In tempo reale tremare-indotta conversione analisi per rilevazione di CWD prioni nel materiale fecale
Summary
Qui, presentiamo un protocollo per descrivere una tecnica di amplificazione del prion semplice, veloce ed efficiente, il metodo di conversione indotta da tremare in tempo reale (RT-QuIC).
Abstract
La tecnica RT-QuIC è un sensibili in vitro senza cellula del prion amplificazione saggio basato principalmente sul seminato misfolding e aggregazione del substrato di proteina (PrP) prionica ricombinante usando i semi del prion come modello per la conversione. RT-QuIC è una tecnica novella di alto-rendimento che è analoga alla reazione a catena della polimerasi in tempo reale (PCR). Rilevamento della crescita della fibrilla dell’amiloide è basato sul colorante Tioflavina T, che reagisce in su specifica interazione con proteine ricche ᵦ-foglio. Pertanto, la formazione dell’amiloide possa essere rilevati in tempo reale. Abbiamo tentato di sviluppare un test di screening non invasivo affidabile per rilevare i sprecare prioni (CWD) la malattia cronica in estratto fecale. Qui, in particolare abbiamo adattato la tecnica RT-QuIC per rivelare PrPSc semina attività nelle feci di CWD infettati cervidi. Inizialmente, l’attività di semina degli estratti fecali che abbiamo preparato era relativamente basso in RT-QuIC, probabilmente a causa di potenziali inibitori di dosaggio del materiale fecale. Per migliorare l’attività semina degli estratti di feci e rimuovere potenziali inibitori di dosaggio, abbiamo omogeneizzato i campioni fecali in un tampone contenente detergenti e inibitori della proteasi. Abbiamo anche presentato i campioni di diverse metodologie per concentrarsi PrPSc sulla base di precipitazione della proteina usando acido fosfotungstico sodio e forza centrifuga. Infine, gli estratti di feci sono stati testati da ottimizzato RT-QuIC che comprendeva la sostituzione del substrato nel protocollo per migliorare la sensibilità di rilevazione. Così, abbiamo stabilito un protocollo per rilevazione sensibile del prione CWD semina attività nelle feci di cervidi pre-clinici e clinici di RT-QuIC, che può essere uno strumento pratico per la diagnosi non invasiva di CWD.
Introduction
Malattie da prioni o encefalopatie spongiformi trasmissibili (TSE) sono disordini neurodegenerative compreso la malattia di Creutzfeldt – Jakob (CJD) negli esseri umani, l’encefalopatia spongiforme bovina (BSE) nei bovini, scrapie nelle pecore e capre e di sprecare cronica malattia (CWD) nei cervidi 1,2. Le TSE sono caratterizzate da aspetto spongiforme distintivo e perdita di neuroni nel cervello. Secondo l’ipotesi della “proteina solo”, i prioni sono costituiti principalmente di PrPSc (‘Sc’ scrapie) 3, un’isoforma misfolded della proteina prionica cellulare host-codificati, PrPC. PrPSc risultante dalla conversione di PrPC in una conformazione arricchita in schede tecniche ᵦ 4,5,6 , che può agire come un seme di legare e convertire altre molecole di PrPC . Le molecole di PrPSc appena generate sono incorporate in un crescente polimero 7,8 , che si rompe in oligomeri più piccoli, con conseguente più alti numeri di nuclei infettivi. PrPSc è incline all’aggregazione ed è parzialmente resistente alle proteasi 9,10.
CWD colpisce selvatici e di allevamento degli alci (Cervus canadensis), cervo mulo (Odocoileus hemionus), cervi dalla coda bianca (WTD; Odocoileus virginianus), alce (Alces alces) e la renna (Rangifer tarandus tarandus) 11,12,13. È considerato la più contagiosa malattia prionica con trasmissione orizzontale favorito da interazioni di cervidi e persistenza ambientale di infettività 14,15. A differenza di altre malattie da prioni dove PrPSc accumulo e infettività sono confinati al cervello, in CWD questi si trovano anche in tessuti periferici e fluidi corporei es. saliva, urina e feci 16,17, 18.
