Summary

Forbigående udtryk af fremmede gener i insekt celler (sf9) for Protein funktionel analyse

Published: February 22, 2018
doi:

Summary

Denne protokol beskriver en heat shock-induceret protein udtryk system (pDHsp/V5-hans/sf9 celle system), som kan bruges til enten at udtrykke fremmede proteiner eller evaluere det anti-apoptotiske aktivitet af potentielle udenlandske proteiner og deres afkortet amino syrer i insekt celler.

Abstract

Forbigående gen expression system er en af de vigtigste teknologier til at udføre protein funktionel analyse i baculovirus i vitro celle kultur system. Dette system blev udviklet for at udtrykke fremmede gener under for baculoviral i forbigående udtryk plasmider kontrol. Dette system kan endvidere anvendes til en funktionel analyse af enten baculovirus selv eller fremmede proteiner. Mest almindeligt og kommercielt tilgængelige forbigående gen expression system er udviklet baseret på umiddelbar-tidlig gen (IE) promotor af Orgyia pseudotsugata multicapsid nucleopolyhedrovirus (OpMNPV). Men en lav udtryk niveau af fremmede gener i insekt celler blev observeret. Derfor, en forbigående gen expression system blev bygget for at forbedre protein udtryk. I dette system, var rekombinant plasmider konstrueret til at indeholde mål sekvens under kontrol af Drosophila heat shock 70 (Dhsp70) promotor. Denne protokol udgør anvendelsen af dette heat shock-baserede pDHsp/V5-hans (V5 epitop med 6 histidin) /Spodoptera frugiperda celle (sf9 celle) system; Dette system er ikke kun tilgængelig for genekspression men også for at vurdere den anti-apoptotiske aktivitet af kandidat proteiner i insekt celler. Desuden, dette system kan være enten transfekteret med en rekombinant plasmid eller co transfekteret to potentielt funktionelt antagonistiske rekombinant plasmider i insekt celler. Protokollen viser systemets effektivitet og giver en praktisk sagen om denne teknik.

Introduction

To protein udtryk systemer har været almindeligt anvendt til fremstilling af proteiner: prokaryot protein udtryk systemer (Escherichia coli gen expression system) og eukaryote protein udtryk systemer. En populær eukaryote protein udtryk system er baculovirus udtryk vektor system (BEVS)1. Baculoviruses blev først brugt som verdensomspændende biologisk kontrol agenser af landbrugs og skov skadedyr. I de sidste par årtier, var baculoviruses udviklet som bioteknologiske værktøjer til protein udtryk vektorer så godt. Genomer af baculoviruses består af dobbelt-strenget cirkulære DNA og indhyllede nucleocapsids2. Til dato har mere end 78 baculovirus blevet isolater sekventeret3. Baseret på den tidsmæssige kaskade af baculoviral gen udtryk i værtsceller insekt, kan gen transskription inddeles i fire tidsmæssige cascades, deriblandt øjeblikkelig-tidlig, forsinket-begyndelsen, slutningen og meget sent gener4.

BEVSs blev udpeget, således at de meget sent gen initiativtagere (dvs, polyeder eller p10 promotor) blev brugt til at drive mål gener, mens den rekombinante baculovirus blev genereret af homologe rekombination. Udtryk for fremmede proteiner i insekt celler af rekombinante baculovirus der ligner pattedyr proteiner i posttranslationelle modifikationer (velegnet til glycoprotein produktion). Således, at baculovirus har været udbredte5,6,7. Dog er en begrænsning tilstedeværelsen af forskellige N-glykosylering veje i insekt celler7.

Derfor blev en ny baculovirus ekspressionssystem, ekspressionssystem forbigående gen udviklet. Dette system giver udtryk for fremmede gener under kørsel af baculoviral umiddelbare-tidlig initiativtagere (dvs 1 promotor) i insekt celler. Ved hjælp af dette system, kan target proteinet være straks udtrykt under kontrol af ie-1 promotor mens du ændrer N-glykosylering pathway i insekt celler, hvilket resulterer i bedre N-linked oligosaccharider7. Desuden baculoviral umiddelbare-tidlige gener er transskriberet af cellen vært RNA polymerase II og kræver ikke nogen viral faktor for aktivering4. Derfor, fremmede proteiner kan udtrykkes i insekt celler inden for kort tid. Til dato, forbigående er gen expression system en af de vigtigste teknologier til at udføre protein funktionelle assays i baculovirus i vitro celle kultur system. Systemet kan anvendes til at analysere funktionen af enten baculovirus eller fremmede proteiner. En af de kommercielt tilgængelige forbigående gen expression systemer er baseret på umiddelbar-tidlig gen (IE) initiativtagerne til Orgyia pseudotsugata multicapsid nucleopolyhedrovirus (OpMNPV) (OpIE2 og OpIE1 projektledere).

