Her, beskriver vi en protokol for en reproducerbar laser fange microdissection (LCM) til isolering af trabekelværket (TM) for downstream RNA analyse. Evnen til at analysere ændringer i genekspression i TM vil hjælpe med at forstå de underliggende molekylære mekanismer af TM-okulær sygdomme.
Laser fange microdissection (LCM) har tilladt gen expression analyse af enkelt celler og beriget cellepopulationer i væv sektioner. LCM er et fantastisk værktøj for studier af de molekylære mekanismer bag Celledifferentiering og udvikling og progression af forskellige sygdomme, herunder glaukom. Glaukom, som består af en familie af progressive optic neuropatier, er den mest almindelige årsag til uoprettelige blindhed på verdensplan. Strukturelle ændringer og skader inden for trabekelværket (TM) kan resultere i øget intraokulært tryk (IOP), som er en stor risikofaktor for at udvikle grøn stær. De præcise molekylære mekanismer involveret er dog stadig dårligt forstået. Evnen til at udføre gen expression analyse vil være afgørende for at opnå yderligere indsigt i funktionen af disse celler og dens rolle i reguleringen af IOP og glaukom udvikling. For at opnå dette, beriget en reproducerbar metode til isolering af stærkt TM fra frosne dele af mus øjne og en metode for downstream gen expression analyse, som RT-qPCR og RNA-Seq er nødvendig. Den metode beskrevet heri er udviklet for at isolere meget ren TM fra mus øjne for downstream digital PCR og microarray analyse. Derudover kan denne teknik være let tilpasses til isolation af andre højt beriget okulær celler og celle rum, der har været vanskelige at isolere fra mus øjne. Kombinationen af LCM og RNA analyser kan bidrage til en mere omfattende forståelse af de cellulære begivenheder underliggende glaukom.
Glaukom er en gruppe af sygdomme karakteriseret ved optisk neuropati og retinopati, der i sidste ende fører til uoprettelige blindhed1,2. Skønsmæssigt vil leve med en form for sygdom3,4,5,6,7af 2020 over 70 millioner mennesker verden over. Primær åbenvinklet glaukom (POAG), den mest udbredte type af glaukom, er karakteriseret ved et fald i vandige humor (AH) udstrømning fører til øget intraokulært tryk (IOP)8,9,10, 11,12,13,143,15,16,17,18. Venstre ubehandlet, kronisk forhøjet IOP fører til progressiv og irreversible skader på nethinden og synsnerven hoved forårsager radial blindhed1,2,19. Alle nuværende metoder til at bremse progression af glaukom fokus på at reducere IOP, enten ved at reducere satsen for produktionen af AH af ciliare eller forbedre det udstrømning1,8,9, 10 , 11 , 12 , 13 , 14. trabekelværket (TM) spiller en afgørende rolle i aktivt regulere den primære AH udstrømning pathway og dens forkert funktion er en udløsende faktor for hypertensive glaukom1,2,19. Men de molekylære mekanismer forbundet med TM dysfunktion og hvordan det regulerer AH dræning er endnu ikke fuldt forstået og er i øjeblikket en større fokus på glaukom research1,2,19, 20. mens flere genome-wide association studier (GWAS) har knyttet en række gener til grøn stær og øget modstand mod AH udstrømning facilitet på TM, de præcise molekylære mekanismer, der fører til sygdommen ikke er endnu fuldt ud forstået21 , 22 , 23 , 24 , 25.
Dyremodeller har styrket vores nuværende viden om sygdomsprogression i glaukom (grundigt gennemgået i3,15,16,26,27,28, 29,30,31,32,33). Flere banebrydende metoder er blevet udviklet for at studere TM34,35,36 , og disse metoder har været meget anvendt til at fremme vores nuværende forståelse af normale og syge væv. Et område, der ikke er blevet grundigt udforsket er brugen af genetisk modificerede musemodeller at studere de molekylære mekanismer af TM fiasko. Transgene knock-i og knock-out mus undersøgelser af TM forbundet gener, som Myocilin (Myoc)37,38 og Cyp1b139, har været de primære værktøjer til at studere de molekylære mekanismer af TM funktion. Forståeligt nok, den lille størrelse af TM i mus repræsenterer en alvorlig forhindring, der skal overvindes for at begynde at studere dette væv. Musemodeller repræsenterer et kraftfuldt værktøj til at undersøge genetik og molekylære mekanismer af sygdommen, mens fremskridt i LCM teknologier give de nødvendige værktøjer for at give studiet af de mindste og mest delikate væv, herunder TM.