Immunohistochemistry è considerato il gold standard per la diagnosi CWD rilevare la distribuzione di PrPSc e lesioni spongiformi 19,20. ELISA e in casi più rari, macchia occidentale sono utilizzati anche per la diagnostica CWD. Così, la diagnosi delle malattie da prioni attuale si basa principalmente sulla rilevazione di prioni in tessuti post-mortem. La diagnosi ante mortem per CWD è disponibile prendendo le tonsille o le biopsie di tessuto linfoide mucosa-collegato recto-anale (RAMALT); Tuttavia, questa procedura è invasiva e richiede la cattura degli animali. Pertanto, l’uso di esemplari facilmente accessibili, come urina e feci, sarebbe un modo pratico per il rilevamento del prion CWD. Tuttavia, quei harbor escrementi relativamente basse concentrazioni di prioni sotto il limite di rilevamento degli attuali metodi di diagnostici. Di conseguenza, è necessario uno strumento diagnostico più sensibile e più alta di velocità effettiva. Analisi in vitro sistemi di conversione, quali proteina misfolding ciclica amplificazione (PMCA) 21, amiloide semina analisi e conversione indotta da tremare in tempo reale (RT-QuIC) dosaggio 22,23, 24 sono strumenti molto potenti per sfruttare la capacità auto-moltiplicazione di PrPSc di mimare in vitro il processo di conversione da prioni e quindi amplificare la presenza di piccole quantità di PrPSc a livelli rilevabili 25 ,26. Tuttavia, il metodo RT-QuIC, sfrutta il fatto che il prodotto di conversione arricchito nella struttura secondaria β-foglio può legano specificamente Tioflavina T (Th-T). Di conseguenza, PrP ricombinante (rPrP) al momento della conversione seminato cresce in fibrille amiloidi che legano Th-T e pertanto possono essere rilevate in tempo reale misurando la fluorescenza della Th-T espresso in unità di fluorescenza relativa (RFU) nel corso del tempo. Una volta controllati, la RFU può essere utilizzata per valutare la relativa attività di semina e parametri quantitativi quali la fase di ritardo. La fase di ritardo rappresenta il tempo (h) necessario per raggiungere la soglia, durante il quale rPrP conversione nella fase iniziale della reazione è inferiore al limite di rilevazione di fluorescenza Th-T. Alla fine della fase di apparente ritardo, concomitante alla formazione di un nucleo dell’amiloide sufficiente (nucleazione/allungamento), si verifica quando la fluorescenza di Th-T supera il livello di soglia e diventa positiva. La crescita di amiloide fibrille possono essere rilevati in tempo reale e l’iniziale PrPSc o semina attività contenuta nel campione è amplificata dalla segmentazione che genera più semi. Questi semi inducono a sua volta una rapida fase esponenziale di crescita della fibra dell’amiloide.
Perché questo test è in grado di rilevare basso quanto 1 fg di PrPSc 24, l’alta sensibilità si qualifica questa tecnica per realizzare ante mortem o diagnosi non invasiva rilevando PrPSc in vari tessuti periferici, escrementi o altre tipi di campione che harboring i bassi livelli di infettività. RT-QuIC offre sicuramente vantaggi rispetto altri dosaggi per la sua riproducibilità, praticità, rapidità (meno di 50 h) e bassi costi rispetto alle analisi biologiche. Evita la complessità tecniche quali sonicazione utilizzato in PMCA; Inoltre, viene eseguita in una micropiastra nastro sigillato che minimizza il rischio di contaminazione dell’aerosol di ciascun pozzetto. Il formato multi-pozzetto permette l’analisi di fino a 96 campioni nello stesso esperimento. Per contrastare il problema ricorrente di falsi positivi e conversione spontanea di rPrP nelle analisi in vitro conversione l’implementazione di una soglia (cut-off) in RT-QuIC è molto utile. Infatti, sulla base dei risultati del controllo negativo (media RFU di campioni negativi + 5 SD 27), una linea di base è impostato da cui si può fare discriminazione tra positivi e negativi. L’uso di quattro repliche per ogni campione così può contribuire a definire un campione come positivo quando almeno il 50% dei replicati mostrano un segnale positivo, cioè attraversare il cut-off 28. L’omologia tra seme e substrato non è necessaria in RT-QuIC, come ad esempio in uno studio precedente, criceto rPrP è stato trovato per essere un substrato più sensibile rispetto al substrato omologo in umano PrPvCJD seminato e scrapie delle pecore seminato reazioni 29. criceto-pecore chimerico rPrP inoltre è stato suggerito un substrato più adatto rispetto umano rPrP per rilevare umano variante CJD prioni 30. Pertanto, l’utilizzo di substrati rPrP da diverse specie è molto comune in questo test. Questo test è stato applicato con successo a parecchie malattie da prioni, quali sporadiche CJD 31,32,33, gendi malattie da prioni etic 34, BSE 35,36,37, scrapie 23,36e CWD 38,39,40,41, 42. Gli studi che utilizzano elaborati del liquido cerebrospinale, sangue intero, saliva e urina come semi in RT-QuIC erano tutti di successo per rilevare PrPSc 38,39,40,41, 42. per favorire la capacità di rilevazione campioni come nel plasma sanguigno che possono contenere inibitori della formazione dell’amiloide, Orrú et al. (2011) ha sviluppato una strategia per rimuovere potenziali inibitori della formazione dell’amiloide da pettinatura PrPSc immunoprecipitazione (IP) passo e RT-QuIC, denominato “enhanced QuIC” dosaggio (eQuIC). Inoltre, un passo di sostituzione del substrato è stato impiegato dopo ~ 24 h tempo di reazione al fine di migliorare la sensibilità. In definitiva, come basso come 1 ag di PrPSc era rilevabile da eQuIC 30.
