Summary

Murina orofaryngeal Aspiration modell av ventilatorassocierad och vårdrelaterade bakteriell pneumoni

Published: June 28, 2018
doi:

Summary

Smittsam lunginflammation är bland de vanligaste infektionerna i mänskliga. En lämplig in-vivo -modellen är kritisk för att förstå sjukdomspatogenes och testa effekten av romanen therapeutics. Med denna murina orofaryngeal aspiration lunginflammation modell, kan man undersöka de patogenes och nya behandlingar mot dessa dödliga infektioner.

Abstract

Murina infektion modeller är avgörande för att förstå sjukdomspatogenes och testa effekten av nya behandlingar för att bekämpa orsakande patogener. Infektiös lunginflammation är bland de vanligaste infektioner som presenteras av patienter på kliniken och därmed garanterar en lämplig in-vivo -modell. Typisk lunginflammation modeller använder intranasalt Inympning, som deponerar överdriven organismer utanför lungan, orsakar ej åsyftade komplikationer och symtom såsom bihåleinflammation, gastrit, enterit, fysiskt trauma eller microparticle imma för att efterlikna aerosol sprida mer typiska för viral, tuberkulösa eller svamp lunginflammation. Dessa modeller återspeglar inte korrekt patogenesen av typiska eller hälso-och sjukvård-bakteriell pneumoni. Däremot härmar denna murina modell av orofaryngeal aspirationspneumoni droplet rutten i hälso-och sjukvård-pneumoni. Suspension i orofarynx sövda möss ympning 50 µL av bakterier och orsakar reflexiv aspiration, vilket resulterar i lunginflammation. Med denna modell kan man undersöka patogenesen av lunginflammation som orsakar patogener och nya behandlingar för att bekämpa dessa sjukdomar.

Introduction

Nedre luftvägsinfektion är världens dödligaste smittsamma sjukdomar och den vanligaste dödsorsaken i utvecklingsländerna1. Globalt, redovisa dessa infektioner mer än 3,2 miljoner dödsfall1. Dessutom nosokomial pneumoni är bland de vanligaste och mest dödliga formerna av hälso-och infektioner, och orsakas av den mest antibiotika-resistenta patogener2,3. Den typiska förvärv av bakteriell lunginflammation för båda samhällsförvärvad och nosokomial pneumoni är aspiration av orofaryngeal innehållet i alveolerna. Murina modeller används för att studera dessa sjukdomar ofta använder intranasalt inympning4, sätta in mycket av bakterierna utanför lungan, orsakar ej åsyftade komplikationer och symptomen som bihåleinflammation och fysiska trauman, som är oförenlig med sjukdomen progression i mänskliga att modellerna var utformade för att efterlikna. Andra modeller kan använda inandning chambers och micromisting enheter, vilket mer korrekt efterlikna viral, tuberkulösa och svamp lunginflammationer, men inte korrekt sammanfatta den normala vägen förvärvskostnaden för typiska bakteriella lunginflammationer.

Murina orofaryngeal aspiration lunginflammation modellen kan användas för att simulera naturlig väg och patogenesen av bakteriell lunginflammation. Genom ympning 50 µL av bakteriesuspensionen i orofarynx sövda möss med pipett, inträder reflexiv aspiration, vilket resulterar i smittsam lunginflammation. Använda denna modell, kan man undersöka patogenesen av lunginflammation som orsakar patogener och nya behandlingar för att bekämpa dessa sjukdomar med en högre trohet modell, mer jämförbar med aspiration lunginflammation infektioner observerats i mänskliga. Dessutom, till skillnad från liknande modeller som infekterar via munhålan5,6, garanterar denna modell att det fullständiga inokulatet når lungorna istället för tarmen, där det kan orsaka off-site inflammation och infektioner, såsom gastrit och enterit. Slutligen, till skillnad från en annan publicerad modell som kräver en laryngoskopet och infektionsstadierna genom luftstrupen7, denna modell skymmer inte luftvägarna med sondmatning nål och kräver inte injektion för inokulum leverans. I stället bygger inympning på den naturliga strävan reflexen av musen.

