Summary

Isolement et culture des Cardiomyocytes de Rat adulte

Published: October 19, 2017
doi:

Summary

Nous présentons ici un protocole pour l’isolement et la culture du rat adulte cardiomyocytes ventriculaires (CVDA). CVDA isolé peut être utilisé pour la culture à courte et à long terme. L’isolement et la culture de CVDA peuvent jouer un rôle clé dans l’élaboration de nouveaux schémas thérapeutiques pour les maladies cardiaques.

Abstract

Dans un coeur intact, cellules adjacentes influencent les cardiomyocytes adultes. Avec la méthode d’isolement et culture des cardiomyocytes adultes, une enquête précise sur le comportement de ces cellules sous traitements spécifiques et des environnements est possible. Ce manuscrit présente un protocole pour la réussite de l’isolement et culture des cardiomyocytes ventriculaires de rat adulte (CVDA).

Le rat est sacrifié par dislocation cervicale sous anesthésie profonde. Puis, le cœur est extraite et l’aorte est découvert. Par la suite, une perfusion sur le système de perfusion de Langendorff avec épuisement de calcium et le traitement de la collagénase est effectuée. Par la suite, tissu ventriculaire obtient haché, rediffusée et filtré, suivi de trois étapes de centrifugation avec ajout graduel de CaCl2 jusqu’à ce que la concentration de calcium physiologique est atteinte. CVDA sont plaquées sur les récipients de culture cellulaire. Après avoir actualisé le milieu de culture cellulaire, CVDA peut être cultivé pendant six jours, sans changer le milieu de culture contenant du sérum. Isolement de CVDA est un processus délicat de calcium. Petits changements dans la concentration de calcium intracellulaire provoque une diminution de la qualité et la viabilité des cellules isolées.

Fraîchement isolées CVDA sont en forme de tige. Dans les premiers jours de culture, ils perdent les bâtonnet morphologie et forme pseudopodes structures semblables (propagation). Au cours de cette formation morphologique CVDA dégrader initialement leurs éléments contractiles, suivies d’une réforme par le biais de fibres de stress d’actine et de novo sarcomerogenesis. Après une semaine de la culture, la plupart CVDA montrent un aspect généralisé avec une striation transversale clairement décelable. Ce processus est sensible à la concentration de calcium intracellulaire, comme traitement avec ionomycine atténue la propagation. Les marqueurs clés dans ce processus de – et re – differentiation sont la chaîne lourde de β-myosine (β-MHC), oncostatine M (OSM) et swiprosin-1 (EFHD2). Des études récentes ont suggéré que cardiaque re – et de – differentiation survenant dans des conditions de culture imite caractéristiques vu in vivo au cours de remodelage cardiaque. Par conséquent, l’isolement et culture des CVDA jouent un rôle clé dans la compréhension de la biologie des cardiomyocytes.

Introduction

Les cardiomyocytes adultes en vivo fonctionne comme un syncytium électrique basé sur les contacts des cellules entre les myocytes. En outre, ils sont influencés par des cellules adjacentes comme les fibroblastes cardiaques, cellules endothéliales, les neurones et les cellules inflammatoires1. Afin d’étudier la capacité des cardiomyocytes à adapter leur organisation intracellulaire à modifié les conditions de charge, comme on le voit au cours de l’hypertrophie cardiaque, qui est une première étape conduisant à une insuffisance cardiaque, l’isolement et la culture du rat ventriculaire adulte cardiomyocytes (CVDA) est nécessaire2,3,4. Historiquement, les cardiomyocytes ont d’abord été isolés de l’embryon de poulet coeurs5,6. Quelques années plus tard, le premier isolement des cardiomyocytes différenciées en phase terminale a été décrite à l’aide de calcium appauvrissement de la couche7. Toutefois, ces cardiomyocytes adultes n’étaient pas calcique tolérant et ne pouvait donc pas être utilisés pour les tests fonctionnels. Enfin, en 1976, un nouveau protocole activé Powell et Twist d’enquêter sur des cardiomyocytes ventriculaires adultes sous des conditions physiologiques8. Dans un premier temps, ils ont isolement les cardiomyocytes adultes sous de faibles concentrations de calcium et par la suite une augmentation de calcium à des concentrations physiologiques dans une procédure par étapes. Aujourd’hui, la plupart des protocoles d’isolement et de culture des cardiomyocytes adultes travaillent avec ce protocole de calcium et utilisent collagénase pour la digestion enzymatique de la cellule-cellule dense contacts1.

