Summary

Live-imaging van borst epitheliale cel migratie na de voorbijgaande uitputting van TIP60

Published: December 07, 2017
doi:

Summary

Hier presenteren we de real-time bewaking van de cel migratie in een wondgenezing assay met behulp van TIP60-verarmd MCF10A borst epitheliale cellen. De uitvoering van live-cel beeldvormingstechnieken in ons protocol kan we analyseren en visualiseren van eencellige verkeer in real time en in de tijd.

Abstract

De wondgenezing bepaling is efficiënt en één van de voordeligste manieren om de cel migratie in vitrostudie. Conventioneel, images zijn geschoten aan het begin en einde van een experiment met behulp van een Microscoop fase contrast, en de capaciteiten van de migratie van de cellen worden geëvalueerd door de sluiting van wonden. Cel verkeer is een dynamisch verschijnsel echter, en een conventionele methode voor het bijhouden van eencellige verkeer niet mogelijk. We gebruik om te verbeteren huidige wondgenezing testen, live-cel beeldvormingstechnieken cel migratie in real-time volgen. Deze methode laat ons toe om het bepalen van de cel migratie percentage op basis van een cel tracking systeem en biedt een duidelijker onderscheid tussen cel migratie en celproliferatie. Wij tonen hier, het gebruik van live-cel beeldvorming in de wond-genezing testen te bestuderen van de capaciteiten van de verschillende migratie van borst epitheliale cellen beïnvloed door de aanwezigheid van TIP60. Als cel beweeglijkheid zeer dynamisch is, biedt onze methode meer inzicht in de processen van wond genezing dan een momentopname van de wond sluiting genomen met de traditionele beeldvormingstechnieken gebruikt voor wondgenezing testen.

Introduction

HIV-Tat-interactieve eiwit 60 kDa (TIP60) is een lysine-acetyltransferase die zowel histone en niet-Histon eiwitten1,2 acetylate kan. De functies worden gevonden gevolgen kunnen hebben in meerdere signaalroutes, met inbegrip van transcriptie, DNA-schade reparatie en apoptosis1,3,4,5,6, 7 , 8. Bovendien TIP60 is vaak werden in kanker, en haar Downregulatie is gecorreleerd met kanker uitzaaiingen en arme survival tarieven9,10,11,12, 13,14. Uitzaaiing van de tumor is de belangrijkste oorzaak van sterfgevallen ten gevolge van kanker. Het is een proces van meerdere stappen, en de eerste stap van metastase impliceert de migratie en invasie van tumorcellen in aangrenzende weefsels15,16. Om dit te doen, tumorcellen eerst moeten loskoppelen van de primaire tumor massa, hetzij in de vorm van een collectief binnenvallende cellaag of vrijstaand als afzonderlijke cellen17. Tijdens dit proces ondergaan vaak tumorcellen epitheliale mesenchymale overgang (EMT), wat resulteert in veranderingen in de morfologie en cel adhesie vermogen17,18.

Een paar technieken zijn ontwikkeld om te bestuderen van de migratie en invasie vermogen van tumor cellen in vitro. Onder hen is de wondgenezing bepaling de meest efficiënte en voordelige19. Deze methode houdt ten eerste de oprichting van een kunstmatige kloof op een confluente enkelgelaagde van cellen, waardoor de cellen om te migreren en de kloof dichten. Ten tweede, kunnen beelden van de lacunes worden vastgelegd aan het begin en einde van het experiment. Tot slot wordt een vergelijking van kloof sluiting gebruikt voor het bepalen van de omvang van de migratie van de cel. Een fase contrast Microscoop wordt meestal gebruikt om beelden voor conventionele wondgenezing testen te vangen. Een ander voordeel van de wondgenezing bepaling is dat deels in vivo tumor cel migratie lijkt. Ook toont in vivo de uitzaaiing van de tumor, cel migratie in de wond-genezing assays zowel de collectieve migratie van epitheliale bladen en de migratie van vrijstaande afzonderlijke cellen.

Echter cel migratie is bekend om zijn dynamische, en er is een noodzaak voor het documenteren van het verkeer van cellen in real-time. Een conventionele wondgenezing assay staat bijvoorbeeld geen een onderzoeker voor het analyseren van eencellige beweging. Aan de andere kant, zijn cellen gekweekt voor wondgenezing testen vaak serum-uitgehongerd voor de remming van celproliferatie. Dit wordt gedaan om het uitsluiten van de mogelijkheid van kloof sluiting als gevolg van celproliferatie. Toch zullen er nog sommige proliferatie en celdood, en fase-contrast beelden genomen vóór en na het experiment niet in staat om onderscheid tussen hen te zijn.

