Summary

Мыши модель частичной непроходимостью кишечника

Published: March 05, 2018
doi:

Summary

Кишечные препятствия являются частичной или полной блокировки кишечника, что может вызвать сильные боли в животе, тошнота, рвота и предотвращения прохождения табуретку. Эта процедура создания кишечных частичное obsructions в мышах надежна в изучении механизмов лежащих в основе роста патологических клеток и смерти в кишечнике.

Abstract

Кишечные препятствия, которые мешают или блокировать перистальтические движения, может быть вызвано брюшной спаек и наиболее желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), включая опухолевых новообразований. Однако сотовых Ремонт механизмов, занимающихся, и вызванные, кишечные препятствия плохо понимают. Были разработаны несколько животных моделей кишечных препятствий, но модель мыши является наиболее стоимости и времени эффективным. Мыши модель использует хирургической имплантации частичной непроходимостью кишечника (PO), имеющий высокий уровень смертности, если не выполняется правильно. Кроме того мышей, получающих PO хирургии не развивать гипертрофия, если соответствующие блокады не используется или помещены не должным образом. Здесь мы описываем подробный протокол для хирургии PO, которая производит надежных и воспроизводимых кишечных препятствия с очень низкой смертностью. Этот протокол использует хирургически размещены силиконовые кольца, которая окружает подвздошной кишки, который частично блокирует пищеварительной движения в тонком кишечнике. Частичная блокада делает стать расширены за счет прекращения пищеварительной движения кишечника. Дилатация кишечника вызывает гипертрофией гладких мышц на устные стороне кольца, который постепенно развивается более чем 2 недели до тех пор, пока она приводит к смерти. Хирургическое модель мыши PO предлагает модель в vivo гипертрофических кишечных тканей, полезно для изучения патологических изменений кишечных клеток, включая клетки гладких мышц (SMC), интерстициальных клеток Кахаля (МКК), PDGFRα+и нейронов клетки в ходе развития кишечной непроходимости.

Introduction

Кишечные препятствия являются частичной или полной блокировки в малых или больших кишечника, который предотвращает перемещение через кишечник1переваренной пищи, жидкости и газа. Из-за обструкции засорение индуцирует кишечника стены, чтобы стать утолщена, сужение просвета2. Кишечная непроходимость может возникать в результате брюшной полости или таза операций, которые вызывают образование брюшной адгезии ткани или от GI расстройств, таких как воспалительные заболевания кишечника (болезнь Крона), дивертикулит, грыж, заворот, стриктуры, инвагинации кишечника, запор, фекальные столкновение, псевдо-непроходимость, рак и опухоли3,4,5. Кишечные препятствия в таких случаях часто приводят к гипертрофии мышечной туника кишечника6.

PO просвета вызывает вздутие кишечника и увеличивается толщина слоя гладких мышц вокруг препятствий в ответ на необходимость продолжения функциональных перистальтики7,8,9,10, 11,12,13. Животные модели кишечной PO были разработаны для изучения гипертрофией гладких мышц в мышей7, крысы10, морских свинок11, собак12и кошек13 , что последовательно развивать аналогичные гипертрофия в пределах слои кишечной мышцы.

Модель мыши кишечных PO является наиболее экономически эффективным способом для создания и изучения кишечных препятствия в естественных условиях. Тонкой кишки помех осуществляется мышей с помощью силиконовые кольца хирургическим помещается вокруг подвздошной кишки. PO мышей показало ранних увеличение числа клеток (гиперплазия) и увеличение толщины слоя мышц (гипертрофия) после PO хирургии8,15. SMC являются основной пластиковые клетки, которые растут в пределах слоями гладких мышц в ответ на гипертрофических условия14, но другие клетки, такие как ICC и PDGFRα+ клетки, которые тесно связаны с SMC, также заполняются. Мы уже ранее сообщали, что PO мышей развитие гипертрофии в тонком кишечнике, в котором SMC являются Дедифференцированная в PDGFRα+ клетки, которые являются весьма пролиферативной7,,1516. И наоборот ICC выродились и потерял в слои гипертрофированной гладких мышц во время развития кишечных obsruction7. Другим преимуществом модели PO является его способность стимулировать изменения в нервной системе кишечных и пропаганде нейрогенный мотор узоры. Основные распространение нейрогенный мотор шаблон в мыши тонкой кишки является перенос двигателя комплекс (MMC), которая нейрогенных и не требует ICC или электрические медленных волн17. PO модель может обеспечить четкое понимание как MMCs и кишечных нервов перестроен по частичной обструкции.

