Summary

Twee methoden voor Decellularization van plantaardige weefsels voor Tissue Engineering toepassingen

Published: May 31, 2018
doi:

Summary

Hier presenteren we en contrast twee protocollen gebruikt om te decellularize van plantaardige weefsels: een wasmiddel gebaseerde aanpak en een wasmiddel-vrije benadering. Beide methoden zijn achterlaten van de extracellulaire matrix van de weefsels van de plant gebruikt, die vervolgens kan worden gebruikt als steigers voor weefsel waterbouwkundige toepassingen.

Abstract

De transplantaties van het autologe, synthetische en dierlijke momenteel gebruikt als steigers voor weefsel vervanging hebben beperkingen als gevolg van lage beschikbaarheid, arme biocompatibiliteit en kosten. Plantaardige weefsels hebben gunstige kenmerken die ze uniek geschikt voor gebruik als steigers, zoals hoge oppervlakte, uitstekende water transport en retentie, onderling verbonden porositeit, vasculaire netwerken, en een breed scala van mechanische kader van onderzoekopleiding Eigenschappen. Twee succesvolle methoden van plant decellularization voor weefsel waterbouwkundige toepassingen worden hier beschreven. De eerste methode is gebaseerd op wasmiddel baden om cellulaire kwestie, die vergelijkbaar met de eerder vastgestelde methoden gebruikt is om duidelijk zoogdieren weefsels. De tweede is een wasmiddel-vrije methode aangepast van een protocol dat isoleert blad therapieën en impliceert het gebruik van een verwarmde bleekmiddel en zout bad om te wissen van de bladeren en stengels. Beide methoden leveren steigers met vergelijkbare mechanische eigenschappen en de lage cellulaire metabole effecten waardoor de gebruiker kan het protocol dat beter aansluit bij hun beoogde toepassing selecteren.

Introduction

Weefselengineering ontstaan in de jaren 1980 maken levend weefsel substituten, en potentieel adres belangrijke orgaan- en weefsel tekorten1. Een strategie hanteert steigers te stimuleren en begeleiden van het lichaam om te regenereren ontbrekende weefsels of organen. Hoewel geavanceerde productie benaderingen zoals 3D-printen steigers met unieke fysieke eigenschappen hebben geproduceerd, blijft de mogelijkheid voor de vervaardiging van steigers met een breed scala van haalbare fysische en biologische eigenschappen een uitdaging2 , 3. Bovendien, als gevolg van een gebrek aan een functionele vasculaire netwerk, deze technieken hebben beperkt gebleven in het regenereren van 3-dimensionale weefsels. Het gebruik van decellularized dierlijke en menselijke weefsels als steigers heeft geholpen in het omzeilen van dit probleem4,5,6,7. Echter hoge kosten-charges-variabiliteit en beperkte beschikbaarheid kunnen het beperken van wijdverbreide gebruik van decellularized dier steigers8. Er bestaat ook bezorgdheid over mogelijke overdracht van de ziekte aan patiënten en immunologische reactie op sommige decellularized zoogdieren weefsels9.

Cellulose, afgeleid van plant en bacteriële bronnen, is uitgebreid gebruikt voor het genereren van biomaterialen voor een brede waaier van toepassingen in de regeneratieve geneeskunde. Enkele voorbeelden zijn: bot, kraakbeen12,13,14 ,10,11en wond genezing van15. Steigers die bestaan van cellulose hebben een bijkomend voordeel dat ze zijn duurzaam en resistent tegen cellen van zoogdieren wordt uitgesplitst. Dit is vanwege het feit dat zoogdiercellen geen produceren de enzymen die nodig is voor het uitsplitsen van cellulose moleculen. Ter vergelijking, steigers geproduceerd met behulp van macromoleculen uit de extracellulaire matrix, zoals collageen, worden gemakkelijk afgebroken16 en mogelijk niet geschikt zijn voor langdurige toepassingen. Collageen steigers kunnen worden gestabiliseerd door chemische dwarsbinding. Er is echter een trade-off als gevolg van de inherente toxiciteit van de cross-linkers die invloed hebben op de biocompatibiliteit van de steigers17. Omgekeerd, cellulose heeft het potentieel om te blijven aanwezig op de plaats van implantatie voor langdurig van tijd, want het is ongevoelig voor enzymatische afbraak door zoogdiercellen18,19,20. Dit kan worden gewijzigd door het afstemmen van het tarief van aantasting door middel van hydrolyse voorbehandeling en co levering van de steigers met cellulases21. De biocompatibiliteit van decellularized plantgerelateerde cellulose steigers in vivo is ook aangetoond in een studie gedaan op muizen22.