Al fine di purificare le feci estratti e rimuovere gli inibitori possibile dosaggio nelle feci, campioni di feci raccolti nelle fasi precliniche e cliniche da elk al momento dell’infezione orale sperimentale sono stati omogeneizzati in tampone contenente detergenti e inibitori della proteasi. Gli estratti di feci ulteriormente sono stati sottoposti a diverse metodologie per concentrarsi PrPSc nei campioni utilizzando la precipitazione della proteina tramite precipitazione di sodio fosfotungstico acido (NaPTA). Il metodo di precipitazione di NaPTA, in primo luogo descritto da Safar et al. 43, è usato per concentrare PrPSc in campioni di prova. L’incubazione di NaPTA con i risultati del campione in precipitazione preferenziale di PrPSc piuttosto che PrPC. Tuttavia, il meccanismo molecolare è ancora poco chiaro. Questo passaggio ha aiutato anche contenenti e impedendo la conversione spontanea del rPrP, che si osserva in alcuni casi. Infine, gli estratti di feci sono stati testati da ottimizzato RT-QuIC usando mouse rPrP (aa 23-231) come substrato e compresa la sostituzione del substrato nel protocollo per migliorare la sensibilità di rilevazione.
Qui i risultati dimostrano che questo metodo migliorato in grado di rilevare concentrazioni molto basse di prioni CWD e aumenta la sensibilità di rilevazione e specificità in campioni di feci rispetto a un protocollo senza sostituzione di precipitazione e substrato di NaPTA. Potenzialmente, questo metodo può essere applicato ad altri tessuti e fluidi corporei e può essere di grande utilità per la sorveglianza di CWD nei cervidi selvatici.
Protocol
Representative Results
Discussion
RT-QuIC precedentemente è stata impiegata per rilevare i prioni CWD in urina ed estratti fecali di oralmente infetti cervi bianco – muniti e cervo mulo 38. Il sistema illustrato in questo manoscritto è un metodo adattato del dosaggio RT-QuIC. Passaggi aggiuntivi furono incorporati nell’analisi di RT-QuIC “classica” per migliorare la rilevazione e la sensibilità del dosaggio per i prioni CWD nel materiale fecale degli animali infetti.
La bassa sensibilità di rilevazi…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Siamo grati al Dr. Byron Caughey (NIH Rocky Mountain Laboratories) per fornire formazione ed il plasmide di espressione batterica PrP cervide. SG è supportato dal programma Canada Research Chair. Riconosciamo che il finanziamento per la ricerca a SG di Genome Canada, Prion Alberta Research Institute, Alberta agricoltura e silvicoltura attraverso Genome Alberta e l’Università di Calgary a sostegno di questo lavoro. Riconosciamo un assegno di ricerca dalla Margaret Gunn Foundation for Animal Research.