Здесь мы предлагаем мышиных протокол для кишечной хирургии PO, с помощью силиконовые кольца. Мышей, надежно получить PO хирургии производят гипертрофия мышечной туника тонкой кишки. В пределах гипертрофических мышц SMC, МТП, PDGFRα+и нейрональные клетки резко перестроенный.

Protocol

Следующий протокол был одобрен институциональный уход животных и использовать Комитет (IACUC) на ресурсы животного Университет Невады в Рено (УНР) и соблюдает все институциональные этические руководящие принципы, касающиеся использования исследований животных. 1. животных…

Representative Results

Хирургическим путем частичной обструкции (PO) вызывали исполнился месяц мышей, поместив силиконовые кольца вокруг подвздошной кишки рядом илеоцекальной сфинктера. Это кольцо создан частичного блокирования в подвздошной кишки. Шам операций (так), также проводились без…

Discussion

Мы продемонстрировали, что мышей, получающих кишечной хирургии PO последовательно и герметизации развивать кишечной гладкой мышечной гипертрофии, которая имитирует человека кишечной непроходимости. Кишечная непроходимость операций были разработаны для различных животных включая<sup …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить Бенджамин J Weigler, доктор, доктора и Уолт Мандевиль, доктор (животных ресурсов и кампуса посещения ветеринара, Университет Невады, Рено) за их прекрасную животных услуги, оказываемой мышей, а также их адвоката на хирургические процедуры.

Materials

Surgical drape Medical and veterinary supplies SMS40 40”X100 yards
Underpad, econ, pro plus Medical and veterinary supplies MSC281224 17×24”
Iris scissors Braintree scientific, Inc SC-i-130
Iris scissors Vantage V95-304
Dumont electronic & jeweler tweezers Dumont 98-180-3
Braided absorbable suture Covidien polysorb SL-5687G 5-0, polyglactin
Nylon non-absorbable mono filament AD surgical S-N618R13 6-0, nylon
Surgical blade Dynarex No.15
Needle holder Jacobson microvascular 36-1342TC 8.5 inch
Scalpel handle Flinn scientific AB1049
Microsurgical scissor WPI 503305
Petrolatum ophthalmic ointment Puralube VET 3.5 g
Fluriso (isoflurane) Vetone V1 502017 250 ml
Steri-strip reinforced skin closure 3M R1547
Surgical gloves Medline MSG2270
Ear loop face mask The safety zone RS700
Avant gauze non-woven sponges Caring PRM25444
Surgical cup Admiral  craft OYC-2 725-A42 2.5 oz
Swabstick ChloraPrep 260103 2% w/v Chlorhexidine  Gluconate (CHG) and 70% v/v Isopropyl Alcohol (IPA)
Cotton tipped applicator Puritan 806-WC
Buprenorphine Zoo pharm BZ8069317 1 mg/ml
Gentamycin sulfate Vetone G-6336-04 100 mg/ml
Fast acting gel cream remover Veet 8111002
Syringe AHS AH01T2516 1 ml with needle
Silicon ring VWR 60985-720 6 mm in length, 4 mm exterior diameter, 3.5 mm interior diameter
C57BL/6 mice The Jackson Laboratory 4-6 weeks old

