Summary

Kemiske Amputation og regenerering af svælget i Planarian Schmidtea mediterranea

Published: March 26, 2018
doi:

Summary

Planarian Schmidtea mediterranea er en fremragende model for at studere stamceller og væv revitalisering. Denne publikation beskriver en metode til at selektivt fjerne en orgel, svælget, ved at udsætte dyr for den kemiske natriumazid. Denne protokol beskriver også metoder til overvågning af svælget regenerering.

Abstract

Planarians er fladorme, der er ekstremt effektive på regenerering. De skylder denne evne til at et stort antal stamceller, der kan hurtigt reagere på enhver form for skade. Fælles skade modeller i disse dyr fjerne store mængder af væv, som skader flere organer. For at overvinde denne brede vævsskader, beskriver vi her en metode hen til selektivt fjerne en enkelt orgel, svælget, i planarian Schmidtea mediterranea. Det opnår vi ved iblødsætning dyr i en oploesning indeholdende natriumazid cytokrom oxidase inhibitor. Kortvarig påvirkning til natriumazid forårsager ekstrudering af svælget fra dyr, som vi kalder “kemiske amputation.” Kemiske amputation fjerner hele svælget, og genererer et lille sår hvor svælget tillægger tarmen. Efter omfattende skylning, regenerere alle amputerede dyr en fuldt funktionel svælget i cirka en uge. Stamceller i resten af kroppen drive regenerering af nye svælget. Her, vi leverer en detaljeret protokol for kemiske amputation, og beskriver både histologiske og adfærdsmæssige metoder til at vurdere vellykket amputation og regenerering.

Introduction

Regeneration er et fænomen, der opstår overalt i dyreriget, med regenererende kapacitet spænder fra fuld krop regenerering i visse hvirvelløse dyr til mere begrænsede evner i hvirveldyr1. Udskiftning af funktionelle væv er en kompleks proces, og ofte medfører den samtidige restaurering af flere celletyper. For eksempel, at regenerere salamander lemmer, osteoblaster, chondrocytter, neuroner, muskler og epitelceller skal være erstattet2. Disse nyligt genererede celletyper skal også være organiseret korrekt at lette nye lemmer funktion. Forstå disse komplekse processer kræver teknikker, der fokuserer på regenerering af specifikke celletyper og deres integration i organer.

En af de strategier, der er ansat til at forenkle studiet af regenerativ svar er den målrettede ablation af enten visse celletyper eller større samlinger af væv. For eksempel i zebrafisk fører udtryk for nitroreductase i bestemte celletyper til deres ødelæggelse efter anvendelse af metronidazol3,4. I Drosophila larver, kan udtrykker pro-apoptotiske gener under væv-specifikke initiativtagere selektivt ablate bestemte områder af fantasiens disc5,6. Begge af disse strategier hurtige men kontrolleret skade, og har været brugt til at dissekere de molekylære og cellulære mekanismer, der er ansvarlige for regenerering.

I dette manuskript beskriver vi en metode til at selektivt ablate hele organ kaldet svælget i planarian Schmidtea mediterranea. Planarians er en klassisk model af regenerering, kendt for deres produktive regenerative evne, hvor selv minut fragmenter kan regrow hele dyr 7,8. De har en stor, heterogen population af stamceller bestående af både pluripotente celler og afstamning-begrænset stamfaderen9,10,11. Disse celler formere sig og differentiere for at erstatte alle mangler væv, herunder svælget, nervøs, fordøjelseskanalen og ekskretionsorganerne systemer, og muskel og epitelceller9,10,12. Selv om vi ved, at disse stamceller indlede regenerering, vi ikke fuldt ud forstå de molekylære mekanismer, der driver dem til at erstatte alle disse forskellige celletyper. Definerede såret metoder, der fremkalde præcise stamcelle svar kan hjælpe med at afgrænse denne komplekse proces.

Svælget er et stort, cylindriske rør kræves for fodring, og indeholder neuroner, muskel, epithelial og sekretoriske celler13,29. Normalt skjult i en pose på den ventrale side af dyret, det strækker sig gennem dyrets enkelt organ åbning ved sensing tilstedeværelsen af føde. Du kan selektivt amputere svælget, sættetid vi planarians i en kemisk kaldet natriumazid, et almindeligt anvendte bedøvelsesmiddel i C. elegans14,15,16. Dets anvendelse i planarians blev først rapporteret af Adler mfl., i 201412. Inden for minutter af eksponering for natriumazid, planarians presse deres pharynges, og med blide agitation, svælget frigøres fra dyret. Vi henviser til denne komplette og selektiv tab af svælget som “kemiske amputation”. En uge efter amputation, er en fuldt funktionel svælget restaureret12. Fordi svælget er påkrævet for fodring, kan funktionelle regeneration måles ved at overvåge fodring adfærd. Nedenfor beskriver vi protokollen for kemiske amputation, og for at vurdere regenerering af svælget og restaurering af fodring adfærd.