Materials
| Materials | |||
| Acrodisc seringe filters | PALL | 4652 | |
| amicon Ultra-15 Centrifugal filter Unit | Millipore | UCF901024 | |
| BD 10 ml seringe | VWR | CA75846-842 | |
| Chloramphenicol | Sigma-Aldrich | C0378 | |
| Corning bottle-top vacuum filters | Sigma-Aldrich | 431118 | |
| Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma-Aldrich | E4884 | |
| gentleMACS M Tube | Miltenyi Biotec | 130-093-236 | |
| Guanidine hydrochloride | Sigma-Aldrich | G4505 | |
| Imidazole | Sigma-Aldrich | I5513 | |
| Isopropanol | Sigma-Aldrich | I9516 | |
| Kanamycin sulfate | Sigma-Aldrich | 60615 | |
| Luria-Bertani (LB) broth | ThermoFisher Scientific | 12780029 | |
| Magnesium chloride | Sigma-Aldrich | M9272 | |
| N2 supplement (100X) | ThermoFisher Scientific | 15502048 | |
| N-lauroylsarcosine sodium salt (sarkosyl) | Sigma-Aldrich | ML9150 | |
| Nanosep centrifugal devices with omega membrane 100K | PALL | OD100C34 | |
| Nunc sealing tapes | ThermoFisher Scientific | 232702 | |
| Parafilm M | VWR | 52858-000 | |
| phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) | Sigma-Aldrich | P7626 | |
| Protease inhibitor tablet | Roche | 4693159001 | |
| Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S3014 | |
| Sodium deoxycholate | Sigma-Aldrich | D6750 | |
| Sodium dodecyl sulfate (SDS) | Calbiochem | 7910-OP | |
| sodium phosphate | Sigma-Aldrich | 342483 | |
| Sodium phosphate dibasic anhydrous | Sigma-Aldrich | S9763 | |
| Sodium phosphate monobasic monohydrate | Sigma-Aldrich | S9638 | |
| Sodium phosphotungstate hydrate (NaPTA) | Sigma-Aldrich | 496626 | |
| Thioflavin T | Sigma-Aldrich | T3516 | |
| Tris-Hydroxy-Methyl-Amino-Methan (Tris) | Sigma-Aldrich | T6066 | |
| Triton-100 | Calbiochem | 9410-OP | |
| Tween 20 | Sigma-Aldrich | P7949 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Commercial buffers and solutions | |||
| BugBuster Master Mix | Nogagen | 71456-4 | |
| Ni-NTA superflow | Qiagen | 1018401 | |
| Phosphate-buffered saline (PBS) pH 7.4 (1X) | Life Technoligies | P5493 | |
| UltraPure Distilled Water | Invitrogen | 10977015 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Standards and commercial kits | |||
| Express Autoinduction System 1 | Novagen | 71300-4 | |
| Pierce BCA Protein Assay Kit | ThermoFisher Scientific | 23227 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment setup | |||
| AKTA protein purification systems FPLC | GE Healthcare Life Sciences | ||
| Beckman Avanti J-25 Centrifuge | Beckman Coulter | ||
| Beckman rotor JA-25.50 | Beckman Coulter | ||
| Beckman rotor JA-10 | Beckman Coulter | ||
| FLUOstar Omega microplate reader | BMG Labtech | ||
| gentleMACS Dissociator | Miltenyi Biotec | 130-093-235 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Sofware | |||
| MARS Data Analysis | BMG Labtech | ||
| GraphPad Prism6 | GraphPad software |
Referências
- Watts, J. C., Balachandran, A., Westaway, D. The expanding universe of prion diseases. PLoS Pathog. 2 (3), (2006).
- Wadsworth, J. D., Collinge, J. Update on human prion disease. Biochim Biophys Acta. 1772 (6), 598-609 (2007).
- Prusiner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie. Science. 216 (4542), 136-144 (1982).
- Groveman, B. R., et al. Parallel in-register intermolecular beta-sheet architectures for prion-seeded prion protein (PrP) amyloids. J Biol Chem. 289 (35), 24129-24142 (2014).
- Vazquez-Fernandez, E., et al. The Structural Architecture of an Infectious Mammalian Prion Using Electron Cryomicroscopy. PLoS Pathog. 12 (9), e1005835 (2016).
- Wille, H., et al. Structural studies of the scrapie prion protein by electron crystallography. Proc Natl Acad Sci U S A. 99 (6), 3563-3568 (2002).
- Caughey, B. Prion protein conversions: insight into mechanisms, TSE transmission barriers and strains. Br Med Bull. 66, 109-120 (2003).