Referências

  1. Millat, B., Guillon, F. Physiopathology and principles of intensive care in intestinal obstructions. Rev Prat. 43, 667-672 (1993).
  2. Tonelli, P. New developments in Crohn’s disease: solution of doctrinal mysteries and reinstatement as a surgically treatable disease. 1. The process is not a form of enteritis but lymphedema contaminated by intestinal contents. Chir Ital. 52, 109-121 (2000).
  3. Limsrivilai, J. Meta-analytic Bayesian model for differentiating intestinal tuberculosis from Crohn’s disease. Am J Gastroenterol. 112, 415-427 (2017).
  4. Dvorak, D., Adamova, Z., Bar, T., Slovacek, R. Internal hernia as a cause of small bowel obstruction. Rozhl Chir. 96, 34-36 (2017).
  5. Massani, M., Capovilla, G., Ruffolo, C., Bassi, N. Gastrointestinal stromal tumour (GIST) presenting as a strangulated inguinal hernia with small bowel obstruction. BMJ Case Rep. , (2007).
  6. Chen, J., Chen, H., Sanders, M., Perrino, B. A. Regulation of SRF/CArG-dependent gene transcription during chronic partial obstruction of murine small intestine. Neurogastroenterol Motil. 20, 829-842 (2008).
  7. Chang, I. Y., et al. Loss of interstitial cells of Cajal and development of electrical dysfunction in murine small bowel obstruction. J Physiol. 536 (Pt 2), 555-568 (2001).
  8. Liu, D. H., et al. Voltage dependent potassium channel remodeling in murine intestinal smooth muscle hypertrophy induced by partial obstruction. PLoS One. 9 (2), e86109 (2014).
  9. Guo, X., et al. Down-regulation of hydrogen sulfide biosynthesis accompanies murine interstitial cells of Cajal dysfunction in partial ileal obstruction. PLoS One. 7, e48249 (2012).
  10. Yang, J., Zhao, J., Chen, P., Nakaguchi, T., Grundy, D., Gregersen, H. Interdependency between mechanical parameters and afferent nerve discharge in hypertrophic intestine of rats. Am J Physiol-Gastr L. 310, G376-G386 (2016).
  11. Zhao, J., Liao, D., Yang, J., Gregersen, H. Biomechanical remodeling of obstructed guinea pig jejunum. J Biomech. 43, 1322-1329 (2010).
  12. Bowen, E. J., et al. Duodenal Brunner’s glade adenoma causing chronic small intestinal obstruction in a dog. J Small Anim Pract. 53, 136-139 (2012).
  13. Bettini, G., et al. Hypertrophy of intestinal smooth muscle in cats. Res Vet Sci. 75, 43-53 (2003).
  14. Macdonald, J. A. Smooth muscle phenotypic plasticity in mechanical obstruction of the small intestine. J Neurogastroenterol Motil. 20, 737-740 (2008).
  15. Ha, S. E., et al. Transcriptome analysis of PDGFRα+ Cells identifies T-types Ca2+ channel CACNA1G as a new pathological marker for PDGFRα+ cell hyperplasia. PLoS One. 12, e0182265 (2017).
  16. Park, C., et al. Serum response factor is essential for prenatal gastrointestinal smooth muscle development and maintenance of differentiated phenotype. J Neurogastroenterol Motil. 21, 589-602 (2015).
  17. Spencer, N. J., Sanders, K. M., Smith, T. K. Migrating motor complexes do not require electrical slow waves in the mouse small intestine. J Physiol. 553, 881-893 (2003).
  18. Langford, D. J., et al. Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse. Nat Methods. 7, 447-449 (2010).
  19. Terez, S. D., Notari, L., Sun, R., Zhao, A. Mechanisms of smooth muscle responses to inflammation. Neurogastroenterol Motil. 24, 802-811 (2012).
  20. Chen, W., et al. Smooth muscle hyperplasia/hypertrophy is the most prominent histological change in Crohn’s fibrostenosing bowel strictures: A semiquantitative analysis by using a novel histological grading scheme. J Crohns Colitis. 11, 92-104 (2017).
  21. Huizinga, J. D., Chen, J. H. Interstitial Cells of Cajal: Update on Basic and Clinical Science. Curr Gastroenterol Rep. 16, 363 (2014).
  22. Jirkof, P., Touvieille, A., Cinelli, P., Arras, M. Buprenorphine for pain relief in mice: repeated injections vs sustained-release depot formulation. Lab Animal. 49, 177-187 (2015).
  23. Spencer, N. J., Dinning, P. J., Brookes, S. J., Costa, M. Insights into the mechanisms underlying colonic motor patterns. J Physiol. 594, 4099-4116 (2016).
check_url/pt/57381?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ha, S. E., Wei, L., Jorgensen, B. G., Lee, M. Y., Park, P. J., Poudrier, S. M., Ro, S. A Mouse Model of Intestinal Partial Obstruction. J. Vis. Exp. (133), e57381, doi:10.3791/57381 (2018).

View Video