Protocol

1. forberedelse Forberedelse af planaria vand 17 Opretholde planarians i en 1 X Montjuïc saltopløsning. For at forberede planarian vand, lave individuelle stamopløsninger af 1 M CaCl2, 1 M MgSO4, 1 M MgCl2, 1 M KCl og 5 M NaCl i ultrarent vand. Filter-sterilisere med en 0,2 µm flaske-top filterfor langtidsopbevaring.Bemærk: Brug kun laves deioniseret vand (med en resistivitet på 18.2 MΩ ved 25 ° C) ti…

Representative Results

Eksponering for natriumazid forstyrrer den normale motilitet af planarians, forårsager dyr til at strække og vride. Disse bevægelser tvinge svælget til at komme ud af den ventrale side af dyret, og efter ca. 6 min. i natrium indeholder løsning, den hvide spids i svælget kan ses (figur 1B-venstre panel). Et par minutter senere, dyr kontrakt aktivt og udvide fuldt svælget ved kraftigt at skubbe det ud af kroppen. (<strong class="…

Discussion

Denne protokol beskriver en metode til selektiv ablation af svælget med natriumazid. Andre målrettede ablation undersøgelser i planarians har brugt modificerede kirurgi til at fjerne fotoreceptorer21 eller farmakologiske behandling til ablate dopaminerge neuroner22. En væsentlig fordel ved kemiske amputation over eksisterende metoder er, at det ikke kræver operation. Den stive struktur i svælget i forhold til resten af planarian kroppen letter dens fuldstændig fjerne…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Alejandro Sánchez Alvarado, der støttede den indledende optimering og udvikling af denne teknik. Arbejde i Carolyn Adlers laboratorium understøttes af Cornell University start-up midler.

Materials

Calcium Chloride Dihydrate (CaCl2) Fisher Chemical C79-3 Montjuïc salt solution
Magnesium Sulfate Anhydrous (MgSO4) Fisher Chemical M65-3 Montjuïc salt solution
Magnesium Chloride Hexahydrate (MgCl2) Acros/VWR 41341-5000 Montjuïc salt solution
Potassium Chloride (KCl) Acros Organics/VWR 196770010 Montjuïc salt solution
Sodium Chloride (NaCl) Acros Organics/VWR 207790050 Montjuïc salt solution
Sodium Bicarbonate (NaHCO3) Acros Organics/VWR 123360010 Montjuïc salt solution
Nalgene autoclavable polypropylene copolymer lowboy with spigot ThermoFisher Scientific/VWR 2324-0015 Storing planaria water
Instant Ocean Sea Salt Spectrum Brands Amazon Planaria water
Gentamicin Sulfate Gemini Bio-products 400-100P Planaria water
Razor blades Electron Microscopy Sciences 71970 Mincing liver 
Disposable pastry bags-16”, 12 pack Wilton Amazon Liver aliquots
5 mL syringes BD/VWR 309647 Liver aliquots
Petri dishes-35mm/60mm Greiner Bio-One/VWR 82050-536/82050-544
Plastic containers (various sizes) Ziploc Amazon Housing planarians in static culture
Sodium Azide Sigma S2002
Transfer pipette Globe Scientific 138030
Forceps – Dumont Tweezer, Style 5 Electron Microscopy Sciences  72700-D (0203-5-PO)
Triton X-100 Sigma T8787
DAPI  ThermoFisher 62247
Streptavidin, Alexa Fluor 488 conjugate ThermoFisher S11223
Glycerol Fisher BioReagents BP229-1

