScientificCat. Não. BP164-100
Células competentesNew England BiolabsCat. Não. C2987H
TrisFisher Gato Científico. Não. BP154-1
EDTASigmaCat. Não. ED-1KG
Ácido acéticoFisher ScientificCat. Não. A38S-500
Brometo de etídioFisher ScientificCat. Não. BP1302-10
Equipamentos
máquina PCR MJ ResearchCat. Não. PTG-200 
CentrífugaEppendorf gato. No. 5415C
Banho-mariaPrecision Scientific gato. Nº 666A3 
Instrumento de corrida em gelFisher ScientificCat. No. 09-528-165
Fonte de alimentação de gel FisherScientificCat. No. 45-000-465
Gerador de Imagens Moleculares Sistema Gel Doc XRBio-RadCat. No. 1708195EDU
Nanodrop EspectrofotômetroThermo ScientificCat. Não. ND1000
C. elegans related11consulte a referência19 para procedimentos padrão de cultura e manutenção de C. elegans.
LB Médio e placas22consulte referência19 para protocolos.
Triptona Acros OrganicsCat. no. 611845000
Extrato de LeveduraBD BiosciencesCat. no. 212750
NaClSigmaCat. no. S7653
Bacto Agar BD BiosciencesCat. nº 214040
AmpicilinaSigmaCat. nº A0116
TetraciclinaFisher ScientificCat. nº. BP912
M9 Medium22consulte a referência19 para protocolos.
NaClSigmaCat. nº S7653
KH2PO4SigmaCat. nº P0662
Na2HPO4SigmaCat. nº S7907
MgSO4SigmaCat. nº M2773
NGM placas 22consulte referência19 para protocolos.
NaClSigmaCat. no. S7653
Peptone BD BiosciencesCat. no. 211677
Triptona Acros OrganicsCat. no. 611845000
Bacto Agar BD BiosciencesCat. no. 214040
MgSO4SigmaCat. no. M2773
CaCl2SigmaCat. no. C3881
Colesterol SigmaCat. nº C8667
K2HPO4 SigmaCat. nº P3786
KH2PO4SigmaCat. nº P0662
placas de RNAi33consulte a referência21 para protocolos.
NaClSigmaCat. no. S7653
Peptone BD BiosciencesCat. no. 211677
Triptona Acros OrganicsCat. no. 611845000
Bacto Agar BD BiosciencesCat. no. 214040
MgSO4SigmaCat. no. M2773
CaCl2SigmaCat. no. C3881
Colesterol SigmaCat. nº C8667
K2HPO4 SigmaCat. nº P3786
KH2PO4SigmaCat. nº P0662
IPTG US BiologicalCat. no. I8500
CarbenicillinFisher ScientificCat. no. BP2648
NaOHFisher ScientificCat. no. SS266-1
Hipoclorito de sódioFisher ScientificCat. nº 50371500
Bactérias
OP50 bactériasCGC
Bactérias HT115CGC
Bibliotecas de RNAi em todo o genoma
Biblioteca de alimentação de RNAi em todo o genoma da Ahringer (ref21,58,59)Fonte: BioScience
C. elegans Biblioteca de alimentação ORF-RNAi (ref60)Fonte: BioScience
Relacionado a imagens
LidocaineMP Biomedicals,LLGCat. no. 193917
Materiais
Graxa a Vácuo SiliconeBeckmanCat. no. 335148
Lâminas de microscópio Fisher ScientificCat. no. 4448
Placa de cultura de tecidos, 6 poços Corning Inc.Cat. nº 08-772-33
Equipment
SMZ-U microscópio de dissecação (Nikon)
Microscópio de dissecação SZX12 (Olympus), equipado com um acessório de fluorescência estéreo de alta potência (Kramer Scientific), câmera CCD com software de captura Q e lâmpada fluorescente X-Cite (Photonic Solutions).
Microscópio confocal de varredura a laser TCS SL (Leica Microsystem)
Confocal de varredura a laser C2 montado em um microscópio invertido ECLIPSE Ti-E (Nikon)

Referências

  1. Lubarsky, B., Krasnow, M. A. Tube morphogenesis: making and shaping biological tubes. Cell. 112 (1), (2003).
  2. Sundaram, M. V., Cohen, J. D. Time to make the doughnuts: Building and shaping seamless tubes. Semin. Cell Dev. Biol. S1084-9521, 30130-30136 (2016).
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Reimpressões e permissões

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