- Soto, C., Estrada, L., Castilla, J. Amyloids, prions and the inherent infectious nature of misfolded protein aggregates. Trends Biochem Sci. 31 (3), 150-155 (2006).
- Prusiner, S. B. Prions. Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (23), 13363-13383 (1998).
- McKinley, M. P., Bolton, D. C., Prusiner, S. B. A protease-resistant protein is a structural component of the scrapie prion. Cell. 35 (1), 57-62 (1983).
- Benestad, S. L., Mitchell, G., Simmons, M., Ytrehus, B., Vikoren, T. First case of chronic wasting disease in Europe in a Norwegian free-ranging reindeer. Vet Res. 47 (1), 88 (2016).
- Williams, E. S., Young, S. Chronic wasting disease of captive mule deer: a spongiform encephalopathy. J Wildl Dis. 16 (1), 89-98 (1980).
- Gilch, S., et al. Chronic wasting disease. Top Curr Chem. 305, 51-77 (2011).
- Johnson, C. J., Pedersen, J. A., Chappell, R. J., McKenzie, D., Aiken, J. M. Oral transmissibility of prion disease is enhanced by binding to soil particles. PLoS Pathog. 3 (7), e93 (2007).
- Pritzkow, S., et al. Grass plants bind, retain, uptake, and transport infectious prions. Cell Rep. 11 (8), 1168-1175 (2015).
- Mathiason, C. K., et al. Infectious prions in the saliva and blood of deer with chronic wasting disease. Science. 314 (5796), 133-136 (2006).
- Tamguney, G., et al. Asymptomatic deer excrete infectious prions in faeces. Nature. 461 (7263), 529-532 (2009).
- Haley, N. J., Seelig, D. M., Zabel, M. D., Telling, G. C., Hoover, E. A. Detection of CWD prions in urine and saliva of deer by transgenic mouse bioassay. PLoS One. 4 (3), e4848 (2009).
- Spraker, T. R., et al. Validation of monoclonal antibody F99/97.6.1 for immunohistochemical staining of brain and tonsil in mule deer (Odocoileus hemionus) with chronic wasting disease. J Vet Diagn Invest. 14 (1), 3-7 (2002).
- Spraker, T., et al. Comparison of histological lesions and immunohistochemical staining of proteinase-resistant prion protein in a naturally occurring spongiform encephalopathy of free-ranging mule deer (Odocoileus hemionus) with those of chronic wasting disease of captive mule deer. Vet Pathol. 39 (1), 110-119 (2002).
- Saborio, G. P., Permanne, B., Soto, C. Sensitive detection of pathological prion protein by cyclic amplification of protein misfolding. Nature. 411 (6839), 810-813 (2001).
- Atarashi, R., et al. Simplified ultrasensitive prion detection by recombinant PrP conversion with shaking. Nature Methods. 5 (3), 211-212 (2008).
- Wilham, J. M., et al. Rapid end-point quantitation of prion seeding activity with sensitivity comparable to bioassays. PLoS Pathog. 6 (12), e1001217 (2010).
- Atarashi, R., Sano, K., Satoh, K., Nishida, N. Real-time quaking-induced conversion: a highly sensitive assay for prion detection. Prion. 5 (3), 150-153 (2011).
- Atarashi, R., et al. Ultrasensitive human prion detection in cerebrospinal fluid by real-time quaking-induced conversion. Nat Med. 17 (2), 175-178 (2011).
- Wilham, J. M., et al. Rapid end-point quantitation of prion seeding activity with sensitivity comparable to bioassays. PLoS Pathog. 6 (12), e1001217 (2010).
- Cheng, Y. C., et al. Early and Non-Invasive Detection of Chronic Wasting Disease Prions in Elk Feces by Real-Time Quaking Induced Conversion. PLoS One. 11 (11), e0166187 (2016).
- Cramm, M., et al. Stability and Reproducibility Underscore Utility of RT-QuIC for Diagnosis of Creutzfeldt-Jakob Disease. Mol Neurobiol. 53 (3), 1896-1904 (2016).
- Orrú, C., et al. Human variant Creutzfeldt-Jakob disease and sheep scrapie PrP(res) detection using seeded conversion of recombinant prion protein. Protein Eng Des Sel. 22 (8), 515-521 (2009).
- Orrú, C. D., et al. Prion disease blood test using immunoprecipitation and improved quaking-induced conversion. MBio. 2 (3), (2011).