Pour une culture réussie, sérum de veau foetal (FCS) ou oncostatine M (OSM) est requise. CVDA exécute une de – et re – differentiation avec les importants changements structurels dont sarcomère démontage et réforme9,10,11,12. Ce processus s’accompagne d’un re-expression des gènes de type fœtal, comme la chaîne lourde de β-myosine (β-MHC), comme dans une hypertrophie et une formation de structures ressemblant à des pseudopodes, également appelé épandage4,11, 13. en outre, swiprosin-1 (EFHD2), une protéine nouvellement identifiée, joue un rôle majeur dans le processus de re-différenciation des cultivés CVDA11. En conséquence, CVDA dans culture transformer en cellules généralisées, polymorphes, qui montrent spontanément des contractions après deux ou trois semaines dans la culture2,4,14.

Des découvertes récentes ont révélé que cardiaque re – et de – differentiation lorsqu’il produit dans des conditions de culture imite caractéristiques vu in vivo au cours de remodelage cardiaque10,15. Remodelage cardiaque est un processus clé lors des maladies cardiaques,16. Comme les maladies cardiaques constituent toujours la principale cause de mortalité dans les sociétés industrialisées, il est important de mieux comprendre la biologie des cardiomyocytes adultes (qui ; 2015). Isolement et culture des CVDA peuvent aider à développer de nouvelles stratégies et médicaments pour le traitement des maladies cardiaques. Ce manuscrit, un protocole pour l’isolement et la culture de CVDA est donné. En outre, certaines parties critiques de cette méthode sont mises en évidence dans la section « discussion ».

Protocol

l’enquête est menée selon le Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire publiée par le National Institute of Health (NIH Publication n° 85-23, révisée en 1996). En général, les rats wistar mâles âgés de 3 à 4 mois et avec un poids moyen de 250-350 g, sont utilisées pour ce protocole. Un coeur de rat est suffisant pour 20 Pétri (1 mL par plat ; diamètre intérieur : 35 mm) avec une densité cellulaire approximative de 1,5 x 10 4 cellules/1000 mm 2. <p cla…

Representative Results

Des cardiomyocytes adultes dans la culture : La figure 1 présente un aperçu des cardiomyocytes adultes fraîchement isolées 2 h après le dernier lavage. Environ 75 % des cardiomyocytes tous avaient une morphologie en forme de bâtonnet. Les 25 % restants ont montré un aspect inhabituel avec une morphologie ronde et la membrane de la cellule intacte de pas détectable (Figure 1). À la fin de la culture (jou…

Discussion

Le comportement des cardiomyocytes adultes in vivo est influencé par de nombreuses interactions avec les autres cellules (par exemple, les neurones, les cellules endothéliales, fibroblastes, cellules inflammatoires) et le syncytium électrique qu’ils composent1. Par conséquent, étudier le stress adaptation des cardiomyocytes adultes exclusivement nécessite l’isolement et la culture de CVDA. Les principaux effets d’isoler et de cultiver CVDA sont : 1) les déconnecter …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier Nadine Woitasky et Peter Volk pour l’assistance technique. En outre, les auteurs remercient Mme Claudia Lorenz (auteur médical, ACCEDIS) pour son aide dans la préparation du manuscrit. Ce manuscrit a été soutenu financièrement par la DFG (Schlu 324/7-1).