Door honderden miljoenen jaren van evolutie, hebben planten hun structuur en samenstelling te verhogen van de efficiëntie van vloeibare vervoer en bewaring verfijnd. Plant vasculaire vaartuigen minimaliseren hydraulische weerstand door vertakking naar kleinere schepen, vergelijkbaar met de zoogdieren therapieën volgens Murray’s wet23. Na decellularization, wordt van de plant complex netwerk van vaartuigen en onderling verbonden poriën onderhouden. Gezien het grote aantal verschillende plantensoorten beschikbaar hebben plantgerelateerde steigers het potentieel om te overwinnen ontwerpbeperkingen, beïnvloeden momenteel steigers in weefsel engineering24,25. Bijvoorbeeld, Modulevsky et al. aangetoond dat angiogenese en cel migratie gebeurde toen decellularized apple weefsel subcutaan werd ingeplant op de achterkant van een muis-22. Ook Gershlak et al. toonde aan dat endotheliale cellen kunnen volwassen binnen de therapieën van decellularized bladeren24. In een afzonderlijk experiment waren Gershlak et al. ook kunnen laten zien dat cardiomyocytes kon worden gekweekt op het oppervlak van bladeren en waren in staat om een contract van24.

Planten bevatten ook complexe organisatie van de cellulaire naar de macroscopische schaal, die moeilijk is te bereiken zelfs met de meest geavanceerde productie-technieken ontwikkeld tot nu toe. De complexe hiërarchische ontwerp van plantaardige weefsels maakt hen sterker is dan de som van hun kiezers26. Planten bezitten een overvloed aan verschillende mechanische eigenschappen, variërend van stijve en taai componenten zoals stengels, bladeren aan veel meer flexibel en plooibaar degenen zoals27. Bladeren variëren, afhankelijk van de soorten in termen van grootte, vorm, sterkte, de mate van vascularisatie, breken en kunnen verschillende graden van hydrophilicity. Over het geheel genomen, suggereren de eigenschappen van deze plant dat decellularized planten als unieke en zeer functionele medische hulpmiddelen dienen kunnen, met inbegrip van als weefsel engineering van steigers.

Dit protocol richt zich op twee methoden om te decellularize van plantaardige weefsels, zoals bladeren en stengels, voor gebruik als steigers in weefselengineering. De eerste methode is een wasmiddel gebaseerde techniek die maakt gebruik van een reeks van Baden om DNA en cellulaire kwestie, die werd aangepast van een veel gebruikte techniek om decellularize zoogdieren en plantaardige weefsels6,22,25 te verwijderen ,28,29,30. De tweede methode is wasmiddel-vrij en is aangepast van een protocol van de “skeletonization” gewoonlijk gebruikt voor het verwijderen van de zachte weefsels van bladeren31. Voorafgaande werk bleek dat scheiding van de therapieën van de omliggende weke delen31sudderen bladeren in een bleekmiddel, en natriumbicarbonaat oplossing vergemakkelijkt. Deze techniek kan worden aangehaald terug naar experimenten uitgevoerd in de 17th ptth 18 eeuwen, zoals het werk van Albertus Seba32 en Edward Parrish33. Deze experimenten gecentreerd rond het verlaten van plantaardig materiaal, zoals bladeren en vruchten, ondergedompeld in water voor langere tijd (weken tot maanden) en waardoor de zachtere tissues aan verval weg natuurlijk. Hier is de “skeletonization”-benadering aangepast voor het gebruik van mildere omstandigheden, zoals langere incubatietijd tijden bij lagere temperaturen, cellulaire resten te verwijderen en om te voorkomen dat aanzienlijk verstoren de weke delen structuur. Voor de experimenten hierin gedetailleerd, drie installatie types werden gebruikt: Ficus hispida, Pachira aquatica en een soort Garcinia. Resultaten van DNA kwantificering, mechanische tests en impact op de cellulaire metabole activiteit van beide methoden worden beschreven.