I denne betænkning, er en robust og reproducerbar metode beskrevet for LCM af højt beriget TM fra mus øjne sammen med efterfølgende RNA isolering og forstærkning for downstream udtryk analyse. Lignende metoder har været anvendt med succes i mus for at isolere andre typer af øjet væv40,41,42,43,44, metoden rapporteret heri kan anvendes til andre diskrete væv af øjet til at studere RNA, mikroRNA, DNA og proteiner. Vigtigst, denne teknik giver mulighed for brug af genmodificerede mus til bedre at forstå de molekylære patogenese af TM værdiforringelse i glaukom og okulær sygdomme3,15,16,17 ,18,26,31,45,46. Evnen til at isolere TM mus øjne af LCM vil være en nyttig teknik i at opnå yderligere indsigt i de molekylære mekanismer af flere okulær sygdomme.
TM spiller en afgørende rolle i aktivt opretholde homeostatiske IOP og dens dysfunktion er bredt accepteret som den vigtigste udløsende faktor for hypertensive glaukom1,2,19. En række enkelt nucleotid polymorfier i flere gener identificeret ved GWAS analyse har været knyttet til øget glaukom risiko og øget modstand mod AH udstrømning facilitet på TM; de præcise molekylære mekanismer, der giver anledning til denne sygdo…
The authors have nothing to disclose.
ACTA2 ddPCR Primers (dMmuCPE5117282) | BioRad | 10031252 | FAM |
Agilent 2100 Bioanalyzer | Agilent Technologies | G2946-90004 | |
Agilent RNA 6000 Pico kit | Agilent Technologies | 5067-1513 | |
BioRad QX200 Droplet Digital PCR System | BioRad | ||
Small Paint Brush | |||
Charged Glass Microscope Slide | Thermo scientific | 4951PLUS-001 | |
Cresyl Violet Acetate | Sigma Aldrich | C5042 | |
Curved Scissors | |||
Eosin Y dye | Thermo scientific | 71204 | |
Ethanol | |||
Forceps | Curved and Serrated tip (preferred tip size: 0.5 x 0.4 mm) | ||
HemaCen | American MasterTech | STHEM30 | |
High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit | Applied Biosystems | 4368814 | |
Hsp90a ddPCR Primers(dMmuCPE5097465) | BioRad | 10031255 | VEX |
Leica CM1850 Cryostat | Leica | ||
Millex-GS filter unit | EMD Millipore | SLGS033SB | 0.22 µm |
MMI CellCut UV Cutting Model | Molecular Machines & Industries | LCM intrument | |
MMI CellTools Software | Molecular Machines & Industries | 50202 | LCM software |
Sample Tube for Laser Capture Microdisssection | ASEE Products | ST-LMD-M-500 | Isolation Cap Tube/Manufactured by Microdissect GmBH in Germany and distrubted by ASEE Products |
Sample Tube for Laser Capture Microdisssection (Alternative) | Molecular Machines & Industries | ||
modified Harris Hematoxylin | Thermo scientific | 7211 | FAM |
MYOC ddPCR Primers (dMmuCPE5095712) | BioRad | 10031252 | |
PBS | |||
Memebrane Slides, RNase Free | ASEE Products | FS-LMD-M-50r | Polyethylene terephthalate (PET) membrane/Manufactured by Microdissect GmBH in Germany and distrubted by ASEE Products |
Memebrane Slides, RNase Free (Alternative) | Molecular Machines & Industries | 50102 | |
Rapid Fix | Thermo scientific | 6764212 | H&E staining |
RLT Buffer | Qiagen | 79216 | lysis bufffer used for LCM samples |
RNAseZap | Sigma | R2020 | RNase decontamination solution |
Protect RNA RNAse Inhibitor | Sigma Aldrich | R7397 | |
RNeasy Micro Kit | Qiagen | 74004 | RNA isolation kit |
SMART-Seq v4 Ultra Low Input RNA Kit | Takara Clontech | 634888 | low input RNA to cDNA kit for LCM samples |
SuperMix (no dUTP) | BioRad | 1863023 | digital PCR master mix |
Tissue-Tek Cryomold (25mm x 20mm x5mm) | Sakura | 4557 | |
Tissue-Tek O.C.T. Compound | Sakura | 4583 | |
Stratalinker UV Crosslinker | Stratagene | 400075 | |
Xylene | Macron | 8668 |