Protocol

Alla förfaranden som involverar djur måste godkännas av forskarens institutionella djur vård och användning kommittén (IACUC). 1. beredning av bakteriell inokulatet Isolera bakteriekolonier. Streak en bakteriell stam (t.ex., A. baumannii ”HUMC1”) på lämplig steril agarsubstrat (t.ex., Tryptic soy agar), var noga med att generera isolerade kolonier. Inkubera vid lämpliga villkor (t.ex., över natten vid 37 ° C)….

Representative Results

Genom att noggrant följa protokollet, kan reproducerbar och robust data lätt erhållas. Det är viktigt att strikt följa en anpassad inokulum förberedelse protokoll för experiment för att jämföras med en varandra. Det är också viktigt att korrekt hantera möss under förfarandet för infektion. Var noga med att placera möss i en anestesi kammare saknar isofluran. Möss kommer panik om de placeras i en kammare som har varit förfylld med isofluran och kan uppleva överskott stre…

Discussion

Att vara säker, är möss inte miniatyr människor. Resultat från musmodeller måste betraktas i sammanhang och därefter tolkas för tillämplighet till människa, baserat på skillnader och likheter mellan de två arter6. Det är också viktigt att välja lämpliga mus stam som vissa är mer mottagliga för vissa infektioner än andra. Detsamma gäller den patogen stam val16.

Det är viktigt att utföra infektioner i ett krävande och högt r…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete var stöds av nationella institutet för allergi och infektionssjukdomar vid National Institutes of Health [Grant nummer R01 AI117211, R01 AI130060, R21 AI127954 och R42 AI106375 i BS] och US Food and Drug Administration [kontrakt HHSF223201710199C till BML].

Materials

Agar BD 214530 Combine with TSB to make TSA
Beads, Borosilicate Glass Kimble 135003 Sterilize by baking or autoclaving before each use
Beaker, 250 mL Pyrex 1003 Used during precise aliquoting of concentrated bacterial inocula
Centrifuge Sorvall ST 40R Capable of 4,000×g at 4°C
Chamber for Anesthesia Kent Scientific Corporation VetFlo-0720 Accommodates up to 5 mice
Cryomold, Intermediate Size Sakura Tissue-Tek 4566 Disposable vinyl specimen molds, 15×15×5 mm
Dental Floss Oral-B 37000469537 Tie to stable post approx. 6" above table height
Forceps VWR 82027-440 Used to gently pull tongue out of mouse's mouth
Homogenizer for Lung Tissue Omni International TM125-115 Autoclave before first use; rinse between samples
Isoflurane for Anesthesia Abbott 10015516 Alternative drug can be used; modify procedure accordingly
iSTAT Cartridge Abbott 03P79-25 Various cartridges are available to suit your needs
Ketamine, 100 mg/mL Western Medical Supply 4165 Dilute 1:10 in PBS to 1 mg/mL and combine with Xylazine at 1 mg/mL
Ointment for Eyes Akorn Tears Renewed Avoid touching eye with tip of dispenser
Optimal Cutting Temperature (O.C.T.) Compound Fisher Scientific 23-730-571 Used to freeze lung samples at -80 °C to prepare for pathology sectioning
Petri Dish VWR 25384-302 Polystyrene, disposable, sterilized, 100×15 mm
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Corning 21-031-CM Dulbecco's PBS without calcium and magnesium
Pipette Tips, 200-μL VWR 10017-044 Autoclave before use
Pipetter, 200-μL Gilson Pipetman P200 Autoclave and calibrate before use
Spreader, Bacterial Cell Bel-Art F377360006 Sterilize by baking or autoclaving before each use
Stir Bar, Magnetic, 7.9 mm Diameter × 38.1 mm Length VWR 58948-150 Used for stiring concentrated bacterial inocula during aliquoting
Stir Plate, Magnetic Corning PC-620D Used for stiring concentrated bacterial inocula during aliquoting
Tryptic Soy Broth (TSB) BD 211822 Combine with Agar to make TSA
Vial, Conical, Sterile, 50 mL Corning 431720 Used for preparing bacterial inocula
Vial, Conical, Sterile, 500 mL Corning 431123 Used to concentrate inocula for preparing frozen inocula
Vial, Cryogenic, 2.0 mL Corning 430659 Used for cryogenic storage of concentrated bacterial inocula
Xylazine, 20 mg/mL Akorn AnaSed Injection Dilute 1:20 in PBS to 1 mg/mL and combine with Ketamine at 1 mg/mL