Protocol

1. decellularization van weefsel van de Plant met behulp van het wasmiddel gebaseerde benadering Gebruik verse of bevroren F. hispida, blad monsters. Bevriezen van ongebruikte verse monsters in een vriezer van-20 ° C en een winkel voor toekomstig gebruik (tot een jaar).Opmerking: Gebruik stengel of blad weefsel van bijna alle gewenste planten. Uitgebreide opslag tijden kunnen leiden tot schade aan de weefsels. Bepalen van de grootte en vorm van de monsters worden verwerkt…

Representative Results

Beide methoden leverde steigers die waren geschikt voor celkweek en weefsel technische toepassingen. Figuur 1 toont de algemene workflow voor het proces van de decellularization met behulp van een intact blad voor het wasmiddel gebaseerde methode en gesneden monsters (8 mm doorsnede) voor de wasmiddel-vrije methode. Succesvolle decellularization van Ficus hispida weefsels na beide methoden leverde duidelijke en intact monsters (f…

Discussion

Hierin worden twee methoden om te decellularize van plantaardige weefsels beschreven. De resultaten die hier gepresenteerd in combinatie met de resultaten van voorafgaande studies25, suggereren dat de protocollen uitwaardigen waarschijnlijk zijn die van toepassing zijn op een breed spectrum van plantensoorten en kunnen worden uitgevoerd op zowel de stengels en de bladeren. Deze procedures zijn eenvoudig en vereisen geen speciale apparatuur, zodat plant decellularization in de meeste laboratoria ka…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We zouden graag bedanken John Wirth van de tuinen van Olbrich voor genadig leveren de specimens die in dit project worden gebruikt. Dit werk is deels gesteund door de National Heart, Lung en bloed Instituut (R01HL115282 naar G.R.G.) National Science Foundation (DGE1144804 J.R.G en G.R.G.), en de Universiteit van Wisconsin afdeling chirurgie en Alumni Fonds (H.D.L.). Dit werk was ook gedeeltelijk ondersteund door de Environmental Protection Agency (STAR grant nr. 83573701), de National Institutes of Health (R01HL093282-01A1 en UH3TR000506) en de National Science Foundation (IGERT DGE1144804).

Materials

Sodium dodecyl sulfate Sigma Life Science 75746-1KG
Triton X-100 MP Biomedicals, LLC 807426 Non-ionic surfactant referenced in paper. Very viscous reagent, can help to cut end of pipette tip when drawing it up.
Concentrated bleach (8.25% sodium hypochlorite) Clorox Item #: 31009 Standard concentrated bleach.
Sodium bicarbonate Acros Organics 217120010 Can be substituted with sodium hydroxide or sodium carbonate.
8 mm Biopunch HealthLink 15111-80 Cuts samples that fit well in 24 well plate
Belly Dancer-Shake table Stovall Life Sciences BDRAA115S Use low speeds to not damage tissues. Can use any model/brand of shake table.
Isotemp hot/stir plate Fisher Scientific Can use any style/brand of hot/stir plate.
Beaker Any Can use any size beaker as long as it will fit your samples and not overcrowd them.
Tris Hydrochloride Fisher Scientific BP153-500
DMEM Corning MT50003PC
Quant-iT Picogreen dsDNA assay Life Technologies P11496 Can use any dsDNA quantification mehtod on hand.