De live-cel beeldvormende techniek richt deze beperking van conventionele wondgenezing tests. Met behulp van een Microscoop wonen-imaging in combinatie met een CO2 incubator en passende temperatuurregeling, onderzoekers de kloof grootte kunnen meten en het percentage van de sluiting na verloop van tijd terwijl tracering van het verkeer van actief migreren cellen gelegen op de toppen van de invasieve voorkant. Vandaar, de uitvoering van live-cel imaging als u wilt controleren cel migratie zal niet alleen het leveren van betere visualisatie van cel migratie, maar zal ook voorzien in de mogelijkheid om te differentiëren tussen cel migratie en celproliferatie, waardoor een meer betrouwbare analyse van cel migratie.

In deze studie werden MCF10A borst epitheliale cellen gebruikt om aan te tonen van de combinatie van de wond-genezing assay en live-cel imaging om te bestuderen van de rol van TIP60 in cel migratie. De uitputting van de TIP60 resulteert in verhoogde migratie capaciteiten in MCF10A cellen.

Protocol

1. voorbereiding MCF10A-kweekmedium bereiden: Dulbecco van bewerkt Eagle Medium (DMEM) / F12 (1:1) met 5% paard serum, 20 ng/mL epitheliale groeifactor 0,5 mg/mL hydrocortison, 100 ng/mL cholera-toxine en 10 µg Fe/mL insuline. Bereiden serumvrij medium: DMEM/F12 (1:1) met 20 ng/mL epitheliale groeifactor, 0,5 mg/mL hydrocortison 100 ng/mL cholera-toxine en 10 µg Fe/mL insuline. Gebruik de volgende siRNA-reeks:siControl:Forward: 5′-CGUACGCGGAAUACUUCGAdTdT-3’Omgekeerde: 5′-UCGAAG…

Representative Results

Algemene Schema van Live-Imaging gebaseerde cel migratie AssayFiguur 1A is een schema van dit protocol. MCF10A cellen transfected met siControl toonde typische epitheliale morfologie. Na de uitputting van de TIP60 waren MCF10A cellen meer mesenchymale in vergelijking met cellen (figuur 1B). Onderzoek van TIP60 vechtpartij efficiëntie</stron…

Discussion

Het is bekend dat in het proces van migratie van de cel, cellen ofwel beweging in de vorm van aanhangend vellen kunnen; losse clusters; of enkele, geïsoleerde cellen. De modus en de dynamiek van de invasie van de cel kunnen variëren van één voorwaarde naar de andere en het fenotype binnen uur kunt wijzigen. De traditionele wondgenezing bepaling is gebaseerd op opnames van de momentopname van een microscoop met een lange tijdsinterval, bijvoorbeeld 12 of 24 h. Dit maakt het moeilijk om de dynamiek van de sluiting van …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken de leden van het JBZ-laboratorium voor hun nuttige discussie en commentaar. S.J. werd gesteund door subsidies van de National Research Foundation Singapore en het Singapore ministerie van onderwijs onder de onderzoekscentra van Excellence initiatief naar de kanker Science Institute van Singapore (R-713-006-014-271), de nationale medische Onderzoeksraad (CBRG-NIG; BNIG11nov001 en CS-IRG; R-713-000-162-511), het ministerie van onderwijs academische onderzoeksfonds (MOE AcRF Tier 1 T1-2012 okt-04). Y.Z., G.S.C. en C.Y.T. werden ondersteund door een postdoctorale fellowship uitgereikt door de kanker Science Institute van Singapore, National University of Singapore.

Materials

MCF10A cell ATCC CRL-10317TM Breast epithelial cell
DMEM/F12 media (1:1) Gibco 11330-032 MCF10A culture media
Epithelial growth factor (EGF) Peprotech AF-100-15 Supplements for MCF10A culture media
Cholera Toxin Sigma-Aldrich C-8052 Supplements for MCF10A culture media
Hydrocortisone Sigma-Aldrich H-0888 Supplements for MCF10A culture media
Insulin Sigma-Aldrich I-1882 Supplements for MCF10A culture media
House serum Gibco 16050-122 Supplements for MCF10A culture media
Trypsin Gibco 25200-056 For MCF10A detach from plate
Hemacytometer Fisher Scientific 267110 For counting cell
Opti-MEM reduced serum media Gibco 31985-070 For siRNA mixture
Lipofectamine RNAiMAX Invitrogen/Life Technologies 56532 Transfect reagent
Trizol reagent Invitrogen/Life Technologies 15596-026 For mRNA extraction
iScript cDNA Synthesis Kit Bio-Rad 170-8891 For cDNA generation
iTaq Universal SYBR Green Supermix Bio-Rad 172-5125 For real time qPCR
7500 Fast Real Time PCR system Biosystems Real time qPCR mechine
10-cm dish Greiner bio-one 664160 For Knockdown experiment
24-well plate Cellstar 662160 For wound healing assay
siControl siRNA Self designed Self designed CGUACGCGGAAUACUUCGAdTdT
siTIP60 siRNA Self designed Self designed UGAUCGAGUUCAGCUAUGAdTdT
Live cell observer Zeiss Zeiss inverted Cell Observer for live cell experiments

