Summary

Laboratoire d’élevage de mouches Stable et autres diptères Muscoid

Published: August 03, 2018
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Summary

Une procédure pour l’élevage des mouches stables (Stomoxys calcitrans) est présentée. La procédure utilise des matériaux disponibles localement pour les composants de l’alimentation, de matériel et de fournitures.

Abstract

Les mouches stables, Stomoxys calcitrans, sont des ravageurs importants des animaux, les humains, animaux de compagnie et la faune dans le monde entier. Durant les dernières 20 années +, changements dans les pratiques agronomiques a entraîné de graves flambées de mouches stables dans plusieurs pays. Ces flambées perturbé la production animale et humaine loisirs aboutissant à des demandes de la population pour accroître les efforts de recherche et de la gestion de cet organisme nuisible. Une procédure simple et peu coûteuse pour l’élevage des mouches stables pour des études en laboratoire est présentée. La procédure utilise des fournitures, des équipements et des composants de l’alimentation disponible localement. La procédure peut être adaptée pour l’élevage des autres mouches muscoid dont mouche faciale (Musca autumnalis), mouche des cornes (Haematobia irritans) et mouche domestique (Musca domestica). La procédure produit puparia mouche stable, avec une moyenne de 12,5 mg et environ 35 % des œufs à la survie des adultes. Environ 3000 mouches sont produites dans chaque casserole.

Introduction

Les mouches stables, Stomoxys calcitrans (L.), sont des mouches hématophages dont les piqûres douloureuses perturbent le comportement de pâturage du bétail, causent des douleurs et souffrances aux animaux de compagnie et perturbent les activités récréatives humaines dans le monde entier. Immatures mouches stables se développent dans la fermentation de matière végétale, souvent contaminé par des déchets animaux. Cultures et modification des pratiques agronomiques ont produit des graves éclosions de mouches stables dans des résidus de cultures, légumes en Australie1, canne à sucre au Brésil2et ananas au Costa Rica,3. Bien que seulement 14 mouches stables par animal sont considérés comme le seuil économique4, observations de plus de 2 000 mouches par animal ont été faites au cours de récentes éclosions5. Ces niveaux d’infestation réduire la productivité hôte à près de zéro et peut causer la mortalité6. À la suite de flambées associées sur le plan agronomique, mouches stables reçoivent le regain d’intérêt et demande des colonies de laboratoire a augmenté de façon spectaculaire.

En ce qui concerne tous les holometamorphic insectes, mouches stables obtenir tous les éléments nutritifs nécessaires à sa croissance durant le stade immature ou larvaire. Par conséquent, un élément important d’un système d’élevage est l’alimentation larvaire ou le substrat. Les larves de mouches stables ont été observés dans un large éventail de substrats dans la zone7 et ils dépendent de la communauté microbienne du substrat8,9. Substrats naturels de larves sont principalement composées de décomposition ou de fermentation matériel végétatif souvent contaminés par des déchets azotés.

Pour l’élevage de laboratoire, des substrats de larves mouches stables sont généralement composées d’un matériau végétal et une source d’azote supplémentaire. Nombreux matériaux ont été utilisés pour un regime de larve mouche stable. La première alimentation larvaire a imité substrats naturels et inclus la fermentation paille d’avoine et de10,du fumier de cheval ou vache11. Sources de glucides incluent blé bran12,13,14, luzerne repas12,13,14 , et une formulation commerciale développée par Chemical Specialties Manufacturers Association (CSMA, 33 % du son de blé, farine de luzerne de 27 %, 40 % de levure granulés)13,14,15,16. Sources d’azote comprennent de suspension de levure12, de farine de poisson et de bicarbonate d’ammonium17. Gonflement des matériaux inertes figurent souvent dans les régimes dont avoine coques12, bagasse13, vermiculite16, copeaux de bois13,18 et granulés coques d’arachides14.

Des principaux objectifs de l’élevage de laboratoire sont de produire un produit qui est aussi physiologiquement similaire à « type sauvage » que possible, afin que des expériences en laboratoire produira des résultats reflétant celles des populations naturelles. Cela nécessite que l’élevage et la sélection être minimisé pour maintenir génétique, diversité et ressources nutritionnelles être comparables à ceux dans le domaine. Les objectifs secondaires sont à minimiser le travail et les dépenses. Une composante majeure de la réduction des dépenses est l’utilisation de composants d’alimentation disponibles localement. La mouche stable SYSTEME présenté d’élevage a été développée afin d’atteindre ces objectifs.

Protocol

1. oeuf Collection (Figure 1) Préparer une tasse mentionnÃ, placez un bout de tissu en ~ 500 mL bécher rempli d’eau tiède (environ 40 ° C). Chevaucher les côtés de la coupe et fixez avec un élastique. Plier l’extrémité libre de la toile de retour sur le dessus de la coupe. Place coupe mentionnà en cage de mouches de 8 à 10 jours de vieux pour la femelle gravide ~ 2 h stable vole sera pondent leurs oeufs sur la toile. Retirer mentionnà tasse de c…

Representative Results

Les larves pupariate 10 – 14 jours et les adultes émergent de 14 à 16 jours après la ponte. Générationnel, oeuf d’oeuf, est ~ 24 jours. Données d’élevage pour mai 2013 à janvier 2017 avec trois différents agents gonflants et deux colonies sont présentées à la Figure 5. Cottonwood a donné le meilleur rendement, 3867 ±1442 ( ± écart-type) pesant 12,5 mg 1,6 avec 74 ±19 …

Discussion

Les mouches stables se trouve dans une large variété de substrats dans la nature et peuvent être élevés dans de nombreux types de médias dans le laboratoire. Nous avons utilisé des copeaux de bois et de la vermiculite comme agents gonflants. La vermiculite a bien fonctionné, mais fait séparation puparia d’élevage moyennement difficile et était cher (~$0.60/pan). Peut-être à cause de la rigueur supplémentaire de séparation puparia du milieu, eclosion était également plus faible avec la vermiculite, 57 %…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous tenons à remercier Anthony Weinhold et les nombreux étudiants qui ont travaillé avec nous pendant des années pour le support technique ainsi que des suggestions pour améliorer notre insecte procédures d’élevage.

Materials

Diamalt Premier Malt Products, Inc., Saddle Brook, NJ 2540
CSMA Fly media Purina Animal Nutrition, Arden Hills, MN 5S6Z
Thin Maxi Pad The Tranzonic Co., Cleveland, OH, USA 5001M
Calf Manna MannaPro, Chesterfield, MO, USA Manna Pro
Ammonium Bicarbonate Spectrum Chemical Manufacturing Corp, Gardena, CA A1125
Wheat bran, Coarse Siemer Milling Company, Teutopolis, IL
Wood shavings Tractor Supply Company, Brentwood, TN 502770699
Fishmeal Consumer Supply Distributing, North Sioux City, SD F1550
Adult cages All Aluminum Window Company, Lincoln, Ne Custom 45 × 45 × 45 cm, 18 × 16 mesh aluminum screen, stockinette access
9 × 28 cm black cotton cloth Robert Kaufman Fabrics, Los Angeles, CA K040-114 Egging cloth
10 liter plastic dish pans Rubbermaid, Saratoga Springs, NY FG2951ARWHT Larval pans
Stockinette, Cotton, 12" X 25 yd roll Tex-Care Medical Company, Burlington, NC 91311-225

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Citar este artigo
Friesen, K., Berkebile, D. R., Zhu, J. J., Taylor, D. B. Laboratory Rearing of Stable Flies and Other Muscoid Diptera. J. Vis. Exp. (138), e57341, doi:10.3791/57341 (2018).

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