Referências

  1. Spellberg, B., Talbot, G. H. Recommended Design Features of Future Clinical Trials of Antibacterial Agents for Hospital-Acquired Bacterial Pneumonia and Ventilator-Associated Bacterial Pneumonia. Clinical Infectious Diseases. 51 (S1), S150-S170 (2010).
  2. Kalil, A. C., et al. Management of Adults With Hospital-acquired and Ventilator-associated Pneumonia: 2016 Clinical Practice Guidelines by the Infectious Diseases Society of America and the American Thoracic Society. Clinical Infectious Diseases. 63 (5), e61-e111 (2016).
  3. Medina, E. Murine model of pneumococcal pneumonia. Methods in Molecular Biology. , 405-410 (2010).
  4. Azoulay-Dupuis, E., et al. In vivo efficacy of a new fluoroquinolone, sparfloxacin, against penicillin-susceptible and -resistant and multiresistant strains of Streptococcus pneumoniae in a mouse model of pneumonia. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 36 (12), 2698-2703 (1992).
  5. Mizgerd, J. P., Skerrett, S. J. Animal models of human pneumonia. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 294 (3), L387-L398 (2008).
  6. Rayamajhi, M., et al. Non-surgical intratracheal instillation of mice with analysis of lungs and lung draining lymph nodes by flow cytometry. Journal of Visualized Experiments. (51), (2011).
  7. Nielsen, T. B., Bruhn, K. W., Pantapalangkoor, P., Junus, J. L., Spellberg, B. Cryopreservation of virulent Acinetobacter baumannii to reduce variability of in vivo studies. BMC Microbiology. 15, 252 (2015).
  8. Trammell, R. A., Toth, L. A. Markers for predicting death as an outcome for mice used in infectious disease research. Comparative Medicine. 61 (6), 492-498 (2011).
  9. Bast, D. J., et al. Novel murine model of pneumococcal pneumonia: use of temperature as a measure of disease severity to compare the efficacies of moxifloxacin and levofloxacin. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 48 (9), 3343-3348 (2004).
  10. Hankenson, F. C., et al. Weight loss and reduced body temperature determine humane endpoints in a mouse model of ocular herpesvirus infection. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 52 (3), 277-285 (2013).
  11. Adamson, T. W., Diaz-Arevalo, D., Gonzalez, T. M., Liu, X., Kalkum, M. Hypothermic endpoint for an intranasal invasive pulmonary aspergillosis mouse model. Comparative Medicine. 63 (6), 477-481 (2013).
  12. Nielsen, T. B., et al. Diabetes Exacerbates Infection via Hyperinflammation by Signaling through TLR4 and RAGE. mBio. 8 (4), (2017).
  13. Nielsen, T. B., et al. Monoclonal Antibody Protects Against Acinetobacter baumannii Infection by Enhancing Bacterial Clearance and Evading Sepsis. Journal of Infectious Diseases. 216 (4), 489-501 (2017).
  14. Cheng, B. L., et al. Evaluation of serotypes 5 and 8 capsular polysaccharides in protection against Staphylococcus aureus in murine models of infection. Human Vaccine Immunotherapy. 13 (7), 1609-1614 (2017).
  15. Wong, D., et al. Clinical and Pathophysiological Overview of Acinetobacter Infections: a Century of Challenges. Clinical Microbiology Reviews. 30 (1), 409-447 (2017).
check_url/pt/57672?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Nielsen, T. B., Yan, J., Luna, B., Spellberg, B. Murine Oropharyngeal Aspiration Model of Ventilator-associated and Hospital-acquired Bacterial Pneumonia. J. Vis. Exp. (136), e57672, doi:10.3791/57672 (2018).

View Video