Referências

  1. Vacanti, J. Tissue engineering and regenerative medicine: from first principles to state of the art. Journal of Pediatric Surgery. 45 (2), 291-294 (2010).
  2. Kim, S., et al. Survival and function of hepatocytes on a novel three-dimensional synthetic biodegradable polymer scaffold with an intrinsic network of channels. Annals of Surgery. 228 (1), 8-13 (1998).
  3. Park, A., Wu, B., Griffith, L. Integration of surface modification and 3D fabrication techniques to prepare patterned poly(L-lactide) substrates allowing regionally selective cell adhesion. Journal of Biomaterial Science, Polymer Edition. 9 (2), 89-110 (1998).
  4. Steinhoff, G., et al. Tissue engineering of pulmonary heart valves on allogenic acellular matrix conduits: in vivo restoration of valve tissue. Circulation: JAMA. 102 (Suppl 3), III-50- III -55. 102 (Suppl 3), III-50-III-55 (2000).
  5. Stock, U., et al. Tissue-engineered valved conduits in the pulmonary circulation. Journal of Thoracic Cardiovascular Surgery. 119 (4 Pt 1), 732-740 (2000).
  6. Ott, H., et al. Perfusion-decellularized matrix: using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nature Medicine. 14 (2), 213-221 (2008).
  7. Guyette, J., et al. Bioengineering Human Myocardium on Native Extracellular Matrix. Circulation Research. 118 (1), 56-72 (2016).
  8. Huerta, S., Varshney, A., Patel, P., Mayo, H., Livingston, E. Biological Mesh Implants for Abdominal Hernia Repair: US Food and Drug Administration Approval Process and Systematic Review of Its Efficacy. JAMA Surgery. 151 (4), 374-381 (2016).
  9. Catalano, E., Cochis, A., Varoni, E., Rimondini, L., Azzimonti, B. Tissue-engineered skin substitutes: an overview. Journal of Artificial Organs. 16 (4), 397-403 (2013).
  10. Fang, B., Wan, Y., Tang, T., Gao, C., Dai, K. Proliferation and osteoblastic differentiation of human bone marrow stromal cells on hydroxyapatite/bacterial cellulose nanocomposite scaffolds. Tissue Engineering. 15 (5), 1091-1098 (2009).
  11. Wan, Y., et al. Biomimetic synthesis of hydroxyapatite/bacterial cellulose nanocomposites for biomedical applications. Materials Science and Engineering. 27 (4), 855-864 (2007).
  12. Vinatier, C., et al. An injectable cellulose-based hydrogel for the transfer of autologous nasal chondrocytes in articular cartilage defects. Biotechnology and Bioengineering. 102 (4), 1259-1267 (2009).
  13. Vinatier, C., et al. A silanized hydroxypropyl methylcellulose hydrogel for the three-dimensional culture of chondrocytes. Biomaterials. 26 (33), 6643-6651 (2005).
  14. Vinatier, C., et al. Engineering cartilage with human nasal chondrocytes and a silanized hydroxypropyl methylcellulose hydrogel. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 80 (1), 66-74 (2007).
  15. Helenius, G., Bäckdahl, H., Bodin, A., Nannmark, U., Gatenholm, P., Risberg, B. In vivo biocompatibility of bacterial cellulose. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 76 (2), 431-438 (2006).
  16. Zhong, S., et al. An aligned nanofibrous collagen scaffold by electrospinning and its effects on in vitro fibroblast culture. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 79 (3), 456-463 (2006).
  17. Thomas, D., et al. A shape-controlled tuneable microgel platform to modulate angiogenic paracrine responses in stem cells. Biomaterials. 35 (31), 8757-8766 (2014).
  18. Lai, C., Zhang, S., Wang, L., Sheng, L., Zhou, Q., Xi, T. The relationship between microstructure and in vivo degradation of modified bacterial cellulose sponges. Journal of Materials Chemistry B. 3 (46), 9001-9010 (2015).
  19. Märtsonad, M., Viljantoa, J., Hurmea, T., Laippalac, P., Saukkob, P. Is cellulose sponge degradable or stable as implantation material? An in vivo subcutaneous study in the rat. Biomaterials. 20 (21), 1989-1995 (1999).
  20. Miyamoto, T., Takahashi, S., Ito, H., Inagaki, H., Noishiki, Y. Tissue biocompatibility of cellulose and its derivatives. Journal of Biomedical Materials Research. 23 (1), 125-133 (1989).