Den lavere udtryk niveau af fremmede gener i insekt celler var imidlertid stadig et problem når OpIE promotor-baserede forbigående gen expression system blev brugt8,9,10. Således, en anden forbigående gen expression system blev bygget baseret på promotor af Drosophila heat shock protein 70 (hsp70) gen8,9. Promotor af hsp70 arbejder mere effektivt end baculoviral IE promotor når induceret af heat shock i insekt celler10. I dette system, var målet gener udtrykt under kørsel af Drosophila heat shock 70 (Dhsp70) promotor. Fremmede gener kan klones nemt i forbigående gen expression plasmid af PCR-baseret kloning metoder. Endvidere kan foretages kontrol af timing for genekspression af heat shock induktion.

I denne betænkning, vi følger tilgangen og udtrykke tre forskellige udeladelser af baculoviral-genet (hæmmer af apoptose 3, iap3 fra Lymantria xylina MNPV) ved hjælp af heat shock-baserede forbigående protein udtryk system og yderligere gælde disse udtrykte proteiner på anti-apoptotiske aktivitet analyse. Dette system kan enten udtrykke fremmede proteiner hurtigt eller påføres yderligere evaluering af protein anti-apoptotiske aktivitet i sf9 celler, mens der også har potentiale til at blive anvendt til andre protein aktivitet assays.

Protocol

1. præparater Insekt cellekultur Forberede 50 mL i cellekulturmedium. Det gør tilføje 500 µL af antibiotika (Amphotericin B = 0,25 µg/mL, Penicillin = 100 enhed/mL, Streptomycin = 100 µg/mL) og 5 mL af varme-inaktiverede føtal bovint serum i serumfrit cellekulturmedium (uden FBS eller antibiotika).Bemærk: Varme den føtale bovint serum på 65 ° C i 30 minutter i et bad med vand før brug. Vedligeholde Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae), sf9 i…

Representative Results

Den fulde længde og andre to udeladelser (BIR og RING domæner) af Ly-IAP3 fra LyxyMNPV blev overexpressed i sf9 celler, baseret på den varme chok-baserede pDHsp/V5-hans /Spodoptera frugiperda celle (sf9 celle) system. PDHsp/V5-hans indeholdt en Drosophila heat shock protein promotor, som drev nedstrøms genekspression ved en temperatur på 42 ° C tilstand ved hjælp af cellulære transcriptional faktorer og oversættelse systemet (figur 1</strong…

Discussion

Begrebet heat shock-baserede pDHsp/V5-hans/sf9 celle system blev første gang beskrevet af Clem et al. 19948. Sammenligning af baculoviral gen promoter (IE1) og Drosophila hsp70 viste, at hsp70 havde en højere effektivitet i myg celler10. På grund af heat shock induktion, kunne timingen af protein udtryk være kontrolleret netop efter varmebehandling chok. Dette system blev derefter anvendt for protein funktionelle assays af rejer og nu…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Jian-Horng Leu af Marine Biologisk Institut, National Taiwan Ocean Universitet for at give 3 plasmid konstruktioner. Denne forskning blev støttet af tilskud 106-2311-B-197-001 – fra ministeriet for videnskab og teknologi (de fleste).