- Atarashi, R., et al. Ultrasensitive human prion detection in cerebrospinal fluid by real-time quaking-induced conversion. Nat Med. 17 (2175-2178), (2011).
- Orrú, C. D., et al. A test for Creutzfeldt-Jakob disease using nasal brushings. N Engl J Med. 371 (19), 519-529 (2014).
- Orrú, C. D., et al. Rapid and sensitive RT-QuIC detection of human Creutzfeldt-Jakob disease using cerebrospinal fluid. MBio. 6 (1), (2015).
- Sano, K., et al. Early detection of abnormal prion protein in genetic human prion diseases now possible using real-time QUIC assay. PLoS One. 8 (1), e54915 (2013).
- Orrú, C., et al. Detection and discrimination of classical and atypical L-type bovine spongiform encephalopathy by real-time quaking-induced conversion. J Clin Microbiol. 53 (4), 1115-1120 (2015).
- Orrú, C. D., et al. Bank vole prion protein as an apparently universal substrate for RT-QuIC-based detection and discrimination of prion strains. PLoS Pathog. 11 (6), e1004983 (2015).
- Masujin, K., et al. Detection of Atypical H-Type Bovine Spongiform Encephalopathy and Discrimination of Bovine Prion Strains by Real-Time Quaking-Induced Conversion. J Clin Microbiol. 54 (3), 676-686 (2016).
- John, T. R., Schätzl, H. M., Gilch, S. Early detection of chronic wasting disease prions in urine of pre-symptomatic deer by real-time quaking-induced conversion assay. Prion. 7 (3), 253-258 (2013).
- Henderson, D. M., et al. Rapid antemortem detection of CWD prions in deer saliva. PLoS One. 8 (9), e74377 (2013).
- Elder, A., et al. In vitro detection of prionemia in TSE-infected cervids and hamsters. PLoS OnE. 8 (11), e80203 (2013).
- Haley, N. J., et al. Prion-seeding activity in cerebrospinal fluid of deer with chronic wasting disease. PLoS One. 8 (11), e81488 (2013).
- Haley, N., et al. Detection of chronic wasting disease in the lymph nodes of free-ranging cervids by real-time quaking-induced conversion. J Clin Microbiol. 52 (9), 3237-3243 (2014).
- Safar, J., et al. Eight prion strains have PrP(Sc) molecules with different conformations. Nat Med. 4 (10), 1157-1165 (1998).
- Xiong, L. -. W., Raymond, L. D., Hayes, S. F., Raymond, G. J., Caughey, B. Conformational change, aggregation and fibril formation induced by detergent treatments of cellular prion protein. J Neurochem. 79 (3), 669-678 (2001).
- Wille, H., et al. Surface charge of polyoxometalates modulates polymerization of the scrapie prion protein. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (10), 3740-3745 (2009).
- Lee, I. S., Long, J. R., Prusiner, S. B., Safar, J. G. Selective Precipitation of Prions by Polyoxometalate Complexes. J Am Chem Soc. 127 (40), 13802-13803 (2005).
- Levine, D. J., et al. Mechanism of scrapie prion precipitation with phosphotungstate anions. ACS Chem Biol. 10 (5), 1269-1277 (2015).
- Gonzalez-Montalban, N., et al. Highly efficient protein misfolding cyclic amplification. PLoS Pathog. 7 (2), e1001277 (2011).
- Moudjou, M., et al. Glycoform-independent prion conversion by highly efficient, cell-based, protein misfolding cyclic amplification. Sci Rep. 6, 29116 (2016).
- Moudjou, M., et al. Highly infectious prions generated by a single round of microplate-based protein misfolding cyclic amplification. MBios. 5 (1), (2013).
- Orru, C. D., et al. Human variant Creutzfeldt-Jakob disease and sheep scrapie PrP(res) detection using seeded conversion of recombinant prion protein. Protein Eng Des Sel. 22 (8), 515-521 (2009).
- McGuire, L. I., et al. Real time quaking-induced conversion analysis of cerebrospinal fluid in sporadic Creutzfeldt-Jakob disease. Ann Neurol. 72 (2), 278-285 (2012).
- Orru, C. D., et al. Prion disease blood test using immunoprecipitation and improved quaking-induced conversion. MBio. 2 (3), (2011).