  21. Entcheva, E., Bien, H., Yin, L., Chung, C., Farrell, M., Kostov, Y. Functional cardiac cell constructs on cellulose-based scaffolding. Biomaterials. 25 (26), 5753-5762 (2004).
  22. Modulevsky, D., Cuerrier, C., Pelling, A. Biocompatibility of Subcutaneously Implanted Plant-Derived Cellulose Biomaterials. PLoS One. 11 (6), e0157894 (2016).
  23. McCulloh, K., Sperry, J., Adler, F. Water transport in plants obeys Murray’s law. Nature. 421 (6926), 939-942 (2003).
  24. Gershlak, J., et al. Crossing kingdoms: Using decellularized plants as perfusable tissue engineering scaffolds. Biomaterials. 125, 13-22 (2017).
  25. Fontana, G., et al. Biofunctionalized Plants as Diverse Biomaterials for Human Cell Culture. Advanced Healthcare Materials. 6 (8), (2017).
  26. Wegst, U., Bai, H., Saiz, E., Tomsia, A., Ritchie, R. Bioinspired structural materials. Nature Materials. 14 (1), 23-36 (2015).
  27. Gibson, L. The hierarchical structure and mechanics of plant materials. Journal of the Royal Society Interface. 9 (76), 2749-2766 (2012).
  28. Hoshiba, T., et al. Decellularized Extracellular Matrix as an In vitro Model to Study the Comprehensive Roles of the ECM in Stem Cell Differentiation. Stem Cells International. 2016, (2016).
  29. Guyette, J., et al. Perfusion decellularization of whole organs. Nature Protocols. 9 (6), 1451-1468 (2014).
  30. Modulevsky, D. J., et al. Apple derived cellulose scaffolds for 3D mammalian cell culture. PLoS ONE. 9 (5), e97835 (2014).
  31. Seba, A., Sloane, H. The Anatomical Preparation of Vegetables, by Albertus Seba, F. R. S. Communicated to the Royal Society by Sir Hans Sloane, Bart. Pr. R. S. and Col. Med. Lond. Translated from the German, by Mr. Zolman, F. R. S. Philosophical Transactions. 36 (407), 441-444 (1775).
  32. Parrish, E. The Phantom Boutique: A Popular Treatise on the Art of Skeletonizing Leaves and Seed-Vessels and Adapting Them to Embellish the Home of Taste. The Phantom Boutique: A Popular Treatise on the Art of Skeletonizing Leaves and Seed-Vessels and Adapting Them to Embellish the Home of Taste. , (1865).
  33. Coffin, S., Gaudette, G. Aprotinin extends mechanical integrity time of cell-seeded fibrin sutures. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 104 (9), 2271-2279 (2016).
  34. Zangala, T. Isolation of Genomic DNA from Mouse Tails. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (6), e246 (2007).
  35. Borselli, C., Cezar, C., Shvartsman, D., Vandenburgh, H., Mooney, D. The role of multifunctional delivery scaffold in the ability of cultured myoblasts to promote muscle regeneration. Biomaterials. 32 (34), 8905-8914 (2011).
  36. Hill, E., Boontheekul, T., Mooney, D. Designing Scaffolds to Enhance Transplanted Myoblast Survival and Migration. Tissue Engineering. 12 (5), 1295-1304 (2006).
  37. Hill, E., Boontheekul, T., Mooney, D. Regulating activation of transplanted cells controls tissue regeneration. Proceedings of the National Academy of Sciences. 103 (8), 2494-2499 (2006).
  38. Ma, J., Holden, K., Zhu, J., Pan, H., Li, Y. The Application of Three-Dimensional Collagen-Scaffolds Seeded with Myoblasts to Repair Skeletal Muscle Defects. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 1-9 (2011).
  39. Tyree, M. Plant hydraulics: the ascent of water. Nature. 424 (6943), 923 (2003).
  40. Raven, P., Evert, R., Eichhorn, S. . Biology of Plants. , (2005).
  41. Turrell, F. The area of the internal exposed surface of dicotyledon leaves. American Journal of Botany. 23 (4), 255-264 (1936).
check_url/pt/57586?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Adamski, M., Fontana, G., Gershlak, J. R., Gaudette, G. R., Le, H. D., Murphy, W. L. Two Methods for Decellularization of Plant Tissues for Tissue Engineering Applications. J. Vis. Exp. (135), e57586, doi:10.3791/57586 (2018).

View Video