Referências

  1. Tanaka, E. M., Reddien, P. W. The cellular basis for animal regeneration. Dev. Cell. 21, 172-185 (2011).
  2. Tanaka, E. M. The Molecular and Cellular Choreography of Appendage Regeneration. Cell. 165, 1598-1608 (2016).
  3. Curado, S., Stainier, D. Y. R., Anderson, R. M. Nitroreductase-mediated cell/tissue ablation in zebrafish: a spatially and temporally controlled ablation method with applications in developmental and regeneration studies. Nat. Protoc. 3, 948-954 (2008).
  4. White, D. T., Mumm, J. S. The nitroreductase system of inducible targeted ablation facilitates cell-specific regenerative studies in zebrafish. Methods. 62, 232-240 (2013).
  5. Smith-Bolton, R. K., Worley, M. I., Kanda, H., Hariharan, I. K. Regenerative growth in Drosophila imaginal discs is regulated by Wingless and Myc. Dev. Cell. 16, 797-809 (2009).
  6. Smith-Bolton, R. Drosophila Imaginal Discs as a Model of Epithelial Wound Repair and Regeneration. Adv. Wound Care. 5, 251-261 (2016).
  7. Newmark, P. A., Sánchez Alvarado, A. Not your father’s planarian: a classic model enters the era of functional genomics. Nat. Rev. Genet. 3, 210-219 (2002).
  8. Reddien, P. W., Sánchez Alvarado, A. Fundamentals of planarian regeneration. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 20, 725-757 (2004).
  9. Wagner, D. E., Wang, I. E., Reddien, P. W. Clonogenic neoblasts are pluripotent adult stem cells that underlie planarian regeneration. Science. 332, 811-816 (2011).
  10. Scimone, M. L., Kravarik, K. M., Lapan, S. W., Reddien, P. W. Neoblast specialization in regeneration of the planarian Schmidtea mediterranea. Stem Cell Reports. 3, 339-352 (2014).
  11. van Wolfswinkel, J. C., Wagner, D. E., Reddien, P. W. Single-cell analysis reveals functionally distinct classes within the planarian stem cell compartment. Cell Stem Cell. 15, 326-339 (2014).
  12. Adler, C. E., Seidel, C. W., McKinney, S. A., Sánchez Alvarado, A. Selective amputation of the pharynx identifies a FoxA-dependent regeneration program in planaria. Elife. 3, e02238 (2014).
  13. Adler, C. E., Sánchez Alvarado, A. PHRED-1 is a divergent neurexin-1 homolog that organizes muscle fibers and patterns organs during regeneration. Dev. Biol. 427, 165-175 (2017).
  14. Wong, M. C., Martynovsky, M., Schwarzbauer, J. E. Analysis of cell migration using Caenorhabditis elegans as a model system. Methods Mol. Biol. 769, 233-247 (2011).
  15. Margie, O., Palmer, C., Chin-Sang, I. C elegans chemotaxis assay. J. Vis. Exp. , e50069 (2013).
  16. Fang-Yen, C., Gabel, C. V., Samuel, A. D. T., Bargmann, C. I., Avery, L. Laser microsurgery in Caenorhabditis elegans. Methods Cell Biol. 107, 177 (2012).
  17. Tasaki, J., Uchiyama-Tasaki, C., Rouhana, L. Analysis of Stem Cell Motility In Vivo Based on Immunodetection of Planarian Neoblasts and Tracing of BrdU-Labeled Cells After Partial Irradiation. Methods Mol. Biol. 1365, 323-338 (2016).
  18. Roberts-Galbraith, R. H., Brubacher, J. L., Newmark, P. A. A functional genomics screen in planarians reveals regulators of whole-brain regeneration. Elife. 5, (2016).
  19. Arnold, C. P., et al. Pathogenic shifts in endogenous microbiota impede tissue regeneration via distinct activation of TAK1/MKK/p38. Elife. 5, (2016).
  20. Pearson, B. J., et al. Formaldehyde-based whole-mount in situ hybridization method for planarians. Dev. Dyn. 238, 443-450 (2009).
  21. LoCascio, S. A., Lapan, S. W., Reddien, P. W. Eye Absence Does Not Regulate Planarian Stem Cells during Eye Regeneration. Dev. Cell. 40, 381-391 (2017).
  22. Nishimura, K., et al. Regeneration of dopaminergic neurons after 6-hydroxydopamine-induced lesion in planarian brain. J. Neurochem. 119, 1217-1231 (2011).
  23. Wilson, D. F., Chance, B. Azide inhibition of mitochondrial electron transport. I. The aerobic steady state of succinate oxidation. Biochim. Biophys. Acta. 131, 421-430 (1967).
  24. Duncan, H. M., Mackler, B. Electron Transport Systems of Yeast: III. Preparation and properties of cytochrome oxidase. J. Biol. Chem. 241, 1694-1697 (1966).
  25. Buchan, J. R., Yoon, J. H., Parker, R. Stress-specific composition, assembly and kinetics of stress granules in Saccharomyces cerevisiae. J. Cell Sci. 124, 228-239 (2011).
  26. Cebrià, F. Organization of the nervous system in the model planarian Schmidtea mediterranea: An immunocytochemical study. Neurosci. Res. 61, 375-384 (2008).
  27. Shimoyama, S., Inoue, T., Kashima, M., Agata, K. Multiple Neuropeptide-Coding Genes Involved in Planarian Pharynx Extension. Zoolog. Sci. 33, 311-319 (2016).
  28. Ito, H., Saito, Y., Watanabe, K., Orii, H. Epimorphic regeneration of the distal part of the planarian pharynx. Dev. Genes Evol. 211, 2-9 (2001).
  29. Bueno, D., Espinosa, L., Baguñà, J., Romero, R. Planarian pharynx regeneration in tail fragments monitored with cell-specific monoclonal antibodies. Dev. Genes Evol. 206, 425-434 (1997).
  30. Hyman, L. . The invertebrates: Platyhelminthes and Rhynchocoela, the acoelomate Bilateria. , (1951).

Play Video

Citar este artigo
Shiroor, D. A., Bohr, T. E., Adler, C. E. Chemical Amputation and Regeneration of the Pharynx in the Planarian Schmidtea mediterranea. J. Vis. Exp. (133), e57168, doi:10.3791/57168 (2018).

View Video