Materials

Langendorff perfusion system inhouse construction double-walled with a water
based heating system
Tissue chopper Mc Ilwain Cavey Laboratory Engeneering Co. Ltd.
Aortic Cannula, OD 1,8 mm inhouse construction
Abdominal shears Aeskulap BC772R
Capsule forceps Eickemeyer 171307
Dissecting scissor large Aeskulap BC562R
Dissecting scissor small Aeskulap BC163R
Mash with Polyamid Neolab 4-1413 mash size 200 μm
plastic disc Cavey Laboratory Engeneering Co. Ltd.
Collagenase Typ II Worthington LS004177

Referências

  1. Schlüter, K. -. D. . Cardiomyocytes – Active Players in Cardiac Disease. , (2016).
  2. Piper, H. M., Probst, I., Schwartz, P., Hutter, F. J., Spieckermann, P. G. Culturing of calcium stable adult cardiac myocytes. J. Mol. Cell. Cardiol. 14 (7), 397-412 (1982).
  3. Schlüter, K. -. D., Schreiber, D., Fabbro, D., McCormick, F. Adult ventricular cardiomyocytes: isolation and culture. Protein Tyrosine Kinases: From Inhibitors to Useful Drugs. 290, 305-314 (2005).
  4. Eppenberger, M. E., et al. Immunocytochemical analysis of the regeneration of myofibrils in long-term cultures of adult cardiomyocytes of the rat. Dev. Biol. 130 (1), 1-15 (1988).
  5. Burrows, M. T. The cultivation of tissues of the chick-embryo outside the body. JAMA. 55 (24), 2057-2058 (1910).
  6. Cavanaugh, M. W. Pulsation, migration and division in dissociated chick embryo heart cells in vitro. J Exp Zool A Eco Genet Physiol. 128 (3), 573-589 (1955).
  7. Muir, A. R. Further observation on the cellular structure of cardiac muscle. J. Anat. 99, 27-46 (1965).
  8. Powell, T., Twist, V. W. A rapid technique for the isolation and purification of adult cardiac muscle cells having respiratory control and a tolerance to calcium. Biochem. Biophys. Res. Com. 72 (1), 327-333 (1976).
  9. Schwarzfeld, T. Isolation and development in cell culture of myocardial cells of the adult rat. J. Mol. Cell. Cardiol. 13 (6), 563-575 (1981).
  10. Kubin, T., et al. Oncostatin M is a major mediator of cardiomyocyte dedifferentiation and remodeling. Cell Stem Cell. 9 (5), 420-432 (2011).
  11. Nippert, F., Schreckenberg, R., Hess, A., Weber, M., Schlüter, K. -. D. The effects of Swiprosin-1 on the formation of pseudopodia-like structures and β-adrenoceptor coupling in cultured adult rat ventricular cardiomyocytes. PLoS ONE. 11 (12), e0167655 (2016).
  12. Moses, R. L., Claycomb, W. C. Disorganization and reestablishment of cardiac muscle cell ultrastructure in cultured adult rat ventricular muscle cells. J. Ultrastruct. Res. 81 (3), 358-374 (1982).
  13. Eppenberger-Eberhardt, M., Flamme, I., Kurer, V., Eppenberger, H. M. Reexpression of α-smooth muscle actin isoform in cultured adult rat cardiomyocytes. Dev. Biol. 139 (2), 269-278 (1990).
  14. Fedak, P. W., Verma, S., Weisel, R. D., Skrtic, M., Li, R. K. Cardiac remodeling and failure: from molecules to man (Part III). Cardiovasc. Pathol. 14 (3), 109-119 (2005).
  15. Leri, A., Kajstura, J., Anversa, P. Mechanisms of myocardial regeneration. Trends Cardiovasc. Med. 21 (2), 52-58 (2011).
  16. Cohn, J. N., Ferrari, R., Sharpe, N. Cardiac remodeling-concepts and clinical implications: A consensus paper from an international forum on cardiac remodeling. J. Am. Coll. Cardiol. 35 (3), 569-582 (2000).
  17. Alberts, B., et al. . Molecular biology of the cell. , (2015).
  18. Pöling, J., et al. The Janus face of OSM-mediated cardiomyocyte dedifferentiation during cardiac repair and disease. Cell Cycle. 11 (3), 439-445 (2014).
  19. Decker, M. L., Behnke-Barclay, M., Cook, M. G., Lesch, M., Decker, R. S. Morphometric evaluation of the contractile apparatus in primary cultures of rabbit cardiac myocytes. Circ. Res. 69 (1), 86-94 (1991).
check_url/pt/56634?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Nippert, F., Schreckenberg, R., Schlüter, K. Isolation and Cultivation of Adult Rat Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (128), e56634, doi:10.3791/56634 (2017).

View Video