Materials

Antibiotic-Antimycotic, 100X Gibco 15240-062 for insect cell culture
Certified Foetal Bovine Serum Bioind 04-001-1A
Sf-900 II SFM Thermo Fisher 10902096 serum-free cell culture medium
Sf9 cells ATCC CRL-1711
25cm2 cell culture flask Nunc, Thermo Fisher 156340
Inverted light microscopy WHITED WHITED WI-400
RBC HIT Competent Cell Bioman RH618-J80 Escherichia coli (DH5α)
L.B. Broth (Miller) Bioman LBL407
Agar, Bacteriological Grade Bioman AGR001
Zeocin Invitrogen ant-zn-1 selection antibiotic
PCR Master Mix (2X) ThermoFisher K0171
Geneaid Midi Plasmid Kit (Endotoxin Free) Geneaid PIE25
Actinomycin D SIGMA A9415
Corning 50 mL centrifuge tubes SIGMA CLS430829-500EA 50 mL tubes
Hemocytometer Gizmo Supply Co B-CNT-SLDE-V2
24-Well Multidish Nunc, Thermo Fisher 142475 24-well plate
Cellfectin II Reagent Thermo Fisher 10362100 cell transfectin reagent
PBS-Phosphate-Buffered Saline (10X) pH 7.4 Thermo Fisher AM9624
4×SDS Loading Dye Bioman P1001
Immobilon-P (PVDF Blotting Membranes) Merck Milipore IPVH00010 PVDF membranes
Mini Trans-Blot Cell system BIO-RED 1703930 Blotting device
Ponceau S solution SIGMA 6226-79-5
Anti-V5 SIGMA V8137 rabbit anti-V5 antibody
Goat anti-rabbit IgG-horseradish peroxidase (HRP) Jackson 111-035-003
Tween 20 Merck 817072
6-Well Multidish Nunc, Thermo Fisher 145380
0.4 % trypan blue solution AMRESCO K940-100ML
P10 pipetman Gilson F144802
P1000 pipetman Gilson F123602
Tape Symbio PPS7 24 well tape ( 19 mm×36 M)

Referências

  1. Miller, L. K. Baculoviruses as gene expression vectors. Annual Reviews in Microbiology. 42 (1), 177-199 (1988).
  2. Theilmann, D. A., Fauquet, C. M., Mayo, M. A., Maniloff, J., Desselberger, U., Ball, L. A., et al. Family Baculoviridae. Virus Taxonomy: Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. , 1129-1185 (2005).
  3. Nai, Y. S., Huang, Y. F., Chen, T. H., Chiu, K. P., Wang, C. H., Shields, V. D. C. Determination of nucleopolyhedrovirus’ taxonomic position. Biological Control of Pest and Vector Insects. , 169-200 (2017).
  4. Friesen, P. D., Miller, L. K. Regulation of baculovirus early gene expression. The Baculoviruses. , 141-170 (1997).
  5. Smith, G. E., Summers, M., Fraser, M. Production of human beta interferon in insect cells infected with a baculovirus expression vector. Mol. Cell. Biol. 3 (12), 2156-2165 (1983).
  6. Luckow, V. A., Summers, M. D. Trends in the development of baculovirus expression vectors. Nature Biotechnol. 6 (1), 47-55 (1988).
  7. Jarvis, D. L., Finn, E. E. Modifying the insect cell N-glycosylation pathway with immediate early baculovirus expression vectors. Nature Biotechnol. 14 (1996), 1288-1292 (1996).
  8. Clem, R. J., Miller, L. K. Control of programmed cell death by the baculovirus genes p35 and iap. Mol. Cell. Biol. 14, 5212-5222 (1994).
  9. Leu, J. H., Kuo, Y. C., Kou, G. H., Lo, C. F. Molecular cloning and characterization of an inhibitor of apoptosis protein (IAP) from the tiger shrimp, Penaeus monodon. Dev. Comp. Immunol. 32, 121-133 (2008).
  10. Zhao, Y. G., Eggleston, P. E. Comparative analysis of promoters for transient gene expression in cultured mosquito cells. Insect Mol. Biol. 8 (1), 31-38 (1999).
  11. Nai, Y. S., Yang, Y. T., Kim, J. S., Wu, C. Y., Chen, Y. W., Wang, C. H. Baculoviral IAP2 and IAP3 encoded by Lymantria xylina multiple nucleopolyhedrovirus (LyxyMNPV) suppress insect cell apoptosis in a transient expression assay. Appl. Entomol. Zool. 51, 305-316 (2016).
  12. Eslami, A., Lujan, J. Western Blotting: Sample Preparation to Detection. J. Vis. Exp. (44), e2359 (2010).
  13. . Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Separating Protein with SDS-PAGE Available from: https://www.jove.com/science-education/5058/separating-protein-with-sds-page (2017)
  14. Vucic, D., Kaiser, W. J., Harvey, A. J., Miller, L. K. Inhibition of reaper-induced apoptosis by interaction with inhibitor of apoptosis proteins (IAPs). Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94, 10183-10188 (1997).
check_url/pt/56693?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Chang, J., Lee, S. J., Kim, J. S., Wang, C., Nai, Y. Transient Expression of Foreign Genes in Insect Cells (sf9) for Protein Functional Assay. J. Vis. Exp. (132), e56693, doi:10.3791/56693 (2018).

View Video