Referências

  1. Sun, Y., Jiang, X., Chen, S., Fernandes, N., Price, B. D. A role for the Tip60 histone acetyltransferase in the acetylation and activation of ATM. Proc Natl Acad Sci U S A. 102 (37), 13182-13187 (2005).
  2. Sykes, S. M., Stanek, T. J., Frank, A., Murphy, M. E., McMahon, S. B. Acetylation of the DNA binding domain regulates transcription-independent apoptosis by p53. J Biol Chem. 284 (30), 20197-20205 (2009).
  3. Jha, S., Shibata, E., Dutta, A. Human Rvb1/Tip49 is required for the histone acetyltransferase activity of Tip60/NuA4 and for the downregulation of phosphorylation on H2AX after DNA damage. Mol Cell Biol. 28 (8), 2690-2700 (2008).
  4. Sapountzi, V., Logan, I. R., Robson, C. N. Cellular functions of TIP60. Int J Biochem Cell Biol. 38 (9), 1496-1509 (2006).
  5. Squatrito, M., Gorrini, C., Amati, B. Tip60 in DNA damage response and growth control: many tricks in one HAT. Trends Cell Biol. 16 (9), 433-442 (2006).
  6. Sun, Y., Xu, Y., Roy, K., Price, B. D. DNA damage-induced acetylation of lysine 3016 of ATM activates ATM kinase activity. Mol Cell Biol. 27 (24), 8502-8509 (2007).
  7. Sykes, S. M., et al. Acetylation of the p53 DNA-binding domain regulates apoptosis induction. Mol Cell. 24 (6), 841-851 (2006).
  8. Tang, Y., Luo, J., Zhang, W., Gu, W. Tip60-dependent acetylation of p53 modulates the decision between cell-cycle arrest and apoptosis. Mol Cell. 24 (6), 827-839 (2006).
  9. Chen, G., Cheng, Y., Tang, Y., Martinka, M., Li, G. Role of Tip60 in human melanoma cell migration, metastasis, and patient survival. J Invest Dermatol. 132 (11), 2632-2641 (2012).
  10. Gorrini, C., et al. Tip60 is a haplo-insufficient tumour suppressor required for an oncogene-induced DNA damage response. Nature. 448 (7157), 1063-1067 (2007).
  11. Jha, S., et al. Destabilization of TIP60 by human papillomavirus E6 results in attenuation of TIP60-dependent transcriptional regulation and apoptotic pathway. Mol Cell. 38 (5), 700-711 (2010).
  12. Kim, J. H., et al. Transcriptional regulation of a metastasis suppressor gene by Tip60 and beta-catenin complexes. Nature. 434 (7035), 921-926 (2005).
  13. Sakuraba, K., et al. Down-regulation of Tip60 gene as a potential marker for the malignancy of colorectal cancer. Anticancer Res. 29 (10), 3953-3955 (2009).
  14. Subbaiah, V. K., et al. E3 ligase EDD1/UBR5 is utilized by the HPV E6 oncogene to destabilize tumor suppressor TIP60. Oncogene. , (2015).
  15. Friedl, P., Wolf, K. Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nat Rev Cancer. 3 (5), 362-374 (2003).
  16. Nguyen, D. X., Bos, P. D., Massague, J. Metastasis: from dissemination to organ-specific colonization. Nat Rev Cancer. 9 (4), 274-284 (2009).
  17. Zijl, F., Krupitza, G., Mikulits, W. Initial steps of metastasis: cell invasion and endothelial transmigration. Mutat Res. 728 (1-2), 23-34 (2011).
  18. Lamouille, S., Xu, J., Derynck, R. Molecular mechanisms of epithelial-mesenchymal transition. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (3), 178-196 (2014).
  19. Liang, C. C., Park, A. Y., Guan, J. L. In vitro scratch assay: a convenient and inexpensive method for analysis of cell migration in vitro. Nat Protoc. 2 (2), 329-333 (2007).
  20. Zhang, Y., et al. TIP60 inhibits metastasis by ablating DNMT1-SNAIL2-driven epithelial-mesenchymal transition program. J Mol Cell Biol. , (2016).
  21. Riahi, R., Yang, Y., Zhang, D. D., Wong, P. K. Advances in wound-healing assays for probing collective cell migration. J Lab Autom. 17 (1), 59-65 (2012).
  22. Jonkman, J. E., et al. An introduction to the wound healing assay using live-cell microscopy. Cell Adh Migr. 8 (5), 440-451 (2014).

Play Video

Citar este artigo
Zhang, Y., Chia, G. S., Tham, C. Y., Jha, S. Live-imaging of Breast Epithelial Cell Migration After the Transient Depletion of TIP60. J. Vis. Exp. (130), e56248, doi:10.3791/56248 (2017).

View Video